Эволюция методов оценки биоразнообразия северного оленя (Rangifer tarandus) (обзор)
Автор: Харзинова В.Р., Денискова Т.Е., Сермягин А.А., Доцев А.В., Соловьева А.Д., Зиновьева Н.А.
Журнал: Сельскохозяйственная биология @agrobiology
Рубрика: Обзоры, проблемы
Статья в выпуске: 6 т.52, 2017 года.
Бесплатный доступ
Северный олень Rangifer tarandus, единственный вид рода Rangifer, - важнейшая составляющая продовольственной безопасности коренных народов Российского Севера и незаменимое звено экосистем Арктики (А. Савченко, 2014; В.Г. Логинов, 2014). В настоящее время из-за неблагоприятных природных и антропогенных факторов наблюдается резкое сокращение численности поголовья как домашних, так и диких северных оленей, что приводит к потере генетического разнообразия, необходимого для выживания в новых условиях обитания (Ю.А. Столповский, 2010). В связи с этим все более актуален мониторинг генетического разнообразия ресурсных пород и дикой формы северного оленя с помощью генетических маркеров. В настоящем обзоре обобщены результаты исследований генетического разнообразия северного оленя с использованием различных методов молекулярно-генетического анализа. Первые генетические исследования северного оленя начались в 1960-х годах с изучения полиморфизма сывороточного трансферрина (В. Gahne с соавт., 1961; М. Braend, 1964). Были открыты типы трансферрина, отличающиеся друг от друга положением полос и подвижностью при гель-электрофорезе (A.V. Soldal с соавт., 1979; K.H. Roed, 1985; П.Н. Шубин с соавт., 1988). С развитием генетических технологий широкую популярность приобрели ДНК-маркеры (M. Çalişkan, 2012). Так называемые «анонимные» маркеры - сначала RAPD (random amplified polymorphic DNA) (В.В. Гончаров с соавт., 2009), позднее ISSR (inter simple sequence repeats) (Н.В. Кол с соавт., 2006; Т.М. Романенко с соавт., 2014; Г.Я. Брызгалов, 2016) - стали первыми ДНК-маркерами, используемыми для изучения биоразнообразия популяций северного оленя. С момента публикации полной нуклеотидной последовательности контрольного региона митохондриального генома у подвидов северного оленя Евразии и Северной Америки широкое распространение получил анализ полиморфизма митохондриальной ДНК (M.A. Cronin, 1992; E. Randi с соавт., 2001; А.В. Давыдов с соавт., 2007; М.В. Холодова с соавт., 2009; А.Н. Королев с соавт., 2017). Метод стал высокоинформативным инструментом для выяснения филогении и происхождения пород и популяций вида по материнской линии (Ø. Flagstad с соавт., 2003; Н.А. Акопян с соавт., 2016). Микросателлиты нашли широкое применение в прикладных исследованиях генетики северного оленя (установление генетической структуры, характеристика аллелофонда, идентификация и дифференциация особей) (K.H. Røed с соавт., 1998; B.I. Jepsen с соавт., 2002; R. Courtois с соавт., 2003; M.A. Cronin с соавт., 2003; K.A. Zittlau, 2004; P.D. McLoughlin с соавт., 2004; A.D. McDevitt с соавт., 2009; А.И. Баранова с соавт., 2016). Для отечественных популяций северного оленя была разработана мультиплексная панель из 9 микросателлитов, которая успешно зарекомендовала себя в рутинном тестировании (В.Р. Харзинова с соавт., 2015), в том числе стало возможным выявление гибридов дикой и домашней форм (V.R. Kharzinova с соавт., 2016). Однако с развитием новых высокопроизводительных технологий и аналитического оборудования нового поколения (А. Vignal, 2002; Е.К. Хлесткина, 2013) на первый план в генетических исследованиях сельскохозяйственных животных выходят ДНК-чипы на основе генотипирования множественных SNP (single nucleotide polymorphism) (F.J. Steemers с соавт., 2007; S. Mastrangelo с соавт., 2014; Т.Е. Денискова с соавт., 2015; В. Slim с соавт., 2015, Н.А. Зиновьева с соавт., 2016; Т. Е. Денискова с соавт., 2016, R. Yonesaka с соавт. 2016). Несмотря на то, что собственный ДНК-чип для северного оленя отсутствует, применение чипа Bovine SNP50 BeadChip, разработанного для крупного рогатого скота, на сегодняшний день служит наиболее эффективным и высокоинформативным методом исследования генома этого вида (V.R. Kharzinova с соавт., 2015; V.R. Kharzinova с соавт., 2016; V.R. Kharzinova с соавт., 2017).
Северный олень, генетическое разнообразие, генетический маркер, днк-чипы
Короткий адрес: https://sciup.org/142213861
IDR: 142213861 | DOI: 10.15389/agrobiology.2017.6.1083rus
Список литературы Эволюция методов оценки биоразнообразия северного оленя (Rangifer tarandus) (обзор)
- Çalişkan M. Analysis of genetic variation in animals. Rijeka, Croatia, 2012. ISBN: 978-953-51-0093-5.
- Дубинин Н.П., Машуров А.М. Аллельные маркёры при наследовании отдельных участков и целых хромосом у сельскохозяйственных животных. Сельскохозяйственная биология, 1986, 2: 76-79.
- Алтухов Ю.П. Генетические процессы в популяциях. М., 1989.
- Кузнецова И.В. Мониторинг генетической структуры популяции крупного рогатого скота черно-пестрой породы. Автореф. канд. дис. Рязань, 2010.
- Hamrick J.L., Godt M.J.W. Allozyme diversity in plant species. In: Plant population genetics, breeding, and genetic resources/A.H. Brown, M.T. Clegg, A.L. Kahler, B.S. Weir (eds.) Sunderland, 1989.
- Sheng Y., Zheng W., Pei K., Ma K. Genetic variation within and among populations of a dominant desert tree Haloxylon ammodendron (Amaranthaceae) in China. Ann. Bot., 2005, 96(2): 245-252 ( ) DOI: 10.1093/aob/mci171
- Столповский Ю.А. Популяционно-генетические основы сохранения ресурсов генофондов доместицированных видов животных. Автореф. докт. дис. М., 2010.
- Второй доклад о состоянии мировых генетических ресурсов животных для производства продовольствия и ведения сельского хозяйства. 2015. Режим доступа: http://www.fao.org/3/a-i5086r.pdf. Дата обращения: 18.09.2017.
- Савченко А. На север -за оленями. В Эвенкийском районе Красноярского края стартовала экологическая программа по «переписи» дикого северного оленя. 2014. Информационный портал Известия. https://iz.ru/news/569479. Дата обращения: 18.09.2017.
- Логинов В.Г. Оленеводство как базовая отрасль традиционного сектора АПК Севера. Аграрный вестник Урала, 2014, 11(129): 74-77.
- Donahoe B. The troubled taiga: survival on the move for the last nomadic reindeer herders of south Siberia, Mongolia, and China. In: Cultural survival quarterly. Cambridge (Spring), 2003: 12-18.
- Кол Н.В. Генетический полиморфизм в популяции северного оленя (Rangifer tarandus) Республики Тыва (Тоджинского района). Автореф. канд. дис. М., 2006.
- Braend M. Polymorphism in the serum proteins of the reindeer. Nature, 1964, 203: 674 ( ) DOI: 10.1038/203674a0
- Gahne B., Rendel J. Blood and serum groups in reindeer compared with those in cattle. Nature, 1961, 192: 529-530 ( ) DOI: 10.1038/192529a0
- Storset A., Osaisen B., Wika M. Bjarghov R. Genetic markers in the Spitsbergen reindeer. Hereditas, 1978, 88: 113-115 ( ) DOI: 10.1111/j.1601-5223.1978.tb01610.x
- Soldal A.V., Staaland. H. Genetic variation in Norwegian reindeer. Proc. 2nd. Int. Reindeer/Caribou Symp. Roros, Norway, 1979: 396-402.
- Roed K.H. Genetic differences at the transferrin locus in Norwegian semidomestic and wild reindeer (Rangifer tarandus L.). Hereditas, 1985, 102: 199-206 ( ) DOI: 10.1111/j.1601-5223.1985.tb00616.x
- Шубин П.Н. Генетика трансферринов северного оленя и европейского лося. Генетика, 1969, 5(1): 37-41.
- Шубин П.Н., Ефимцева Э.А. Биохимическая и популяционная генетика северного оленя. Ленинград, 1988.
- Шубин П.Н., Ионова Т.А. Идентификация 13 аллелей Tf-локуса у северного оленя (Rangifer tarandus L.). Цитология и генетика, 1983, 25(3): 60-62.
- Южаков А.А. Ненецкая аборигенная порода северных оленей. Автореф. докт. дис. Новосибирск, 2004.
- Roed K.H. Genetic variability in Norwegian semi-domestic reindeer (Rangifer tarandus L.). Hereditas, 1985, 102: 177-184 (10.1111/j.1601-5223.1985.tb00612.x).
- Woese C., Kandler O., Wheelis M. Towards a natural system of organisms: Proposal for the domains Archaea, Bacteria, and Eucarya. PNAS USA, 1990, 87: 4576-4579.
- Абрамсон Н.И. Молекулярные маркеры, филогеография и поиск критерия разграничения видов. Труды Зоологического института РАН, 2009, приложение ¹ 1: 185-198.
- Додохов В.В. Оценка биоразнообразия лошадей якутской породы с использованием ДНК маркеров. Автореф. канд. дис. Якутск, 2017.
- Гончаров В.В., Митрофанова О.В., Дементьева Н.В., Тыщенко В.И., Сергеева O.K., Батырев О.М. Оценка генетического разнообразия домашнего северного оленя в Красноярском крае с использованием RAPD-анализа. Достижения науки и техники АПК, 2009: 43-45.
- Романенко Т.М., Калашникова Л.А., Филиппова Г.И., Лайшев К.А. Генетическая структура популяции северных оленей о. Колгуев ненецкого автономного округа. Достижения науки и техники АПК, 2014, 4: 68-71.
- Романенко Т.М., Филиппова Г.И. Генетический полиморфизм в популяции домашнего северного оленя Канинско-Тиманской тундры Ненецкого АО. Символ науки, 2015, 11: 44-52.
- Кол Н.В., Лазебный О.Е. Полиморфизм ISSR-PCR маркеров в тувинской популяции северного оленя (Rangifer tarandus L.). Генетика, 2006, 42(12): 1731-1734.
- Брызгалов Г.Я. Оценка генетической структуры чукотской породы северных оленей. Вестник ДВО РАН, 2016, 2: 108-112.
- Акопян Н.А., Костюнина О.В., Зиновьева Н.А. Исследование последовательности D-петли митохондриальной ДНК у свиней пород крупная белая и ландрас, разводимых в России. Достижения науки и техники АПК, 2016, 7: 93-95.
- Flagstad Ø., Røed K.H. Refugial origins of reindeer (Rangifer tarandus L.) inferred from mitochondrial DNA sequences. Evolution, 2003, 57(3): 658-670.
- Кол Н.В. Генетический полиморфизм в популяции северного оленя (Rangifer tarandus) Республики Тыва (Тоджинского района). Автореф. канд. дис. М., 2006.
- Давыдов А.В., Холодова М.В., Мещерский И.Г., Груздев А.Р., Сипко Т.П., Кол Н.В., Царев С.А., Железнов-Чукотский Н.К., Мирутенко B.C., Губарь Ю.П., Линьков А.Б., Рожков Ю.И. Дифференциация диких и домашних форм северного оленя (Rangifer tarandus L.) по результатам анализа мтДНК. Сельскохозяйственная биология, 2007, 6: 48-53.
- Холодова М.В., Звычайная Е.Ю., Рожнов В.В., Хахин Г.В., Давыдов А.В., Рожков Ю.И. Северный олень Новой Земли. Результаты анализа мтДНК. Вестник охотоведения, 2009, 6(2): 151-154.
- Баранова А.И., Холодова М.В., Давыдов А.В., Рожков Ю.И. Полиморфизм контрольного региона мтДНК диких северных оленей европейской части России Rangifer tarandus (Mammalia: Artiodaсtyla). Генетика, 2012, 48(9): 1-7.
- Королев А.Н., Мамонтов В.Н., Холодова М.В., Баранова А.И., Шадрин Д.М., Порошин Е.А., Ефимов В.А., Кочанов С.К. Полиморфизм контрольного региона мтДНК северных оленей (Rangifer tarandus) материковой части европейского Северо-Востока России. Зоологический журнал, 2017, 96(1): 106-118 ( ) DOI: 10.7868/S0044513417010147
- Cronin M.A. Intraspecific variation in mitochondrial DNA of North American cervids. J. Mamm., 1992, 73(1): 70-82.
- Gravlund P., Meldgaard M., Paabo S., Arctander P. Polyphyletic origin of the small-bodied, high-arctic subspecies of tundra reindeer (Rangifer tarandus). Mol. Phylogenet. Evol., 1998, 10(2): 151-159 ( ) DOI: 10.1006/mpev.1998.0525
- Douzery E., Randi E. The mitochondrial control region of Cervidae: Evolutionary patterns and phylogenetic content. Mol. Biol. Evol., 1997, 14(11): 1154-1166.
- Polziehn R.O., Strobeck C. Phylogeny of wapiti, red deer, sika deer, and other North American cervids as determined from mitochondrial DNA. Mol. Phylogenet. Evol., 1998, 10(2): 249-258.
- Randi E., Pierpaoli M., Danilkin A. Mitochondrial DNA polymorphism in populations of Siberian and European roe deer (Capreolus pygargus and C. capreolus). Heredity, 1998, 80: 429-437.
- Litt M., Luty J.A. A hypervariable microsatellite revealed by in vitro amplification of dinucleotide repeat within the cardiac muscle actin gene. Am. J. Hum. Genet., 1989, 44: 397-401.
- Tautz D. Hypervariability of simple sequences as a general source for polymorphic DNA markers. Nuc. Acids Res., 1989, 17: 6463-6471.
- Weber J.L., May P.E. Abundant class of human DNA polymorphisms which can be typed using the polymerase chain reaction. Am. J. Hum. Genet., 1989, 44(3): 388-396.
- Chung A.M., Staub J.E., Chen J.F. Molecular phylogeny of Cucumis species as revealed by consensus chloroplast SSR marker length and sequence variation. Genome, 2006, 49: 219-229 ( ) DOI: 10.1139/g05-101
- Rajendrakumar P., Biswal A.K., Balachandran S.M., Srinivasarao K., Sundaram R.M. Simple sequence repeats in organellar genomes of rice: frequency and distribution in genic and intergenic regions. Bioinformatics, 2007, 23: 1-4 ( ) DOI: 10.1093/bioinformatics/btl547
- Engel S.R., Linn R.A., Taylor J.F., Davis S.K. Conservation of microsatellite loci across species of artiodactyls: implications for population studies. J. Mammal., 1996, 77: 504-518 ( ) DOI: 10.2307/1382825
- Wilson G.A., Strobeck C., Wu L., Coffin J.W. Characterization of microsatellite loci in caribou Rangifer tarandus, and their use in other artiodactyls. Mol. Ecol., 1997, 65: 697-699 ( ) DOI: 10.1046/j.1365-294X.1997.00237.x
- Cronin M.A., Patton J.C., Balmysheva N., MacNeil M.D. Genetic variation in caribou and reindeer (Rangifer tarandus). Anim. Genet., 2003, 34: 33-41 ( ) DOI: 10.1046/j.1365-2052.2003.00927.x
- Røed K.H., Midthjell L. Microsatellites in reindeer, Rangifer tarandus, and their use in other cervids. Mol. Ecol., 1998, 7: 1773-1776 ( ) DOI: 10.1046/j.1365-294x.1998.00514.x
- Røed K., Flagstad Ø, Nieminen M., Holand Ø., Dwyer M.J., Carles Vilà N.R. Genetic analyses reveal independent domestication origins of Eurasian reindeer. Proceedings of the Royal Society B, 2008, 275: 1849-1855 () DOI: 10.1098/rspb.2008.0332
- Zittlau K.A. Population genetic analyses of North American caribou (Rangifer tarandus). PhD Thesis. Canada, University of Alberta, 2004.
- Courtois R., Bernatche L., Ouellet J.P., Breton L. Significance of caribou (Rangifer tarandus) ecotypes from a molecular genetics viewpoint. Conserv. Genet., 2003, 4: 393-404 ( ) DOI: 10.1023/A:1024033500799
- McLoughlin P.D., Paetkau D., Duda M., Boutin S. Genetic diversity and relatedness of boreal caribou populations in western Canada. Biol. Conserv., 2004, 118: 593-598 ( ) DOI: 10.1016/j.biocon.2003.10.008
- Côté S.D., Dallas J.F., Marshall F., Irvine R.J., Langvatn R., Albon S.D. Microsatellite DNA evidence for genetic drift and philopatry in Svalbard reindeer. Mol. Ecol., 2002, 11: 1923-1930 ( ) DOI: 10.1046/j.1365-294X.2002.01582.x
- Jepsen B.I., Siegismund H.R., Fredholm M. Population genetics of the native caribou (Rangifer tarandus groenlandicus) and the semi-domestic reindeer (Rangifer tarandus tarandus) in Southwestern Greenland: evidence of introgression. Conserv. Genet., 2002, 3: 401-409 ( ) DOI: 10.1023/A:1020523303815
- McDevitt A.D., Mariani S., Hebblewhite M., DeCesare N.J., Morgantini L., Seip D., Weckworth B.V., Musiani M. Survival in the Rockies of an endangered hybrid swarm from diverged caribou (Rangifer tarandus) lineages. Mol. Ecol., 2009, 18: 665-679 ( ) DOI: 10.1111/j.1365-294X.2008.04050.x
- Харзинова В.Р., Гладырь Е.А., Федоров В.И., Романенко Т.М., Шимит Л.Д., Лайшев К.А., Калашникова Л.А., Зиновьева Н.А. Разработка мультиплексной панели микросателлитов для оценки достоверности происхождения и степени дифференциации популяций северного оленя (Rangifer tarandus). Сельскохозяйственная биология, 2015, 50(6): 756-765 ( ) DOI: 10.15389/agrobiology.2015.6.756rus
- Kharzinova V.R., Dotsev A.V., Solovieva A.D., Fedorov V.I., Brem G., Zinovieva N.A. Estimation of biodiversity and population structure of Russian reindeer (Rangifer tarandus) breeds inhabiting Northeastern Siberia (Republic of Sakha-Yakutia) using microsatellite markers. Journal of Acta Fytotechnica et Zootechnica, 2016, 19: 87-92 ( ) DOI: 10.15414/afz.2016.19.03.87-92
- Холодова М.В., Баранова А.И., Мизин И.А., Рожнов В.В., Сипко Т.П., Давыдов А.В., Рожков Ю.И. Своеобразие генетической структуры новоземельского северного оленя (Rangifer tarandus pearsoni): анализ полиморфизма маркеров ядерной и митохондриальной ДНК. Мат. Межд. совещания «Териофауна России и сопредельных территорий». Х Съезд Териологического общества при РАН. М., 2016: 445.
- Røed K.H. Refugial origin and postglacial colonization of Holarctic reindeer and caribou. Rangifer, 2003, 25: 19-30.
- Ball M.C., Finnegan L., Manseau M., Wilson P. Integrating multiple analytical approaches to spatially delineate and characterize genetic population structure: an application to boreal caribou (Rangifer tarandus caribou) in central Canada. Conserv. Genet., 2010, 11: 2131-2143 ( ) DOI: 10.1007/s10592-010-0099-3
- Kushny J., Coffin J., Strobeck C. Genetic survey of caribou populations using microsatellite DNA. Rangifer, 1994, Special Issue No. 9: 351-354 ( ) DOI: 10.7557/2.16.4.1277
- Баранова А.И., Холодова М.В., Сипко Т.П. Генетическая структура дикого северного оленя (Rangifer tarandus) России на основании полиморфизма микросателлитных локусов. Мат. Всерос. науч. конф., посвященной 70-летнему юбилею кафедры «Зоология и экология» Пензенского государственного университета и памяти профессора В.П. Денисова (1932-1997) «Актуальные вопросы современной зоологии и экологии животных». Пенза, 2016: 21.
- Kharzinova V.R., Dotsev A.V., Kramarenko A.S, Layshev K.A., Romanenko T.M., Solov’eva A.D., Deniskova T.E., Kostyunina O.V., Brem G., Zinovieva N.A. Study of the allele pool and the degree of genetic introgression of semi-domesticated and wild populations of reindeer (Rangifer tarandus L., 1758) using microsatellites. Agricultural Biology, 2016, 51(6): 811-823 ( ) DOI: 10.15389/agrobiology.2016.6.811eng
- Котова С.А., Шило Е.А., Заблоцкая Е.А., Недзвецкая Д.Э., Цыбовский И.С. Феномен перекрестной амплификации микросателлитных ДНК-маркеров в исследовании видов отряда Artiodactyla (парнокопытные). Труды Белорусского государственного университета, 2016, 11(2): 56-69.
- Зиновьева Н.А., Доцев А.В., Сермягин А.А., Виммерс К., Рейер Х., Солкнер Й., Денискова Т.Е., Брем Г. Изучение генетического разнообразия и популяционной структуры российских пород крупного рогатого скота с использованием полногеномного анализа SNP. Сельскохозяйственная биология, 2016, 51(6): 788-800 ( ) DOI: 10.15389/agrobiology.2016.6.788rus
- Vignal A., Milan D., SanCristobal M., Eggen A. A review on SNP and other types of molecular markers and their use in animal genetics. Genet. Sel. Evol., 2002, 34: 275-305 ( ) DOI: 10.1051/gse:2002009
- Хлесткина Е.К. Молекулярные маркеры в генетических исследованиях и в селекции. Вавиловский журнал генетики и селекции, 2013, 17(4/2): 1044-1054.
- Steemers F.J., Gunderson K.L. Whole genome genotyping technologies on the BeadArrayTM platform. Biotechnol. J., 2007, 2: 41-49 ( ) DOI: 10.1002/biot.200600213
- Slim B.J., Mekki B., Mehdi M.B., Lee J.H., Lee S.H. Genome-wide insights into population structure and genetic history of tunisian local cattle using the illumina bovinesnp50 beadchip. BMC Genomics, 2015, 16(1): 677 ( ) DOI: 10.1186/s12864-015-1638-6
- Yonesaka R, Sasazaki S., Yasue H., Niwata S., Inayoshi Y., Mukai F., Mannen H. Genetic structure and relationships of 16 Asian and European cattle populations using DigiTag2 assay. Anim. Sci. J., 2016, 87: 190-196 ( ) DOI: 10.1111/asj.12416
- Денискова Т.Е., Охлопков И.М., Сермягин А.А., Гладырь Е.А., Багиров В.А., Сёлкнер И., Мамаев Н.В., Брем Г., Зиновьева Н.А. Полногеномное SNP-сканирование снежного барана Ovis nivicola. Доклады Академии наук, 2016, 469(5): 625-630.
- Mastrangelo S., Gerlando R.D., Tolone M., Tortorici L., Sardina M.T., Portolano B. and International Sheep Genomics Consortium. Genome wide linkage disequilibrium and genetic structure in Sicilian dairy sheep breeds. BMC Genet., 2014, 15: 108 ( ) DOI: 10.1186/s12863-014-0108-5
- Денискова Т.Е., Сермягин А.А., Багиров В.А., Охлопков И.М., Гладырь Е.А., Иванов Р.В., Брем Г., Зиновьева Н.А. Сравнительное исследование информативности STR и SNP маркеров для внутривидовой и межвидовой дифференциации рода Ovis. Генетика, 2016, 52(1): 90-96 ( ) DOI: 10.7868/S0016675816010021
- Haynes G.D., Latch E.K. Identification of novel single nucleotide polymorphisms (SNPs) in deer (Odocoileus spp.) using the BovineSNP50 BeadChip. PLoS ONE, 2012, 7: e36536 ( ) DOI: 10.1371/journal.pone.0036536
- Kasarda R., Moravčíková N., Trakovická A. Advances in genomic sequencing using Bovine SNP BeadChip in deer. Acta Fytotechnica et Zootechnica, 2014, 17(2): 65-71 ( ) DOI: 10.15414/afz.2014.17.02.65-71
- Kharzinova V.R., Dotsev A.V., Okhlopkov I.M., Layshev K.A., Fedorov V.I., Shimit L.D., Brem G., Wimmers K., Reyer H., Zinovieva N.A. Genetic characteristics of semi-domesticated reindeer populations from different regions of Russia based on SNP analysis. J. Anim. Sci., 2016, 94(Suppl. 5.): 166 ( ) DOI: 10.2527/jam2016-0346
- Kasarda R., Moravcíková N., Židek R., Mészáros G., Kadlečík O., Trakovická A., Pokorádi J. Investigation of the genetic distances of bovids and cervids using BovineSNP50k BeadChip. Arch. Anim. Breed., 2015, 58: 57-63 ( ) DOI: 10.5194/aab-58-57-2015
- Kharzinova V.R., Sermyagin A.A., Gladyr E.A., Okhlopkov I.M., Brem G., Zinovieva N.A. A study of applicability of SNP chips developed for Bovine and Ovine species to whole-genome analysis of reindeer Rangifer tarandus. J. Heredity, 2015, 106(6): 758-761. ( ) DOI: 10.1093/jhered/esv081
- Kharzinova V.R., Dotsev A.V., Solovieva A.D., Fedorov V.I., Okhlopkov I.M., Wimmers K., Reyer H., Brem G., Zinovieva N.A. Population-genetic characteristics of domestic reindeer of Yakutia based on whole-genome SNP analysis. Agricultural Biology, 2017, 52(4): 669-678 ( ) DOI: 10.15389/agrobiology.2017.4.669eng