Конверсия полимеров зерна пшеницы и кукурузы под влиянием фитолитических и протеолитических ферментов
Автор: Римарева Л.В., Оверченко М.Б., Серба Е.М., Игнатова Н.И., Шелехова Н.В.
Журнал: Сельскохозяйственная биология @agrobiology
Рубрика: Кормовые ферментативные гидролизаты
Статья в выпуске: 2 т.56, 2021 года.
Бесплатный доступ
В состав зерна, помимо крахмала, гемицеллюлоз и белка, входят фитиновая кислота и ее соли. Показано, что фитазы способствуют высвобождению фосфора, улучшению переваримости питательных веществ кормов, повышению мясной продуктивности животных и птицы. В то же время мало изучено каталитическое действие фитаз и протеаз на степень деструкции полисахаридов и белковых полимеров зернового сырья, высвобождение катионов и анионов, особенно при приготовлении зернового сусла в производстве спирта. В представленной работе мы впервые показали, что в результате фитолитического действия в зерновом сусле происходит не только высвобождение фосфатов и катионов металлов, но и увеличение концентрации анионов органических солей. Совместное действие фитолитических и протеолитических ферментов на полимеры зернового сырья повышает степень их каталитической деструкции с образованием растворимых форм углеводов, азотистых веществ, катионов и анионов, способствует получению обогащенного зернового сусла с хорошими реологическими свойствами. Целью работы была оценка эффективности влияния ферментных препаратов фитолитического и протеолитического действия на конверсию высокомолекулярных полимеров пшеничного и кукурузного сырья в процессе приготовления зернового сусла. Объектами исследования служили зерно пшеницы ( Triticum sp.) и кукурузы ( Zea mays ). Зерновое сусло готовили в колбах Эрленмейера, содержащих 50 г зерновой муки и 150 см3 воды и помещенных в водяную баню. На стадии приготовления зернового замеса для декстринизации крахмала применяли термостабильную a-амилазу из расчета 0,6 ед. АС/г крахмала. Для получения зернового сусла осахаривание крахмала и гидролиз некрахмальных полисахаридов в контроле осуществляли ферментными препаратами - источниками глюкоамилазы (9,0 ед. ГлС/г крахмала) и ксиланазы (0,15 ед. КС/г сырья). В опытных вариантах вводили ферментный препарат, содержащий фитазу (от 1,0 до 2,5 ед. ФС/г сырья), а также ФП протеолитического действия (0,1 ед. ПС/г сырья). Состав основных полимеров зернового сырья, концентрацию зернового сусла, содержание редуцирующих углеводов (РВ) определяли согласно инструкции технохимического контроля спиртового производства, концентрацию аминного азота (NH2+) - методом, основанным на способности аминокислот образовывать растворимые медные соединения с суспензией фосфорнокислой меди. Динамическую вязкость зернового сусла оценивали посредством вибрационной вискозиметрии. Изучение ионного состава зернового замеса и сусла проводили, используя систему капиллярного электрофореза серии PrinCE-560 («PrinCE Technologies B.V.», Нидерланды), оснащенную кондуктометрическим детектором. Установлено, что использование фитолитических ферментов способствовало снижению вязкости пшеничного и кукурузного сусла более чем на 20 %, увеличению количества редуцирующих углеводов - на 9,5-11,3 %, повышению количества высвобождаемых ионов - в 2,1-2,4 раза. Содержание аминного азота в сусле существенно не изменялось. Показано, что в результате фитолитического действия повышалась концентрация анионов органических солей, таких как оксалаты, малаты, цитраты и сукцинаты в пшеничном сусле и оксалаты, малаты, цитраты и лактаты в кукурузном сусле. Выявлено более существенное влияние фитазы при подготовке сусла из кукурузы: концентрация фосфатов в питательной среде увеличилась в 3,9 раза (в пшеничном сусле - в 1,6 раза), ионов калия и магния - на 12 и 22 % по сравнению с аналогичными показателями в контроле. Подобрана оптимальная дозировка фитазы (1,5 ед/г сырья), обеспечивающая максимальное высвобождение ионов, идентифицированных методом капиллярного электрофореза, и эффективную конверсию полисахаридов, белковых и фитиновых веществ зерна. Биокаталитическая обработка зерна комплексом ферментов, который наряду с амилазами и ксиланазой включал фитазу и протеазы, способствовала повышению в пшеничном и кукурузном сусле концентрации редуцирующих углеводов на 16,8 и 18,8 %, аминного азота - в 1,7 и 1,9 раза, снижению вязкости - на 41,7 и 44,7 %.
Фитаза, протеаза, пшеничное и кукурузное сырье, биокатализ, ионы, катионы, фосфор, зерновое сусло
Короткий адрес: https://sciup.org/142229483
IDR: 142229483 | DOI: 10.15389/agrobiology.2021.2.374rus
Список литературы Конверсия полимеров зерна пшеницы и кукурузы под влиянием фитолитических и протеолитических ферментов
- Кривченко В.А., Туршатов М.В., Соловьев А.О., Абрамова И.М. Спиртовое производство — технологическая основа комплексной переработки зерна с получением пищевых продуктов. Пищевая промышленность, 2019, 4: 53-54 (doi: 10.24411/0235-2486-2019-10027).
- Степанов В.И., Иванов В.В., Шариков А.Ю., Амелякина М.В., Поливановская Д.В., Серба Е.М. Управляемая система непрерывной переработки растительного сырья на основе термомеханических и биокаталитических процессов. Пищевая промышленность, 2019, 4: 101-102 (doi: 10.24411/0235-2486-2019-10052).
- Ronghou L., Fei S. Impacts of main factors on bioethanol fermentation from stalk juice of sweet sorghum by immobilized Saccharomyces cerevisiae (CICC 1308). Bioresource Technology, 2008, 99(4): 847-854 (doi: 10.1016/j.biortech.2007.01.009).
- Серба Е.М., Абрамова И.М., Римарева Л.В., Оверченко М.Б., Игнатова Н.И., Грунин Е.А. Влияние ферментных препаратов на технологические показатели зернового сусла и качество спирта. Пиво и напитки, 2018, 1: 50-54 (doi: 10.24411/2072-9650-2018-00002).
- Du Y., Shi P., Huang H., Zhang X., Luo H., Wang Y., Yao B. Characterization of three novel thermophilic xylanases from Humicola insolens Y1 with application potentials in the brewing industry. Bioresource Technology, 2013, 130: 161-167 (doi: 10.1016/j.biortech.2012.12.067).
- Vinetsky Y.P., Rozhkova A.M., Sereda A.S., Tsurikova N.V., Nurtaeva A.K., Semenova M.V., Zorov I.N., Sinitsyn A.P. Increase in glucoamylase productivity of Aspergillus awamori strain by combination of radiation mutagenesis and plasmid transformation methods. Applied Biochemistry and Microbiology, 2010, 46(6): 633-640 (doi: 10.1134/S0003683810060128).
- Benesova K., Belakova S., Mikullkova R., Svoboda Z. Survey of the analytical methods for the phytic acid determination. Kvasny Prumysl, 2013, 59(5): 127-133 (doi: 10.18832/kp2013013).
- Mikulski D., Klosowski G. Phytic acid concentration in selected raw materials and analysis of its hydrolysis rate with the use of microbial phytases during the mashing process. Journal of the Institute of Brewing, 2015, 121(2): 213-218 (doi: 10.1002/jib.221).
- De Carli L., Schnitzler E., Ionashiro M., Szpoganicz B., Rosso N.D. Equilibrium, thermoana-lytical and spectroscopic studies to characterize phytic acid complexes with Mn(II) and Co(II). Journal of the Brazilian Chemical Society, 2009, 20(8): 1515-1522 (doi: 10.1590/S0103-50532009000800019).
- Римарева Л.В., Оверченко М.Б., Игнатова Н.И., Кривова А.Ю., Серба Е.М. Генерация спиртовых дрожжей на средах, приготовленных из зерновых культур с различным содержанием фитата. Пищевая промышленность, 2019, 4: 83-85 (doi: 10.24411/0235-2486-201910042).
- Dost K., Tokul O. Determination of phytic acid in wheat and wheat products by reverse phase high performance liquid chromatography. Analytica Chimica Acta, 2006, 558(1-2): 22-27 (doi: 10.1016/j.aca.2005.11.035).
- Lee K.-M., Kang H.-S., Yun C.-H., Kwak H.-S. Potential in vitro protective effect of quercetin, catechin, caffeic acid and phytic acid against ethanol-induced oxidative stress in SK-Hep-1 cells. Biomolecules and Therapeutics, 2012, 20(5): 492-498 (doi: 10.4062/biomolther.2012.20.5.492).
- Greiner R., Konietzny U. Phytase for food application. Food Technology and Biotechnology, 2006, 44(2): 125-140.
- Lonnerdal B. Phytic acid-trace element (Zn, Cu, Mn) interactions. International Journal of Food Science and Technology, 2002, 37(7): 749-758 (doi: 10.1046/j.1365-2621.2002.00640.x).
- Bretti C., Cigala R.M., Stefano C.D., Lando G., Sammartano S. Interaction of phytate with Ag+, CH3Hg+, Mn2+, Fe2+, Co2+, and VO2+: Stability constants and sequestering ability. Journal of Chemical and Engineering Data, 2012, 57(10): 2838-2847 (doi: 10.1021/je300755y).
- Nielsen A.V.F., Tetens I., Meyer A.S. Potential of phytase-mediated iron release from cereal-based foods: a quantitative view. Nutrients, 2013, 5(8): 3074-3098 (doi: 10.3390/nu5083074).
- Yu S., Cowieson A., Gilbert C., Plumstead P., Dalsgaard S. Interactions of phytate and myoinositol phosphate esters (IPl-5) including IP5 isomers with dietary protein and iron and inhibition of pepsin. Journal of Animal Science, 2012, 90(6): 1824-1832 (doi: 10.2527/jas.2011-3866).
- Жульков А.Ю., Витол И.С., Карпиленко Г.П. Роль зерновой фитазы при производстве и сбраживании ржаного сусла. Часть I. Исследование фитазного комплекса ржи. Хранение и переработка сельхозсырья, 2009, 5: 50-55.
- Hesampour A., Ranaei O., Malboobi M.A., Harati J., Mohandesi N. Comparison of biochemical properties of recombinant phytase expression in the favorable methylotrophic platforms of Pichia pastoris and Hansenula polymorpha. Progress in Biological Sciences, 2014, 4(1): 97-111 (doi: 10.22059/PBS.2014.50309).
- Zhao W., Xiong A, Fu X., Gao F., Tian Y., Peng R. High level expression of an acid-stable phytase from Citrobacter freundii in Pichia pastoris. Applied Biochemistry and Biotechnology, 2010, 162(8): 2157-2165 (doi: 10.1007/s12010-010-8990-4).
- Tarutina M.G., Kashirskaya M.D., Lazareva M.N., Lapteva A.R., Dobrynin V.Y., Gordeeva T.L., Sineoky S.P. Comparative characteristics of phytases from Citrobacter freundii and Yersinia intermedia expressed in Ogataea polymorpha and Pichia pastoris methylotrophic yeasts. Biotekhnologiya, 2019, 35(6): 51-56 (doi: 10.21519/0234-2758-2019-35-6-51-56).
- Ленкова Т.Н., Егорова Т.А., Меньшенин И.А., Сысоева И.Г. Отечественная фитаза в комбикормах для кур-несушек. Птица и птицепродукты, 2016, 1: 37-40.
- Кулова Ф.М. Влияние ферментного препарата фитаза в рационах с различным уровнем минералов на зоотехнические показатели телят. Известия Горского государственного аграрного университета, 2016, 53(1): 71-76.
- Sapna, Singh B. Phytase production by Aspergillus oryzae in solid-state fermentation and its applicability in dephytinization of wheat ban. Applied Biochemistry and Biotechnology, 2014, 173(7): 1885-1895 (doi: 10.1007/s12010-014-0974-3).
- Veiga N., Torres J., Godage H.Y., Riley A.M., Domínguez S., Potter B.V.L., Díaz A., Kremer C. The behaviour of inositol 1,3,4,5,6-pentakisphosphate in the presence of the major biological metal cations. European Journal of Biochemistry, 2009, 14(7): 1001-1013 (doi: 10.1007/s00775-009-0510-z).
- Canan C., Delaroza F., Casagrande R., Baracat M.M., Shimokomaki M., Ida E.I. Antioxidant capacity of phytic acid purified from rice bran. Acta Scientiarum Technology, 2012, 34(4): 457463 (doi: 10.4025/actascitechnol.v34i4.16358).
- Kruger J., Oelofse A., Taylor J., Taylor J.R.N. Potential for improvement in yeast nutrition in raw whole grain sorghum and maize lager brewing and bioethanol production through grain genetic modification and phytase treatment. Journal of the Institute of Brewing, 2012, 118(1): 70-75 (doi: 10.1002/jib.86).
- Polyakov V.A., Serba E.M., Overchenko M.B., Ignatova N. I., Rimareva L.V. The effect of a complex phytase-containing enzyme preparation on the rye wort fermentation process. Foods and Raw Materials, 2019, 7(2): 221-228 (doi: 10.21603/2308-4057-2019-2-221-228).
- Поляков В.А., Абрамова И.М., Полыгалина Г.В., Римарева Л.В., Корчагина Г.Т., Писка-рева Е.Н. Инструкция по технохимическому и микробиологическому контролю спиртового производства. М., 2007.
- 0ФС.1.2.3.0022.15. Определение аминного азота методами формольного и йодометриче-ского титрования. Государственная фармакопея Российской Федерации, XIII(I), 2015. Режим доступа: http://rdocs3.kodeks.ru/document/420324574). Без даты.
- Шелехова Н.В., Римарева Л.В. Исследование ионного состава полупродуктов спиртового производства с использованием методов капиллярного электрофореза. Производство спирта и ликероводочных изделий, 2012, 3: 25-27.
- De Stefano С., Giuffre O., Milea D., Rigano C., Sammartano S. Speciation of phytate ion in aqueous solution. Non covalent interactions with biogenic polyamines. Chemical Speciation and Bioavailability, 2003, 15(2): 29-36 (doi: 10.3184/095422903782775235).
- Muraoka S., Miura T. Inhibition of xanthine oxidase by phytic acid and antioxydant activity. Life Sciences, 2004, 74(13): 1691-1700 (doi: 10.1016/j.lfs.2003.09.040).
- Abu El-Saad A.S., Mahmoud H.M. Phytic acid exposure alters aflatoxin B1-induced reproductive and oxidative toxcicity in albino rats (Rattus norvegicus). Evidence-based Complementary and Alternative Medicine, 2009, 6(3): 331-341 (doi: 10.1093/ecam/nem137).