Культивирование проростков льна (Linum L.) и их реакция на действие ионов кадмия в условиях in vitro: уровень стрессовой реакции и накопление полифенолов

Автор: Гончарук Е.А., Нечаева Т.Л., Карташов А.В., Загоскина Н.В.

Журнал: Сельскохозяйственная биология @agrobiology

Рубрика: Технологии in vitro

Статья в выпуске: 5 т.59, 2024 года.

Бесплатный доступ

В видовом многообразии рода Linum L., представленного более чем 200 видами, единственным культурным является Linum usitatissimum L. К наиболее востребованным продуктам возделывания льна относятся льняное волокно высокой прочности, жмых, костра (отходы после трепания льна - одревесневшие части стебля, преимущественно в виде мелкой соломки), а также высокопитательное льняное масло - источник короткоцепочечных полиненасыщенных омега-3 и омега-6 жирных кислот, линоленовой кислоты, витаминов A, B, D и E, клетчатки и белка. Отмечены также высокие декоративные качества льна в ландшафтном озеленении. На сегодняшний день экологическая обстановка в льносеющих регионах неблагоприятна, в том числе из-за загрязнения окружающей среды тяжелыми металлами, в частности кадмием (Cd) - высокотоксичным и подвижным в почвенном растворе элементом первого класса опасности. Его праймерное действие ингибирует физиологически важные ростовые процессы, повышает генерацию активных форм кислорода, инициирует процессы окисления белков и липидов. Все это нарушает эффективное функционирование и активность антиоксидантной системы в растениях, в том числе ее неферментативную составляющую, представленную низкомолекулярными антиоксидантами, к числу которых относятся полифенолы. Последние способны взаимодействовать с активными формами кислорода, количество которых повышается при действии Cd. В настоящей работе впервые проведена оценка стрессовой реакции на действие этого представителя тяжелых металлов у in vitro проростков трех разновидностей льна как модельной биотехнологической системы, а также изучена их способность к накоплению полифенолов - эффективных биоантиоксидантов и основных компонентов фенольного комплекса. Мы сравнили ответные реакций in vitro проростков на действие Cd по их морфофизиологическим характеристикам, уровню перекисного окисления липидов (ПОЛ) и содержанию фенольных соединений, в том числе фенилпропаноидов и флавоноидов. Объектом исследования служили in vitro стерильные проростки льна прядильного (лен-долгунец, сорт Ленок), масличного (лен масличный, сорт Санлин) ( Linum usitatissimum L.), а также декоративного (лен крупноцветковый Linum grandiflorum Desf., сорт Red) назначения. Для их получения проводили последовательную стерилизацию семян, которые затем помещали на содержащие сахарозу (2 %) безгормональные агаризованные питательные среды Мурасиге-Скуга (лен-долгунец и лен масличный) и Гамборга В5 (лен крупноцветковый). При проведении эксперимента 14-суточные проростки льна подвергали экзогенному воздействию 75 мкМ водного раствора нитрата кадмия (опытный вариант) или воды (контрольный вариант) посредством внесения в прикорневую зону. После 7 сут воздействия анализировали морфометрические параметры проростков (длина гипокотиля и главного корня) и содержание в них воды. Биохимические определения проводили в растительном материале, зафиксированном жидким азотом. Содержание Cd анализировали методом атомно-абсорбционной спектрофотометрии. Фенольные соединения извлекали 96 % этанолом и проводили спектрофотометрическое определение содержания суммы фенольных соединений, фенилпропаноидов и флавоноидов. Уровень ПОЛ определяли по реакции с тиобарбитуровой кислотой. Установлено, что in vitro проростки трех разновидностей льна различались по физиолого-биохимическим параметрам, что и определяет их ответную реакцию на действие Cd. Уже на ранних этапах онтогенеза в условиях in vitro видоспецифичность проявлялась при формировании корневой системы, образовании реакционных продуктов ПОЛ, а также в накоплении фенольных соединений и поглощении тяжелого металла. Самое высокое содержание Cd выявлено у in vitro проростков льна-долгунца - более эффективного аккумулятора Cd относительно льна масличного и льна крупноцветкового. Оно превышало этот показатель у льна масличного и льна крупноцветкового соответственно на 20,2 и 23,6 % (р ≤ 0,05). При этом уровень ПОЛ снижался только у льна масличного и льна крупноцветкового - соответственно на 24,2 и 34,2 % (р ≤ 0,05) относительно контроля, что свидетельствует об активации их защитных систем в ответ на действие поллютанта. Повышение суммарного содержания фенольных соединений, а также их различных классов (фенилпропаноидов и флавоноидов) в ответ на действие Cd отмечено только у льна масличного (соответственно на 14 %, 70 % и 49 %, р ≤ 0,05) относительно контроля, что указывает на активацию защитных систем. Все полученные данные демонстрируют различные ответные реакции in vitro проростков трех разновидностей льна под влиянием Cd, что обусловлено их видоспецифичностью. В этих условиях более выраженный ответ на уровне фенольного метаболизма характерен для льна масличного, у которого способность синтезировать эти вторичные соединения и активировать функции антиоксидантной системы была выше, чем у двух других представителей рода Linum.

Еще

Linum usitatissimum l, linum grandiflorum desf, проростки in vitro, кадмий, морфология, перекисное окисление липидов, полифенолы

Короткий адрес: https://sciup.org/142243779

IDR: 142243779   |   DOI: 10.15389/agrobiology.2024.5.995rus

Список литературы Культивирование проростков льна (Linum L.) и их реакция на действие ионов кадмия в условиях in vitro: уровень стрессовой реакции и накопление полифенолов

  • Rogers C.M. The systematics of Linum sect. Linopsis (Linaceae). Plant Systematics and Evolution, 1982, 140(2-3): 225-334 (doi: 10.1007/bf02407299).
  • Светлова А.А. Таксономический обзор рода Linum L. (Linaсеае) флоры России и сопредельных государств Новости систематики высших растений, 2010, 41: 99-65 (doi: 10.31111/novitates/2010.41.99).
  • Ramesh M.J.P.I.M.S. Flax (Linum usitatissimum L.) fibre reinforced polymer composite materials: A review on preparation, properties and prospects. Progress in Materials Science, 2019, 102: 109-166 (doi: 10.1016/j.pmatsci.2018.12.004).
  • Pisupati A., Willaert L., Goethals F., Uyttendaele W., Park C.H. Variety and growing condition effect on the yield and tensile strength of flax fibers. Industrial Crops and Products, 2021, 170: 113736 (doi: 10.1016/j.indcrop.2021.113736).
  • Yang J., Wen C., Duan Y., Deng Q., Peng D., Zhang H., Ma H. The composition, extraction, analysis, bioactivities, bioavailability and applications in food system of flaxseed (Linum usitatissimum L.) oil: A review. Trends in Food Science and Technology, 2021, 18: 252-260 (doi: 10.1016/j.tifs.2021.09.025).
  • Page J., Amziane S., Gomina M., Djelal C., Audonnet F. Using linseed oil as flax fibre coating for fibre-reinforced cementitious composite. Industrial Crops and Products, 2021, 161: 113168 (doi: 10.1016/j.indcrop.2020.113168).
  • Asad B., Khan T., Gul F.Z., Ullah M.A., Drouet S., Mikac S., Garros L., Ferrier M., Bose S., Munsch T., Tungmunnithum D., Lanoue A., Giglioli-Guivarc’h N., Hano C., Abbasi B.H. Scarlet flax Linum grandiflorum (L.) in vitro cultures as a new source of antioxidant and anti-inflammatory lignans. Molecules, 2021, 26 (15): 4511 (doi: 10.3390/molecules26154511).
  • Villalvazo-Hernández A., Burgos-Hernández M., González D. Phylogenetic analysis and flower color evolution of the subfamily Linoideae (Linaceae). Plants, 2022, 11(12): 1579 (doi: 10.3390/plants11121579).
  • Goncharuk E.A., Zagoskina N.V. Heavy metals, their phytotoxicity, and the role of phenolic antioxidants in plant stress responses with focus on cadmium: review. Molecules, 2023, 28: 3921 (doi: 10.3390/molecules28093921).
  • Yang G.L., Zheng M.M., Tan A.J., Liu Y.T., Feng D., Lv S. M. Research on the mechanisms of plant enrichment and detoxification of cadmium. Biology, 2021, 10(6): 544 (doi: 10.3390/biology10060544).
  • Andresen E., Küpper H. Cadmium toxicity in plants. Metal Ions in Life Sciences, 2013, 11: 395 (doi: 10.1007/978-94-007-5179-8_13).
  • Ulrich A.E. Cadmium governance in Europe’s phosphate fertilizers: Not so fast? Science of the Total Environment, 2019, 650: 541-545 (doi: 10.1016/j.scitotenv.2018.09.014).
  • Li B., Chen Z., Li Y., Yang W., Wang W. Visualization analysis of graphene and its composites for heavy metal wastewater applications. Environmental Science and Pollution Research, 2019, 26: 27752-27760 (doi: 10.1007/s11356-019-05983-5).
  • Hui C.Y., Guo Y., Li H., Gao C.X., Yi J. Detection of environmental pollutant cadmium in water using a visual bacterial biosensor. Scientific reports, 2022, 12(1): 6898 (doi: 10.1038/s41598-022-11051-9).
  • Zulfiqar U., Ayub A., Hussain S., Waraich E.A., El-Esawi M.A., Ishfaq M., Ahmad M., Ali M., Maqsood M.F. Cadmium toxicity in plants: Recent progress on morpho-physiological effects and remediation strategies. Journal of Plant Nutrition and Soil Science, 2022, 22: 212-269 (doi: 10.1007/s42729-021-00645-3).
  • Ivanov A.A., Kosobryukhov A.A. Ecophysiology of plants under cadmium toxicity: Photosynthetic and physiological responses. In: Plant ecophysiology and adaptation under climate change: mechanisms and perspectives I. Springer: Singapore, 2020: 429-484 (doi: 10.1007/978-981-15-2156-0_15).
  • Khaliq M.A., James B., Chen Y.H., Saqib H.S.A., Li H.H., Jayasuriya P., Guo W. Uptake, translocation, and accumulation of Cd and its interaction with mineral nutrients (Fe, Zn, Ni, Ca, Mg) in upland rice. Chemosphere, 2019, 215: 916-924 (doi: 10.1016/j.chemosphere.2018.10.077).
  • Cuypers A., Vanbuel I., Iven V., Kunnen K., Vandionant S., Huybrechts M., Hendrix S. Cadmium- induced oxidative stress responses and acclimation in plants require fine-tuning of redox biology at subcellular level. Free Radical Biology and Medicine, 2023, 199: 81-96 (doi: 10.1016/j.freeradbiomed.2023.02.010).
  • Zagoskina N.V., Zubova M.Y., Nechaeva T.L., Kazantseva V.V., Goncharuk E.A., Katanskaya V.M., Baranova E.N., Aksenova M.A. Polyphenols in plants: structure, biosynthesis, abiotic stress regulation, and practical applications (Review). International Journal of Molecular Sciences, 2023, 24: 13874 (doi: 10.3390/ijms241813874).
  • Wang Y., Lei Z., Ye R., Zhou W., Zhou Y., Zou Z., Li J., Yi L., Dai Z. Effects of cadmium on physiochemistry and bioactive substances of muskmelon (Cucumis melo L.). Molecules, 2022, 27: 2913 (doi: 10.3390/molecules27092913).
  • Belšcak-Cvitanovic A., Durgo K., Hudek A., Bacun-Družina V., Komes D. Overview of polyphenols and their properties. In: Polyphenols: properties, recovery, and applications /C.M. Galanakis (ed.). Elsevier, Amsterdam, 2018: 3-44 (doi: 10.1016/B978-0-12-813572-3.00001-4).
  • Nurzyńska-Wierdak R. Phenolic compounds from new natural sources — plant genotype and ontogenetic variation. Molecules, 2023, 28(4): 1731 (doi: 10.3390/molecules28041731).
  • Rogge S.A., Neugart S., Schreiner M., Meyhöfer R. Phenolic compounds in different stages of ontogenesis in chrysanthemum—a potential for thrips-resistance characterisation. Horticulturae, 2024, 10(8): 822 (doi: 10.3390/horticulturae10080822).
  • Moazzen A., Öztinen N., Ak-Sakalli E., Kosar M. Structure-antiradical activity relationships of 25 natural antioxidant phenolic compounds from different classes. Heliyon, 2022, 8: e10467 (doi: 1016/j.heliyon.2022.e10467).
  • Гончарова Ю.К., Гончаров С.В., Харитонов Е.М., Фотев Ю.В., Симонова В.В., Очкас Н.А. Антиоксиданты растительного происхождения и их нетрадиционные источники (обзор). Сельскохозяйственная биология, 2024, 59(1): 39-53 (doi: 10.15389/agrobiology.2024.1.39rus).
  • Cullis C.A. Fundamental insights into plant biology that might be offered by flax. In: Genetics and genomics of Linum, Springer, Cham., 2019: 261-263 (doi: 10.1007/978-3-030-23964-0_17).
  • Goudenhooft C., Bourmaud A., Baley C. Flax (Linum usitatissimum L.) fibers for composite reinforcement: exploring the link between plant growth, cell walls development, and fiber properties. Frontiers in Plant Science, 2019, 10: 411 (doi: 10.3389/fpls.2019.00411).
  • Ramsay A., Fliniaux O., Quéro A., Molinié R., Demailly H., Hano C., Paetz C., Roscher A., Grand E., Kovensky J., Schneider B., Mesnard F. Kinetics of the incorporation of the main phenolic compounds into the lignan macromolecule during flaxseed development. Food Chem. 2017, 217: 1-8 (doi: 10.1016/j.foodchem.2016.08.039).
  • Garros L., Drouet S., Corbin C., Decourtil C., Fidel T., de Lacour J.L., Leclerc E.A., Renouard S., Tungmunnithum D., Doussot J., Abassi B.H., Maunit B., Laine E., Fliniaux O., Mesnard F., Hano C. Insight into the influence of cultivar type, cultivation year, and site on the lignans and related phenolic profiles, and the health-promoting antioxidant potential of flax (Linum usitatissimum L.) seeds. Molecules, 2018, 23: 2636 (doi: 10.3390/molecules23102636).
  • Gai F., Janiak M.A., Sulewska K., Peiretti P.G., Karamac M. Phenolic compound profile and antioxidant capacity of flax (Linum usitatissimum L.) harvested at different growth stages. Molecules, 2023, 28: 1807 (doi: 10.3390/molecules28041807).
  • Le T.N., Luong H.Q., Li H.P., Chiu C.H., Hsieh P.C. Broccoli (Brassica oleracea L. var. italica) sprouts as the potential food source for bioactive properties: a comprehensive study on in vitro disease models. Foods, 2019, 8(11): 532 (doi: 0.3390/foods8110532).
  • Sharde R., Tripathi M.K., Bhatt D., Tiwari S., Sharma M., Tomar Y., Tripathi N. Influence of plant growth regulators on in vitro morphogenesis in sprout culture of potato (Solanum tuberosum L.). Potato Research, 2024, 67: 399-420 (doi: 10.1007/s11540-023-09640-w).
  • Гончарук Е.А., Загоскина Н.В. Кадмий как регулятор защитно-приспособительных реакций растений. Субтропическое и декоративное садоводство, 2018, 64: 144-149.
  • Рогожин В.В., Рогожина Т.В. Практикум по физиологии и биохимии растений. СПб, 2013.
  • Shevyakova N.I., Il'Ina E.N., Stetsenko L.A., Kuznetsov V.V. Nickel accumulation in rape shoots (Brassica napus L.) increased by putrescine. International Journal of Phytoremediation, 2011, 13(4): 345-356 (doi: 10.1080/15226514.2010.495147).
  • Николаева Т.Н., Лапшин П.В., Загоскина Н.В. Метод определения суммарного содержания фенольных соединений в растительных экстрактах с реактивом Фолина-Дениса и реактивом Фолина-Чокальтеу: модификация и сравнение. Химия растительного сырья, 2021, 2: 291-299 (doi: 10.14258/jcprm.2021028250).
  • Goncharuck E.A., Kazantseva V.V., Zagoskina N.V. Effect of hypothermia on the composition of phenolics in buckwheat plants with different ploidy. Russian Journal of Plant Physiology, 2021, 68: 1227-1235 (doi: 10.1134/S1021443721050046).
  • Barriuso B., Astiasarán I., Ansorena D. A review of analytical methods measuring lipid oxidation status in foods: a challenging task. European Food Research and Technology, 2013, 236: 1- 15 (doi: 10.1007/s00217-012-1866-9).
  • Hodges D.M., DeLong J.M., Forney C.F., Prange R.K. Improving the thiobarbituric acidreactive- substances assay for estimating lipid peroxidation in plant tissues containing anthocyanin and other interfering compounds. Planta, 1999, 207(4): 604-611 (doi: 10.1007/s004250050524).
  • Серебрякова Т.И., Воронин Н.С., Еленевский А.Г., Батыгина Т.Б., Шорина Н.И., Савиных Н.П. Ботаника с основами фитоценологии: Анатомия и морфология растений. М., 2006.
  • Рогаш А.Р. Льноводство. М., 1967.
  • Литвинова И.И., Гладков Е.А. Введение в культуру клеток у растений, используемых в качестве кормовых, лекарственных и декоративных, для получения стрессоустойчивых форм. Сельскохозяйственная биология, 2012, 4: 94-99 (doi: 10.15389/agrobiology.2012.4.94eng).
  • Жученко А.А. Адаптивная система селекции растений (экологогенетические основы). М., 2001.
  • Серегин И.В., Иванов В.Б. Физиологические аспекты токсического действия кадмия и свинца на высшие растения. Физиология растений, 2001, 4: 606-630.
  • Hendrix S., Jozefczak M., Wójcik M., Deckers J., Vangronsveld J., Cuypers A. Glutathione: A key player in metal chelation, nutrient homeostasis, cell cycle regulation and the DNA damage response in cadmium-exposed Arabidopsis thaliana. Plant Physiology and Biochemistry, 2020, 154: 498-507 (doi: 10.1016/j.plaphy.2020.06.006).
  • Brodersen C., McElrone A. Maintenance of xylem network transport capacity: a review of embolism repair in vascular plants. Frontiers in Plant Science, 2013, 4: 108 (doi: 10.3389/fpls.2013.00108).
  • Farjaminezhad R., Garoosi G. Prediction of the effect of chitosan on cell suspension culture of Azadirachta indica by response surface methodology. Plant Cell, Tissue and Organ Culture (PCTOC), 2021, 146(2): 323-337 (doi: 10.1007/s11240-021-02072-9).
  • Saleem M.H., Ali S., Hussain S., Kamran M., Chattha M.S., Ahmad S., Ageel M., Rizwan M., Aliarba N.A., Alrahtani S., Abdel-Daim M.M. Flax (Linum usitatissimum L.): a potential candidate for phytoremediation? Biological and economical points of view. Plants, 2020, 9(4): 496 (doi: 10.3390/plants9040496).
  • Сиромля Т.И., Загурская Ю.В. Проблемы исследования процессов аккумуляции и гипераккумуляции растениями химических элементов. Журнал общей биологии, 2021, 82(4): 283-296 (doi: 10.31857/S0044459621030076).
  • Горбунова В.А., Зубкова В.М., Белозубова Н.Ю. Продуктивность и фотосинтетическая деятельность растений льна-долгунца при загрязнении почвы кадмием. Аграрная Россия, 2020, 3: 27-32 (doi: 10.30906/1999-5636-2020-3-27-32).
  • Hasanuzzaman M, Borhannuddin Bhuyan M.H.M., Zulfiqar F., Raza A., Mohsin S.M., Al Mahmud J. Reactive oxygen species and antioxidant defense in plants under abiotic stress: revisiting the crucial role of a universal defense regulator. Antioxidants, 2020, 9(8): 681-733 (doi: 10.3390/antiox9080681).
  • Новохатин В.В., Шеломенцева Т.В., Драгавцев В.А. Новый комплексный подход к изучению динамики повышения адаптивности и гомеостатичности у сортов мягкой яровой пшеницы (на примере длительной истории селекции в Северном Зауралье). Сельскохозяйственная биология, 2022, 7(1): 81-97 (doi: 10.15389/agrobiology.2022.1.81rus).
  • Huang H., Ullah F., Zhou D.X., Yi M., Zhao Y. Mechanisms of ROS regulation of plant development and stress responses. Frontiers in Plant Science, 2019, 10: 800 (doi: 10.3389/fpls.2019.00800).
  • Ali A.M.A., El-Nour M.E.M., Yagi S.M. Total phenolic and flavonoid contents and antioxidant activity of ginger (Zingiber officinale Rosc.) rhizome, callus and callus treated with some elicitors. Journal of Genetic Engineering and Biotechnology, 2018, 16(2): 677-682 (doi: 10.1016/j.jgeb.2018.03.003).
  • Прадедова Е.В., Ишеева О.Д., Саляев Р.К. Классификация системы антиоксидантной защиты как основа рациональной организации экспериментального исследования окислительного стресса у растений. Физиология растений, 2011, 58(2): 177-185.
  • Goncharuk E.A., Saibel O.L., Zaitsev G.P., Zagoskina N.V. The elicitor effect of yeast extract on the accumulation of phenolic compounds in Linum grandiflorum cells cultured in vitro and their antiradical activity. Biology Bulletin, 2022, 49(6): 599-607 (doi: 10.1134/S1062359022060061).
Еще
Статья научная