Лабораторные методы оценки устойчивости растений и клубней картофеля к возбудителям черной ножки и мягкой гнили клубней

Автор: Стацюк Н.В., Кузнецова М.А.

Журнал: Сельскохозяйственная биология @agrobiology

Рубрика: Картофелеводство: наука и технологии

Статья в выпуске: 1 т.53, 2018 года.

Бесплатный доступ

Одни из наиболее вредоносных заболеваний картофеля - так называемая черная ножка и связанная с ней мягкая гниль клубней, вызываемые бактериями Pectobacterium carotovorum subsp. carotovorum, P. atrosepticum и Dickeya spp. Ежегодные потери урожая от этих болезней составляют 10-15 %, а в эпифитотийные годы могут превышать 50 %. В настоящее время ни один из коммерческих сортов картофеля не обладает высокой устойчивостью по отношению к этим бактериозам, поскольку в большинстве существующих программ селекции признак ранее не относился к приоритетным. В последние годы во всех странах мира, включая Россию, потери картофеля, связанные с черной ножкой и мягкой гнилью, существенно возросли, что увеличивает востребованность устойчивых к бактериозам сортов картофеля, а также эффективных методик оценки устойчивости исходного материала, новых сортов и гибридов. Слабая корреляция между степенью устойчивости картофеля к черной ножке и мягкой гнили клубней приводит к необходимости параллельной оценки по каждому из этих признаков (R. Czajkowski с соавт., 2011). Выбор наиболее предпочтительного метода лабораторной оценки зависит от целей исследователя, а также доступности биологического материала, оборудования и помещений. В представленном обзоре подобно рассмотрены достоинства и недостатки известных методик, а также перечислены факторы и условия проведения тестирования, способные повлиять на их конечные результаты. В условиях крупных селекционных центров оценка устойчивости растений к черной ножке может быть выполнена in vitro на эксплантах. Эта методика надежна и обеспечивает быстрое и масштабное воспроизводство устойчивых генотипов (I. Hudák с соавт., 2006). При необходимости сохранить растение для других исследований используется метод отделенных листьев (A. Sima с соавт., 2015). Такой вариант лабораторной оценки обеспечивает результаты, хорошо согласующиеся с данными полевых оценок устойчивости и подходит для массового скрининга доноров устойчивости среди дикорастущих видов Solanum или трансгенных растений. Селекционеры, работающие с ботаническими семенами картофеля, а также микро-, мини- и обычными клубнями, применяют метод оценки устойчивости в контролируемых условиях (V.S. Bisht с соавт., 1993). Оценка устойчивости клубней к мягкой бактериальной гнили может быть выполнена методами вакуумной инфильтрации (M. Koppel, 1993), а также инокуляции в анаэробных (R.A. Bain с соавт., 1988) и аэробных (I. Hudák с соавт., 2009) условиях. Исследования проводятся как на целых клубнях, так и на высечках и ломтиках. В последнем случае продолжительность эксперимента заметно снижается (K.S. Tzeng с соавт., 1990). В качестве критерия оценки используют размер некроза тканей в месте инокуляции, массу или объем пораженных тканей, отношение массы здоровых и пораженных тканей или площади пораженной поверхности к поверхности всего клубня. Следует учитывать, что сравнение результатов, полученных разными методами, может оказаться некорректным. Планирование и проведение экспериментов по оценке клубней на устойчивость к мягкой гнили требует стандартизации ряда факторов, влияющих на конечные результаты; несоблюдение этого условия сделает невозможным объективное сравнение полученных результатов. Среди факторов следует упомянуть видовую принадлежность инокулюма, температуру тканей клубня и бактериальной суспензии в момент инокулирования, температуру инкубации после инокулирования, а также точку инокуляции или место, откуда была сделана высечка. В отношении оценки устойчивости растений к проявлению симптомов черной ножки исследования таких факторов практически не проводились.

Еще

Картофель, бактериозы, оценка устойчивости, черная ножка, мягкая гниль клубней

Короткий адрес: https://sciup.org/142213885

IDR: 142213885   |   DOI: 10.15389/agrobiology.2018.1.111rus

Список литературы Лабораторные методы оценки устойчивости растений и клубней картофеля к возбудителям черной ножки и мягкой гнили клубней

  • Ториков В.Е., Богомаз О.А. Адаптивный и продуктивный потенциал сортов картофеля нового поколения. Вестник Брянской государственной сельскохозяйственной академии, 2008, 4: 53-59.
  • Князев Б.М., Дзагова Д.А. Урожайность и технологические свойства зерна озимой пшеницы в зависимости от уровня минерального питания. Зерновое хозяйство, 2004, 4: 8-9.
  • Филиппов А.В. Фитофтороз картофеля. Защита и карантин растений, 2012, 5: 61-88.
  • Лазарев А.М., Хютти А.В. О бактериозах картофеля. Сельскохозяйственные вести, 2016, 1. Режим доступа: https://agri-news.ru/zhurnal/2016/12016/zashhita-rastenij/o-bakteriozax-karto-felya.html. Дата обращения 04.02.2018 DOI: https://elibrary.ru/item.asp?id=28189440
  • Stead D. Bacterial diseases of potato: relevance to in vitro potato seed production. Potato Res., 1999, 42(3): 449-456 ( ) DOI: 10.1007/BF02358161
  • Анисимов Б.В., Белов Г.Л., Варицев Ю.А., Еланский С.Н., Журомский Г.К., Завриев С.К., Зейрук В.Н., Иванюк В.Г., Кузнецова М.А., Пляхневич М.П., Пшеченков К.А., Симаков Е.А., Склярова Н.П., Сташевски З., Усков А.И., Яшина И.М. Защита картофеля от болезней, вредителей и сорняков. М., 2009.
  • Игнатов А.Н. Распространение возбудителей опасных бактериозов растений в Российской Федерации. Защита картофеля, 2014, 2: 53-57.
  • De Boer S.H., Li X., Ward L.J. Pectobacterium spp. associated with bacterial stem rot syndrome of potato in Canada. Phytopathology, 2012, 102(10): 937-947 ( ) DOI: 10.1094/PHYTO-04-12-0083-R
  • Hauben L., Moore E.R.B., Vauterin L., Steenackers M., Mergaert J., Verdonck L., Swings J. Phylogenetic position of phytopathogens within the Enterobacteriaceae. Syst. Appl. Microbiol., 1998, 21(3): 384-397 ( ) DOI: 10.1016/S0723-2020(98)80048-9
  • Gardan L., Gouy C., Christen R., Samson R. Elevation of three subspecies of Pectobacterium carotovorum to species level: Pectobacterium atrosepticum sp. nov., Pectobacterium betavasculorum sp. nov. and Pectobacterium wasabiae sp. nov. Int. J. Syst. Evol. Microbiol., 2003, 53: 381-391 ( ) DOI: 10.1099/ijs.0.02423-0
  • Samson R., Legendre J.B., Christen R. et al. Transfer of Pectobacterium chrysanthemi (Burkholder et al. 1953) Brenner et al. 1973 and Brenneria paradisiaca to the genus Dickeya gen. nov. as Dickeya chrysanthemi comb. nov. and Dickeya paradisiaca comb. nov. and delineation of four novel species, Dickeya dadantii sp. nov., Dickeya dianthicola sp. nov., Dickeya dieffenbachiae sp. nov. and Dickeya zeae sp. nov. Int. J. Syst. Evol. Microbiol., 2005, 55(4): 1415-27 ( ) DOI: 10.1099/ijs.0.02791-0
  • Tominaga T., Ogasawara K. Bacterial stem rot of potato caused by Erwinia chrysanthemi. Japanese Journal of Phytopathology, 1979, 45(4): 474-477 ( ) DOI: 10.3186/jjphytopath.45.474
  • Cother E.J. Bacterial seed tuber decay in irrigated sandy soils of New South Wales. Potato Res., 1980, 23(1): 75-84 ( ) DOI: 10.1007/BF02364027
  • Lumb V.M., Perombelon M.C.M., Zutra D. Studies of a wilt disease of the potato plant in Israel caused by Erwinia chrysanthemi. Plant Pathol., 1986, 35(2): 196-202 ( ) DOI: 10.1111/j.1365-3059.1986.tb02004.x
  • Samson R., Foutier F., Sailly M., Jouan B. Caracterisation des Erwinia chrysanthemi isolees de Solanum tuberosum et d'autres plantes-hotes selon les biovars et serogroupes. EPPO Bulletin, 1987, 17(1): 11-16 ( ) DOI: 10.1111/j.1365-2338.1987.tb00002.x
  • Serfontein S., Logan C., Swanepoel A.E., Boelema B.H., Theron D.J. A potato wilt disease in South Africa caused by Erwinia carotovora subspecies carotovora and E. chyrsanthemi. Plant Pathol., 1991, 40(3): 382-386 ( ) DOI: 10.1111/j.1365-3059.1991.tb02394.x
  • Toth I.K., Van Der Wolf J.M., Saddler G., Lojkowska E., Helias V., Pirhonen M., Tsror L., Elphinstone J.G. Dickeya species: an emerging problem for potato production in Europe. Plant Pathol., 2011, 60(3): 385-399 ( ) DOI: 10.1111/j.1365-3059.2011.02427.x
  • Degefu Y., Potrykus M., Golanowska M., Virtanen E., Lojkowska E. A new clade of Dickeya spp. plays a major role in potato blackleg outbreaks in North Finland. Ann. Appl. Biol., 2013, 162: 231-241 ( ) DOI: 10.1111/aab.12020
  • van der Wolf J.M., Nijhuis E.H., Kowalewska M.J., Saddler G.S., Parkinson N., Elphinstone J.G., Pritchard L., Toth I.K., Lojkowska E., Potrykus M., Waleron M., de Vos P., Cleenwerck I., Pirhonen M., Garlant L., Hélias V., Pothier J.F., Pflüger V., Duffy B., Tsror L., Manulis S. Dickeya solani sp. nov., a pectinolytic plant-pathogenic bacterium isolated from potato (Solanum tuberosum). Int. J. Syst. Evol. Microbiol., 2014, 64: 768-774 ( ) DOI: 10.1099/ijs.0.052944-0
  • Palacio-Bielsa A., Cambra M.A., Lopez M.M. Characterisation of potato isolates of Dickeya chrysanthemi in Spain by a microtitre system for biovar determination. Ann. Appl. Biol., 2006, 148(2): 157-164 ( ) DOI: 10.1111/j.1744-7348.2006.00045.x
  • Czajkowski R., Grabe G.J., van der Wolf J.M. Distribution of Dickeya spp. and Pectobacterium carotovorum subsp. carotovorum in naturally infected seed potatoes. Eur. J. Plant Pathol., 2009, 125(2): 263-275 ( ) DOI: 10.1007/s10658-009-9480-9
  • Slawiak M., Lojkowska E., van der Wolf J.M. First report of bacterial soft rot on potato caused by Dickeya sp. (syn. Erwinia chrysanthemi) in Poland. Plant Pathol., 2009, 58(4): 794 ( ) DOI: 10.1111/j.1365-3059.2009.02028.x
  • Laurila J., Hannukkala A., Nykyri J., Pasanen M., Helias V., Garlant L., Pirhonen M. Symptoms and yield reduction caused by Dickeya spp. strains isolated from potato and river water in Finland. Eur. J. Plant Pathol., 2010, 126(2): 249-262 ( ) DOI: 10.1007/s10658-009-9537-9
  • Tsror L., Erlich O., Leblush S., Hazanovsky M., Zig U., Slawiak M, Grabe G., van der Wolf J.M., van de Haar J. J. Assessment of recent outbreaks of Dickeya sp. (syn. Erwinia chrysanthemi) slow wilt in potato crops in Israel. Eur. J. Plant Pathol., 2009, 123: 311-320 ( ) DOI: 10.1007/s10658-008-9368-0
  • Tsror L., Erlich O., Lebiush S., van der Wolf J., Czajkowski R., Mozes G., Sikharulidze Z., Ben Daniel B. First report of potato blackleg caused by a biovar 3 Dickeya sp. in Georgia. New Disease Reports, 2011, 23: 1 ( ) DOI: 10.5197/j.2044-0588.2011.023.001
  • Tsror L., Erlich O., Hazanovsky M., Ben Daniel B., Zig U., Lebiush S. Detection of Dickeya spp. latent infection in potato seed tubers using PCR or ELISA and correlation with disease incidence in commercial field crops under hot-climate conditions. Plant Pathol., 2012, 61(1): 161-168 ( ) DOI: 10.1111/j.1365-3059.2011.02492.x
  • Игнатов А.Н., Карлов А.Н., Джалилов Ф.С., Карандашов В.Е., Князькина М.С., Корнев К.П., Пехтерева Э.Ш. Распространение в России черной ножки картофеля, вызываемой бактериями р. Dikeya. Защита и карантин растений, 2014, 11: 41-43.
  • Lyon G.D. The biochemical basis of resistance of potatoes to soft rot Erwinia spp. -a review. Plant Pathol., 1989, 38(3): 313-339 ( ) DOI: 10.1111/j.1365-3059.1989.tb02152.x
  • Hijmans R.J., Spooner D.M. Geographic distribution of wild potato species. Am. J. Bot., 2001, 88(11): 2101-2112 ( ) DOI: 10.2307/3558435
  • Czajkowski R., Pérombelon M.C.M., van Veen J.A., van der Wolf J.M. Control of blackleg and tuber soft rot of potato caused by Pectobacterium and Dickeya species: a review. Plant Pathol., 2011, 60(6): 999-1013 ( ) DOI: 10.1111/j.1365-3059.2011.02470.x
  • Hidalgo O.A., Echandi E. Evaluation of potato clones for resistance to tuber and stem rot induced by Erwinia chrysanthemi. Am. Potato J., 1982, 59(12): 585-592 ( ) DOI: 10.1007/BF02867598
  • Pérombelon M.C.M., Salmond G.P.C. Bacterial soft rots. In: Pathogenesis and host specificity in plant diseases. Vol. 1. Prokaryotes/U.S. Singh, R.P. Singh, K. Kohmoto (eds.). Pergamon, Oxford, 1995.
  • Bains P.S., Bisht V.S., Lynch D.R. Kawchuk L.M., Helgeson J.P. Identification of stem soft rot (Erwinia carotovora subspecies atroseptica) resistance in potato. Am. J. Potato Res., 1999, 76(3): 137-141 ( ) DOI: 10.1007/BF02853578
  • Lees A.K., de Maine M.J., Nicolson M.J., Bradshaw J.E. Long-day-adapted Solanum phureja as a source of resistance to blackleg by Erwinia carotovora subsp. atroseptica. Potato Res., 2000, 43(3): 279-285 ( ) DOI: 10.1007/BF02358087
  • Hudák I., Dobránszki J. In vitro methods for testing potato clones against soft rot Erwiniae. Acta Horticulturae, 2006, 725: 445-449 ( ) DOI: 10.17660/ActaHortic.2006.725.62
  • Hudák I. Soft rot and fire blight susceptibility of in vitro potato and apple plantlets. PhD dissertation. Budapest, 2014.
  • Sima A., Mozafari J., Nader H., Cobra M. In vitro evaluation of resistant of potato cultivars against black leg disease (Pectobacterium atrosepticum). Biological Forum -An International Journal, 2015, 7(2): 1087-1094.
  • Arce P., Moreno M., Gutierrez M., Gebauer M., Dell'Orto P., Torres H., Acuña I., Oliger P., Venegas A., Jordana X., Kalazich J., Holuigue L. Enhanced resistance to bacterial infection by Erwinia carotovora subsp. atroseptica in transgenic potato plants expressing the attacin or the cecropin SB-37 genes. Am. J. Potato Res., 1999, 76(3): 169-177 ( ) DOI: 10.1007/BF02853582
  • Bisht V.S., Bains P.S., Letal J.R. A simple and efficient method to assess the susceptibility of potato to stem rot by Erwinia carotovora subspecies. Am. Potato J., 1993, 70(8): 611-616 ( ) DOI: 10.1007/BF02850850
  • Rivero M., Furman N., Mencacci N., Picca P., Toum L., Lentz E., Bravo-Almonacid F., Mentaberry A. Stacking of antimicrobial genes in potato transgenic plants confers increased resistance to bacterial and fungal pathogens. J. Biotechnol., 2012, 157(2): 334-343 ( ) DOI: 10.1016/j.jbiotec.2011.11.005
  • McGuire R.G., Kelman A. Reduced severity of Erwinia soft rot in potato tubers with increased calcium content. Phytopathology, 1984, 74(10): 1250-1256 ( ) DOI: 10.1094/Phyto-74-1250
  • Koppel M. Methods of assessing potato tubers for resistance to bacterial soft rot. Potato Res., 1993, 36(3): 183-188 ( ) DOI: 10.1007/BF02360526
  • Bain R.A., Perombelon C.M. Methods of testing potato cultivars for resistance to soft rot of tubers caused by Erwinia carotovora subsp. atroseptica. Plant Pathol., 1988, 37(3): 431-437 ( ) DOI: 10.1111/j.1365-3059.1988.tb02096.x
  • Lapwood D.H., Read P.J., Spokes J. Methods for assessing the susceptibility of potato tubers of different cultivars to rotting by Erwinia carotovora subspecies atroseptica and carotovora. Plant Pathol., 1984, 33(1): 13-20 ( ) DOI: 10.1111/j.1365-3059.1984.tb00581.x
  • Tzeng K.S., McGuire R., Kelman A. Resistance of tubers from different potato cultivars to soft rot caused by Erwinia carotovora subsp. atroseptica. Am. Potato J., 1990, 67(5): 287-305 ( ) DOI: 10.1007/BF02987271
  • Łojkowska E., Kelman A. Comparison of the effectiveness of different methods of screening for bacterial soft rot resistance of potato tubers. Am. Potato J., 1994, 71(2): 99-113 ( ) DOI: 10.1007/BF02849113
  • Haynes K.G., Potts W.J.E., Goth R.W. Evaluation of the reliability of determining soft rot resistance in potatoes by the tuber slice method. Am. Potato J., 1997, 74(4): 265-275 ( ) DOI: 10.1007/BF02851725
  • Hudák I., Hevesi M., Dobránszki J., Magyar-Tábori K. In vitro tests of resistance to soft rot Erwiniae on potato tubers. Acta Horticulturae, 2009, 812: 103-105 ( ) DOI: 10.17660/ActaHortic.2009.812.7
  • Ngadze E., Icishahayo D., Coutinho T.A., van der Waals J.E. Role of polyphenol oxidase, peroxidase, phenylalanine ammonia lyase, chlorogenic acid, and total soluble phenols in resistance of potatoes to soft rot. Plant Dis., 2012, 96(2): 186-192 ( ) DOI: 10.1094/PDIS-02-11-0149
  • Rousselle-Bourgeois F., Priou S. Screening tuber-bearing Solanum spp. for resistance to soft rot caused by Erwinia carotovora ssp. atroseptica (van Hall) Dye. Potato Res., 1995, 38(1): 111-118 ( ) DOI: 10.1007/BF02358077
  • Marquez-Villavicencio M.D.P., Groves R.L., Charkowski A.O. Soft rot disease severity is affected by potato physiology and Pectobacterium taxa. Plant Dis., 2011, 95(3): 232-241 ( ) DOI: 10.1094/PDIS-07-10-0526
  • Thangavel T., Tegg R.S., Wilson C.R. Resistance to multiple tuber diseases expressed in somaclonal variants of the potato cultivar Russet Burbank. The Scientific World Journal, 2014, 2014: Article ID 417697 ( ) DOI: 10.1155/2014/417697
  • Pasco C., Bozec M., Ellissèche D., Andrivon D. Resistance behaviour of potato cultivars and advanced breeding clones to tuber soft rot caused by Pectobacterium atrosepticum. Potato Res., 2006, 49(2): 91-98 ( ) DOI: 10.1007/s11540-006-9006-1
  • Ciampi-Panno L., Andrade-Soto N. Preliminary evaluation of bacterial soft rot resistance in native Chilean potato clones. Am. Potato J., 1984, 61(2): 109-112 ( ) DOI: 10.1007/BF02852885
  • Bartz J.A., Kelman A. Bacterial soft rot potential in washed potato tubers in relation to temperatures of tubers and water during simulated commercial handling practices. Am. Potato J., 1984, 61(8): 485-493 ( ) DOI: 10.1007/BF02852818
Еще
Статья обзорная