Липиды в структуре и функционировании биологических мембран
Автор: Кузнецов В.И., Моррисон В.В., Лиско О.Б., Царева Т.Д., Сретенская Д.А., Гаврилова И.Б., Хлебожарова О.A.
Журнал: Саратовский научно-медицинский журнал @ssmj
Рубрика: Физиология и патофизиология
Статья в выпуске: 2 т.10, 2014 года.
Бесплатный доступ
Липиды являются одним из главных компонентов клеточных мембран. В зависимости от вида клеток содержание липидов составляет от 30 до 55%. Характерными представителями липидов клеточных мембран являются фосфолипиды, сфингомиелины, холестерин и др. Состав липидов по обе стороны мембраны различен, что определяет асимметричность в строении билипидного слоя. В основе многих форм патологии лежит изменение свойств клеточных мембран с модификацией их компонентов. Изучение структуры и функционирования клеточных биомембран представляется актуальным для многих исследователей. Состояние липидов мембран, их количество, качественный состав и модификация под влиянием различных факторов, их связь с углеводным и белковым компонентом имеют важнейшее значение для функций как самих мембран и клеток, так и всего организма в целом. В настоящей статье проведен анализ и структуризация роли липидов и их функции в биологических мембранах.
Биологические мембраны, липиды, метаболизм клетки, перекисное окисление липидов
Короткий адрес: https://sciup.org/14917943
IDR: 14917943
Текст научной статьи Липиды в структуре и функционировании биологических мембран
практически все мембраны более чем на 95% состоят из белков и липидов, последние представлены почти всеми группами данных соединений, и их содержание, в зависимости от вида клеток, составляет в среднем 30-55%.
В состав мембран клеток животного происхождения входят в основном фосфолипиды, гликолипиды и нейтральные липиды. Липиды внутренних клеточных мембран (эндоплазматического ретикулома, митохондрий и др.) практически полностью представлены фосфолипидами. Плазматические мембраны, кроме фосфолипидов, содержат также, но значительно в меньшем количестве, гликолипиды и нейтральные липиды, включающие холестерин и глицериды [1].
Мембраны разного происхождения значительно различаются по своему фосфолипидному составу. Для многих мембран общим является наличие фос-фатидилхолина и фосфатидилэтаноламина, третьим основным фосфолипидом может быть фосфа-тидилсерин (для мембран синаптосом мозга крыс, саркоплазматического ретикулома мышц кролика и наружных сегментов палочек сетчатки глаза быка), сфингомиелин (для мембран сарколеммы скелетных мышц кролика, эритроцитов человека и некоторых животных), фосфатидил-глицерин (кардиолипин) и фосфатидилинозит (для наружных и внутренних мембран митохондрий) [2].
На поверхности мембран располагаются преимущественно такие липиды, как фосфатидилхолин и сфингомиелин, а на внутренней стороне более всего представлены фосфатидилэтаноламин и фосфати-дилсерин [3–6]. Синтезируемые в эндоплазматическом ретикуломе клетки липиды наиболее активно переносятся липидпереносящими белками к внутренней (цитозольной) стороне мембраны, при этом интенсивнее всего обмениваются фосфатидилэтано-ламины [7, 8].
Строение наиболее часто встречающихся липидов мембран однотипно. Их головка, обладающая полярными свойствами, представлена пептидным остатком, содержащим, как правило, компонент фосфатидной кислоты. Неполярной частью липида является двухцепочечный жирнокислотный хвост [8, 9]. Разные липиды обладают различным жирнокислотным составом. Так, для фосфатидилхолинов типичными являются пальмитиновая (С16: О), олеиновая (С18:1) и линолевая (С18:2) кислоты, а для фосфатиди-лэтаноламина еще добавляется арахидоновая (С20:4). Сфингомиелин обычно содержит жирные кислоты более ненасыщенные, чем содержит их фосфати-дилсерин [10, 11]. Вместе с тем показано, что изменение состава диеты, особенно ее жирового компонента, смена условий среды обитания могут быстро и довольно существенно изменить жирнокислотный состав липидов мембран [12, 13].
Имея в своей структуре гидрофильные и гидрофобные участки и являясь в связи с этим амфипатическими, молекулы липидов образуют в мембранах своеобразную пространственную ориентацию. При этом гидрофобные участки молекул направлены во внутреннюю неполярную область бимолекулярного липидного слоя, а полярные участки располагаются с наружной стороны липидного бислоя [2, 3]. В соответствии с жидкостно-мозаичной моделью, которая лежит в основе современных представлений о структуре биологических мембран, бимолекулярный фосфолипидный слой, представляющий собой две гидрофильные поверхности, разъемные внутри гидрофобной зоной, образует жидкокристаллическую матрицу, в которую полностью или частично погружены глобулы мембранных белков. Фосфолипидный бислой, являясь главным структурным компонентом мембран, определяет их общую морфологию и основные свойства, обусловливает различную степень проницаемости для соединений, растворимых в воде [14, 15].
В основе многих форм патологии лежит изменение свойств клеточных мембран. Нарушение структуры и функции биомембраны может быть как причиной, так и следствием различных патологических процессов и заболеваний. Благодаря наличию в структуре мембран множества разнородных химических составляющих она может служить мишенью действия бактериальных токсинов, многих ядов, лекарственных препаратов.
В настоящее время не вызывает сомнения тот факт, что состояние липидов мембран, их количество, качественный состав и модификация под влиянием различных факторов имеют важнейшее значение для функций как самих мембран и клеток, так и всего организма в целом [9, 16].
Известно, что уменьшение парциальной доли арахидоновой кислоты в фосфолипидах мембран вызывает отставание роста животных, а снижение ее синтеза в связи с алиментарным дефицитом предшественников (линолевой кислоты) либо по причине генетически обусловленной или приобретенной ферментативной недостаточности превращения линолевой кислоты в арахидоновую приводит к нарушению биохимических свойств мембран, сдерживает процесс их построения [17, 11]. Дефицит линолевой кислоты, снижающий в мембранах долю арахидоновой и увеличивающий долю эйкозотриеновой кислот, определенная метаболическая ситуация в организме (эндогенная триглицерид- и- холестеринемия) нарушают активность мембранно-связанных ферментов, в том числе участвующих в активном транспорте ионов, повышают проницаемость мембран [11, 18, 13, 19].
Активность мембранных ферментов связана с фосфолипидами мембран, с их количеством, классом, динамическим свойством образуемого ими липидного матрикса, что обеспечивает ферментами солюбилизацию, необходимую конформацию, облегчающее их взаимодействие с гидрофобным субстратом [20–22]. Количественное уменьшение фосфолипидов мембран увеличивает вязкость последних, изменяет структуру ферментов (в том числе и Са-АТФ-аз) и снижает их каталитическую активность [11, 13].
Взаимодействие мембранных ферментов и фосфолипидов происходит не только в рамках мембранной локализации, они могут быть ассоциированы с плазменными фосфолипидами и липопротеидами, а также могут использоваться для формирования фосфолипидного слоя липопротеидов с интенсивным биохимическим взаимодействием между отдельными представителями фосфолипидов, при этом выдвигается предположение о замедлении синтеза последних при нарушении белкового обмена [9, 23].
Одной из функций плазматической мембраны является протонный насос, который обеспечивает нормальный метаболизм клетки и регулирует внутриклеточный рН, при участии АТФ-азных систем, создающих электрохимический градиент. Деятельность протонного насоса регулируется мембранными липидами, организующими траскриптационные и постпереводные уровни проницаемости мембран с модификацией липидов окружающей среды и влияющими на состояние Н+-АТФ-аз [7, 13].
Активация Raf-1 киназы в плазматической мембране напрямую связана с фосфатидилсерином, количество которого имеет прямую зависимость от ци- стеинсодержащих белков. Активация транслоказы, специфичной к аминофосфолипидам и участвующей в работе АТФ-зависимого насоса, приводит к перемещению фосфатидилэтаноламина и фосфатидил-серина в липидном бислое, при этом с положением фосфатидилсерина связано распознавание клеток, слияние клеток, процессы коагуляции, апоптоза [24, 14].
Изучение состояния фосфолипидов кардиомиоцитов в условиях экспериментального геморрагического шока указывает на специфичность повреждения липидного бислоя мембран в зависимости от стадии шока. При этом особое значение отводится нарушению обмена мембранных фосфотидилэтано-ламина и фосфотидилсерина с разрегулированием кальцийтранспортирующих систем клеток, их перегрузкой Ca²ˉ, приводящим к падению уровня мембранного сфингомиелина и усилению апоптоза кардиомиоцитов [23].
Показано, что при полной делипидизации мембран активность Na-, К-, Са-, АТФ-аз падает до нуля, но восстанавливается после добавления в мембраны фосфолипидов и жирных кислот. Следует отметить активное влияние холестерина на вязкость мембран. Уменьшение его содержания в мембранах повышает их проницаемость для воды и ионов, увеличивает подвижность жирных кислот фосфолипидов и делает их более доступными для фосфолипаз [20, 25, 26]. Повышенное содержание холестерина в мембранах, как при экспериментальных исследованиях, так и обусловленные гиперхолестеринемией, вытесняя воду из приполярной зоны бислоя, увеличивает жесткость мембран. Изменение в эксперименте взаимодействия холестерина с фосфатидилэтаноламином смешанных монослоев в воздушно-водной среде сопровождается различными биофизическими эффектами: изменением симметричности расположения липида, поверхностного напряжения, энергии взаимодействия [27]. Увеличение или снижение содержания холестерина в плазматической мембране приводит к изменению соотношения в содержании щелочной фосфатазы и фосфатидилхолина, что меняет архитектонику мембраны [26].
Наиболее четко вязкотропная регуляция установлена для транспортных АТФ-аз, подвижность всей белковой глобулы у которых может быть существенным моментом их функционирования, связанного с микровязкостью липидного матрикса. Преобразование фосфалипидов в диацилглицериды происходит под действием фосфатаз. В этом процессе определенная роль отводится липопротеидам очень низкой плотности и ахолинопротеину В-100. Их взаимодействие сказывается на цитозольных слоях плазматической мембраны, что может снижать или усиливать поражение клеток [28].
Функция ферментов может определяться также тонким слоем окружающего их пограничного (анулярного) липида, который придает ферментам «консервативность» по отношению к изменениям общей липидной фазы и осуществляет локальную липидную регуляцию, связанную не столько с изменением динамики жирнокислотных цепей и общим состоянием липидов мембран, сколько с геометрией молекул слоя пограничного липида. Именно термодинамическое равновесие в системе «пограничный слой липидов — общий липидный бислой» может контролировать работу многоферментных мембранных систем, определяя диспергированно-агрегированное состояние их белков [29, 30].
При альтерации мембраны в ней возникают тонкие изменения в виде модификации мембранных липидов, белков, перестроек сложных гликопроте-идных комплексов. Активируются процессы, приводящие к образованию активных форм кислорода, которые инициируют образование свободных радикалов, свободнорадикальное окисление. Запускаются процессы перекисного окисления липидов (ПОЛ) в биомембранах. Таким образом, интенсификация процессов ПОЛ является одним из мощных модифицирующих мембранные липиды факторов, приводящих к выраженным изменениям физико-химических свойств мембран и повреждению клеток [31, 32, 9]. Этот процесс, непосредственным субстратом которого являются ненасыщенные жирные кислоты в цисконфигурации, тесно связан с обновлением и обменом липидов мембран, их функциями, метаболизмом клеток, с синтезом различных классов высокоактивных биологических соединений [33, 34].
В условиях усиления липопероксидации происходит увеличение содержания сфингомиелина в мембранах с уменьшением глутатиона и нарушением уровня Са++ в клетке [23]. При этом не исключена связь мембранного сфингомиелина с плазменным, который имеет свойство конкурентно связываться либо с фосфолипазой А2, угнетая ее активность, либо с холестерином, освобождая фермент-фосфолипазу А2.
Процессы перекисного окисления липидов сопровождаются нарушением взаимоотношения между миелопероксидазой и полярными головками фосфоглицеридов биомембран, в связи с чем обнаружена способность фосфатидилхолина липосом превращать НОСl/ClO- в менее токсичный и не инициирующий реакции липопероксидации НО2Cl/ClO2-, в то же время HOCl/ClO- при участии миелопероксидазы осуществляет взаимодействие липопротеидов низкой плотности с фосфатидилхолином, активируя атеросклеротический эффект клеток [35, 36].
Изменение соотношения в биомембранах содержания фосфатидилхолина к фосфатидилэтанола-мину, при участии S-аденозилметионина, влияет на активность кистозного фиброза [37]. Вместе с тем исходное содержание фосфатидилхолина и фосфа-тидилэтаноламина является активатором фосфати-дилсерин-синтаз 1 и 2, благодаря чему происходит увеличение содержания фосфатидилсерина в плазматической мембране [38]. Накопление в наружном слое эритроцитарной мембраны и в тромбоците фосфатидилсерина может приводить к развитию гиперкоагуляционного синдрома, так как происходит изменение в цепочке: протромбин, антиплазмин, антитромбин [39]. Интенсивное окисление фосфати-дилсерина в митохондриях и в целых фагоцитирующих клетках при активации клеточных ферментных систем с накоплением лизофосфолипидов приводит к запуску клеточного апоптоза и первичного некроза [40, 41], при этом фосфатидилсерин изменяет асимметрию мембраны за счет перемещения к поверхностному слою [4].
При экспериментальном некрозе поджелудочной железы отмечено увеличение содержания фосфати-дилсерина в плазматической мембране, связанное с активацией фермента кадиаза-3. Применение ингибиторов кадиаза-3 приостанавливало некроз клеток [42].
Мощный биологический активатор — лизофосфа-тидная кислота, предшественниками которой являются фосфатидная кислота и лизофосфатидилхолин плазматической мембраны, при участии фосфалипазы А2 влияет на рост клеток, злокачественное перерождение клеток, перемещение холестерина и липопротеидов в атеросклеротических участках [43, 44].
Развитие биологической клетки и ее апоптоз не происходят без участия мембранных сфинголипидов, которые через церамид, сфингозин, сфингозин-1-фосфат, сфинганин параллельно создают условия для активации коагуляционного потенциала крови при иммунном ответе и других физиологических процессах [6, 45].
Важными структурными компонентами биомембран являются кардиолиты, фосфатидилинозит и его изомеры, в основном входящие в структуру митохондрий. Они участвуют в трансдукции сигнала, осуществляют перемоделирование за счет привлечения клеточных белков к плазматической мембране, создают условия для прохождения Ca++ в клетку, активируют липопероксидацию, создают «апоптозный» ответ совместно с прочими фосфолипидами [46, 47].
Изложенные данные убедительно свидетельствуют о том, что состояние липидных компонентов биомембран тесно взаимосвязано с клеточным метаболизмом, ассоциировано с состоянием плазменных липидов, белков, углеводов, опосредуется развитием типовых процессов дезинтеграции клеточных структур при различных патологических состояниях, формируя тяжесть течения и продолжительность болезни.
Список литературы Липиды в структуре и функционировании биологических мембран
- Ленинджер А. Основы биохимии. M.: Мир, 1985. Т. 3. 1056 с.
- Бергельсон Л. Д. Мембраны, молекулы, клетки. М., 1982. 184 с.
- Alteration of surface properties of dipalmitoyl phosphatidylcholine by benzo [a] pyrene: a model of pulmonary effects of diesel exhaust inhalation. J Biomed Nanotechnol 2012 Oct;8(5):818-25
- Sensing phosphatidylserine in cellular membranes. Sensors (Basel) 2011; 11 (2): 1744-55. Epub2011 Jan 28
- Grirstein S. Imaging signal transduction during phagocytosis: phospholipids, surface charge and electrostatic interactions. Am J Phisyol Cell Phisyol 2010 Nov; 299 (5): 876-81Epub2010Aug25
- Solid character of membrane ceramides: a surface rheology study of their mixtures with sphingomyelin. Biophys J 2011 Dec 7; 101 (11): 2721-30
- Thin phosphatidylcholine films as background surfaces with further possibilities of functionalization for biomedical applications. Colloids Surf В Biointerfaces 2012 Jun 28; 101: 189-195. [Epub ahead of print]
- Fuertes G, Gimenez D, Esteban-Martin S, et al. Role of membrane lipids for the activity of pore forming peptides and proteins. Adv Exp Med Biol 2010; 677: 31-55
- Bochkov VN, Oskolkova OV, Birukov KG, et al. Generation and biological activities of oxidized phospholipids. Antioxid Redox Signal 2010 Apr 15; 12 (8): 1009-59
- Nixon GF. Sphingolipids in inflammation: pathological implications and potential therapeutic targets. Br J Pharmacol 2009 Oct; 158 (4): 982-93. Epub 2009 Jun 25
- GijonMA, RiekhofWR,ZariniS,etal. Lysophospholipid acyltransferases and arachidonate recycling in human neutrophils. J Biol Chem 2008 Oct 31; 283 (44): 30235-45. Epub 2008 Sep 3
- Strandvik B. Fatty acid metabolism in cystic fibrosis. Prostaglandins Leukot Essent Fatty Acids 2010 Sep; 83 (3): 121-9. Epub 2010 Jul 31
- Price ER, Guglielmo CG. The effect of muscle phospholipid fatty acid composition on exercise performance: a direct test in the migratory white-throated sparrow (Zonotrichia albicollis). Am J Physiol Regul Integr Comp Physiol 2009 Sep; 297 (3): R775-82. Epub 2009 Jul 8.
- Calcium-calmodulin kinase I cooperatively regulates nucleocytoplasmic shuttling of CCTa by accessing a nuclear export signal. Mol Biol Cell. 2012 Jul; 23 (14): 2755-69. Epub 2012 May 23
- Santos HA, Garsia-Morales V, Pereira CM. Electrochemical properties of phospholipid monolayers at liquid-liquid interfaces. Chemphyschem 2010 Jan 18; 11 (1): 28-41
- Lombard J, Lopez-Garcia P, Moreira D. The early evolution of lipid membranes and the three domains of life. Nat Rev Microbiol 2012 Jun 11; 10 (7): 507-15 DOI: 10.1038/nrmicro2815
- Igal RA. Stearoyl-CoA desaturase-1: a novel key player in the mechanism of cell proliferation, programmed cell death and transformation to cancer. Carcinogenesis 2010 Sep; 31 (9): 1509-15. Epub 2010 Jul 1
- Lye HS, Rusul G, Liong MT. Removal of cholesterol by lactobacilli via incorporation and conversion to coprostanol. J Dairy Sci 2010 Apr; 93 (4): 1383-92
- Mazari A, Ivamoto S, Yamauchi R. Effects of linoleic acid position in phosphatidylcholines and cholesterol addition on their rates of peroxidation in unilamellarliposomes. Biosci Biotechnol Biochem 2010; 74 (5): 1013-7. Epub 2010 May 7
- Северин E.C. Биологическая химия. M.: Медицина, 2000. 729 с.
- Seeds МС, Peachman КК, Bowton DL, etal. Regulation of arachidonate remodeling enzymes impacts eosinophil survival during allergic astma. Am J Respir Cell mol Biol 2009 Sep; 41 (3): 358-66. Epub 2009 Jan 16
- Hebling CM, Morgan CR, Stafford DW, et al. Comformational analysis of membrane proteins in phospholipid bilayer nanodiscs by hydrogen exchange mass spectrometry Anal Chem. 2010 Jul 1; 82 (13): 5415-9
- Лескова Г.Ф., Крижановский Г.H. Изменения состава фосфолипидов плазматических мембран кардиомиоцитов при геморрагическом шоке. Бюллетень экспериментальной биологии и медицины 2011 июль; 151 (3): 284-7
- Fabisiak JP, Tyurina YY, Tyurin VA, Kagan VE. Quantification of selective phosphatidylserine oxidation during apoptosis. Methods Mol Biol 2005; 291: 449-456
- Ceребров В.Ю. Балашов П. П., Шарыпова Н.Г. Перекисное окисление и спектр липидов плазматических мембран лимфоцитов при абстинентном синдроме у больных опийной наркоманией. Сибирский вестник психиатрии и наркологии: научно-практическое издание 2004; (2): 43-45
- Bolean М, Simao AM, Favoring BZ, et al. The effect of cholesterol on the reconstitution of alkaline phosphatase into liposomes. Biophys Chem 2010 Nov; 152 (1 -3): 74-9. Epub 2010 Aug 14
- Savva M, Acheampong S. The interaction energies of cholesterol and 1,2-dioleoyl-sn-glycero-3-phosphoethanoiamine in spread mixed monolayers at the air-water interface. J Phys Chem В 2009 Jul 23; 113 (29): 9811-20
- Bou Khalil M, Sundaram M, Zhang HY, et al. The level and compartmentalization of phosphatidate phosphatase-1 (lipin-1) control the assembly and secretion of hepatic VLDL. J Lipid Res 2009 Jan; 50 (1): 47-58. Epub 2008 Sep 3
- Phospholipases: an overview. Methods Mol Biol 2012; 861: 63-85
- Human group X secreted phospholipase A2 induces dendritic cell maturation through lipoprotein-dependent and -independent mechanisms. Atherosclerosis 2012 Jun; 222 (2): 367-74. Epub 2012 Mar 22
- Кузнецов В.И., Ющук Н.Д., Моррисон В.В. Интенсивность процессов свободнорадикального окисления и структурные липиды мембран у больных геморрагической лихорадкой с почечным синдромом. Эпидемиология и инфекционные болезни 2003; (4): 30-33
- Кузнецов В. И., Ющук Н.Д., Моррисон В. В., Лиско О. Б. Состояние структурных липидов и свободнорадикального окисления эритроци-тарных мембран у больных дифтерией ротоглотки. Инфекционные болезни 2006; 4 (4): 12-16
- Cho EY, Yun СН, Chae HZ, Chae HJ, Ahn T. Anionic phospholipid-induced regulation of reactive oxygen species production by human cytochrome P4502E1. FEBS Lett 2008 May 28; 582 (12): 1771-6. Epub 2008 May 8
- El-Hafidi M, Meschini MC, Rizza T, et al. Cardiolipin content in mitochondria from cultured skin fibroblasts harboring mutations in the mitochondrial ATP6 gene. J Bioenerg Biomembr 2011 Dec; 43 (6): 683-90. Epub 2011 Oct 13
- Jerlich A, Pitt AR, Schaur RJ, Spickett CM. Pathways of phospholipid oxidation by HOCI in human LDL detected by LC-MS. Free Rad Biol Med 2000; 28 (5): 673-682
- Exher M, Alt E, Hermann M, et al. Hydroxyphenylac-etaldehyde, the major product of tyrosine oxidation by the activated myeloperoxidase system can act as an antioxidant in LDL. FEBS -Letters 2001; 490 (1 -2): 28-31
- Innis SM, Davidson AG, Chen A., et al. Increased plasma homocysteine and S-adenosylhomocysteine and decreased methionine is associated with altered phosphatidylcholine and phosphatidylethanolamine in cystic fibrosis. J Pediatr 2003: 143 (3): 351-356
- Vance JE. Molecular and cell biology of phosphati-dylserine and phosphatidylethanolamine metabolism. Prog Nucleic Acid Res Mol Biol 2003; 75: 69-111
- Bonomini M, Dottori S, Amoroso L., et al. Increased platelet phosphatidylserine exposure and caspase activation in chronic uremia. J Thromb Haemost 2004; 2 (8): 1275-1281
- Fadeel B. Plazma membrane alterations during apoptosis: role in corpse clearance.Antioxi Redox Signal 2004; 6 (2): 269-275
- Kagan VN, Boriscnko GG, Tyurina YY, et al. Oxidative lipidomics of apoptosis: redox catalytic interactions of cytochrome С with cardiolipin and phosphatidylserine. Free Rad Biol Med 2004; 37 (12): 1963-1985
- Chen PC, Wu JL, Her GM, Hong JR. Aquatic birnavirus induces necrotic cell death via the mitochondria-mediated caspase pathway. Fish Shellfish Immunol 2010 Feb; 28 (2): 344-53. Epub 2009 Nov 26
- The synaptic ribbon is a site of phosphatidic acid generation in ribbon synapses. J Neurosci 2011 Nov 2; 31 (44): 15996-6011
- Zhao K, Zhou H, Zhao X, et al. Phosphatidic acid mediates the targeting of tBid to induce lysosomal membrane permeabilization and apoptosis. J Lipid Res 2012 Oct; 53 (10): 2102-14. Epub2012Jul3
- Nijnik A, Clare S, Hale C, et al. The role of sphingosine-1-phosphate transporter Spns2 in immune system function. J Immunol 2012 Jul 1; 189 (1): 102-11. Epub 2012 Jun 4
- Kim J, Rodriguez ME, Oleinick NL, Anderson VE. Photo-oxidation of cardiolipin and cytochromec with bilayer-embedded Pc 4. Free Radic Biol Med 2010 Sep 1; 49 (5): 718-25. Epub 2010 May 25
- Ganzalvez F, Schug ZT, Houtkooper RH, et al. Cardiolipin provides an essential activating platform forcaspase-8 on mitochondria. J Cell Biol 2008 Nov 17; 183 (4): 681-96. Epub 2008 Nov 10.