Механизмы иммунной защиты и перспективы создания ДНК-вакцин против африканской чумы свиней

Автор: Середа А.Д., Иматдинов А.Р., Дубровская О.А., Колбасов Д.В.

Журнал: Сельскохозяйственная биология @agrobiology

Рубрика: Обзоры, проблемы

Статья в выпуске: 6 т.52, 2017 года.

Бесплатный доступ

Возбудитель африканской чумы свиней (АЧС) - крупный оболочечный вирус семейства Asfarviridae, содержащий двухцепочечную линейную ДНК 170-190 тыс. п.н., кодирующую более 150 белков, большинство из которых вовлечены во взаимодействия вирус-хозяин (L.K. Dixon с соавт., 2004). Вирулентные изоляты вызывают контагиозную геморрагическую болезнь со 100 % смертностью домашних свиней ( Sus scrofa domesticus ) и диких кабанов ( Sus scrofa ). Контроль над заболеванием осложняется отсутствием средств специфической профилактики (R.J. Rowlands с соавт., 2008; D.A. Chapman с соавт., 2011; P. Rahimi с соавт., 2010). Попытки защитить свиней от АЧС традиционными экспериментальными живыми, инактивированными, субъединичными вакцинами оказались неудачными (S. Blome с соавт., 2014). Иммунная защита при АЧС реализуется за счет цитотоксических Т-лимфоцитов-киллеров (ЦТЛ) и эффекторов антителозависимой клеточной цитотоксичности (АЗКЦ) и действует против вирусных белков на поверхности зараженных моноцитов (макрофагов). Установлен синергизм этих эффекторов (А.Д. Середа, 2013). На основании данных о локализации, структуре и функциональных свойствах вирусных белков, полипептидной специфичности антител в сыворотке крови свиней после введения аттенуированных или вирулентных штаммов вируса АЧС (ASFV), последствиях иммунизации свиней выделенными из зараженных клеток или рекомбинантными белками, ДНК-конструкциями белки р30, р54 и CD2v рассматривают в качестве потенциально протективных (S.D. Kollnberger с соавт., 2002; M.G. Barderas с соавт., 2001; J.G. Neilan с соавт., 2004). Существенный недостаток кандидатных ДНК-вакцин - относительно слабая индукция иммунных реакций, особенно у крупных млекопитающих, что требует специальных подходов (J. Rajcani с соавт., 2005; M.A. Liu с соавт., 2006; L.H. van Drunen с соавт., 2004). Для нацеливания лимфоцитов, экспрессирующих рецепторы CD48 и CD58 для белка CD2 антигенпрезентирующих клеток (AПК) предложено использовать секреторную часть (s) сходного с ним белка ASFV HA (или СD2v) (A. Brossay с соавт., 2003; K. Crosby с соавт., 2004). Введение в ДНК-конструкцию гена sHA усиливало как гуморальный, так и клеточный ответ против слитых белков p30 и p54 (F. Ruiz-Gonzalvo с соавт., 1996). Продемонстрировано усиление гуморального ответа при связывании p30 и p54 с одной цепью антитела к инвариантному эпитопу молекулы главного комплекса гистосовместимости (ГКГС) II класса у свиней. Однако в ряде случаев это приводило к ускоренной гибели животных после заражения вирулентными штаммами. Для стимулирования специфического CD8+-Т-клеточного ответа использовали конструкцию рСМV-UbsHAPQ, кодирующую антигенные детерминанты p30, p54 и sHA, слитые с клеточным убиквитином (Ub). Иммунизация рСМV-UbsHAPQ не индуцировала гуморальный ответ, выявляемый инструментально, но обеспечивала частичную защиту против контрольного заражения вирусом АЧС (J.M. Argilaguet с соавт., 2011). Перспективность ДНК-конструкций была подтверждена экспериментами по иммунизации короткими фрагментами вирусного генома, слитыми с геном клеточного убиквитина (ДНК-биб-лиотека ASFVUblib) (A. Lacasta с соавт., 2014). В результате иммунизации ASFVUblib 60 % свиней выжили после заражения вирулентным штаммом вируса. По данным иммуноферментного анализа (ИФА) у всех иммунизированных ASFVUblib свиней до контрольного заражения специфические антитела к белкам ASFV не обнаружили. CD8+-Т-клетки были единственной из исследованных клеточных субпопуляций, в которой у выживших свиней с 5-х сут после иммунизации отмечали статистически значимый рост. После иммунизации рекомбинантным бакуловирусом BacMam-sHAPQ с конструкцией, кодирующующей полноразмерные иммунодоминантные белки p30 и p54, слитые с карбоксильным концом внеклеточного домена вирусного гемагглютинина sHA под контролем промотора позвоночных, при контрольном заражении вирулентным штаммом у 66 % свиней не было виремии и клинических признаков заболевания (J.M. Argilaguet с соавт., 2013). Таким образом, результаты исследований по разработке ДНК-вакцин против ASFV можно рассматривать как обнадеживающие, хотя механизмы иммунного ответа на заражение этим вирусом еще требуют выяснения.

Еще

Днк-вакцины, африканская чума свиней, протективные белки, антитела, цитотоксические т-лимфоциты

Короткий адрес: https://sciup.org/142213860

IDR: 142213860   |   DOI: 10.15389/agrobiology.2017.6.1069rus

Список литературы Механизмы иммунной защиты и перспективы создания ДНК-вакцин против африканской чумы свиней

  • Dixon L.K., Abrams C.C., Bowick G., Goatley L.C., Kay-Jackson P.C., Chapman D., Liverani E., Nix R., Silk R., Zhang F. African swine fever virus proteins involved in evading host defence systems. Vet. Immunol. Immunopathol., 2004, 100: 117-134 ( ) DOI: 10.1016/j.vetimm.2004.04.002
  • Gogin A., Gerasimov V., Malogolovkin A., Kolbasov D. African swine fever in the North Caucasus region and the Russian Federation in years 2007-2012. Virus Res., 2013, 173(1): 198-203 ( ) DOI: 10.1016/j.virusres.2012.12.007
  • Abrahantes J.C., Gogin A., Richardson J., Gervelmeyer A. Epidemiological analyses on African swine fever in the Baltic countries and Poland. EFSA Journal, 2017, 15(3): 4732 ( ) DOI: 10.2903/j.efsa.2017.4732
  • Mebus C.A. African swine fever. Adv. Virus Res., 1988, 35: 251-269 ( ) DOI: 10.1016/S0065-3527(08)60714-9
  • Blome S., Gabriel C., Beer M. Modern adjuvants do not enhance the efficacy of an inactivated African swine fever virus Vaccine preparation. Vaccine, 2014, 32: 3879-3882 ( ) DOI: 10.1016/j.vaccine.2014.05.051
  • Коваленко Я.Р., Сидоров М.А., Бурба Л.Г. Африканская чума свиней. М, 1972.
  • Petuska N. Quelques aspects morphogenesis des suites de la vaccination contre la PPA (virose L) an Portugal. Bull. Off. Int. Epiz., 1965, 63: 199-237.
  • Vigário J.D., Terrinha A.M., Nunes J.F.M. Antigenic relatonships among strains of African swine fever virus. Arch. ges. Virusforschung, 1974; 45: 272-277 ( ) DOI: 10.1007/BF01249690
  • Колбасов Д.В., Балышев В.М., Середа А.Д. Итоги разработки живых вакцин против африканской чумы свиней. Ветеринария, 2014, 8: 3-8.
  • Boinas F.S., Hutchings G.H., Dixon L.K., Wilkinson P.J. Characterization of pathogenic and non-pathogenic African swine fever virus isolates from Ornithodoros erraticus inhabiting pig premises in Portugal. J. Gen. Virol., 2004, 85: 2177-2187 ( ) DOI: 10.1099/vir.0.80058-0
  • King K., Chapman D., Argilaguet J.M., Fishbourne E., Hutet E., Cariolet R., Hutchings G., Oura C.A.L., Netherton C.L., Moffat K. Protection of European domestic pigs from virulent African isolates of African swine fever virus by experimental immunisation. Vaccine, 2011, 29: 4593-4600 ( ) DOI: 10.1016/j.vaccine.2011.04.052
  • Onisk D.V., Borca M.V., Kutish G., Kramer E., Irusta P., Rock D.L. Passively transferred African swine fever virus antibodies protect swine against lethal infection. Virology, 1994, 198(1): 350-354 ( ) DOI: 10.1006/viro.1994.1040
  • Viñuela E. African swine fever virus. Current Topics in Microbiology and Immunology, 1985, 116: 151-170 ( ) DOI: 10.1007/978-3-642-70280-8_8
  • Escribano J.M., Galindo I., Alonso C. Antibody-mediated neutralization of African swine fever virus: myths and facts. Virus Res., 2013, 173: 101-109 ( ) DOI: 10.1016/j.virusres.2012.10.012
  • Gomez-Puertas P., Rodriguez F., Oviedo J.M., Ramiro-Ibanez F., Ruiz-Go-nzalvo F., Alonso C., Escribano J.M. Neutralizing antibodies to different proteins of African swine fever virus inhibit both virus attachment and internalization. J. Virol., 1996, 70: 5689-5694.
  • Gomez-Puertas P., Rodriguez F., Oviedo J.M., Brun A., Alonso C., Escribano J.M. The African Swine Fever Virus proteins p54 and p30 are involved in two distinct steps of virus attachment and both contribute to the antibody-mediated protective immune response. Virology, 1998, 243, 461-471 ( ) DOI: 10.1006/viro.1998.9068
  • Середа А.Д., Соловкин С.Л., Фугина Л.Г., Макаров В.В. Иммунные реакции на вирус африканской чумы свиней. Вопросы вирусологии, 1992, 3: 168-170.
  • Макаров В.В., Вишняков И.Ф., Коломыцев А.А., Середа А.Д. Сравнительный анализ показателей функциональной активности гуморального и клеточного иммунитета при вирусных инфекциях in vivo. Бюллетень экспериментальной биологии и медицины, 1995, 12: 599-602.
  • Norley S.G., Wardley R.C. Cytotoxic lymphocytes induced by African swine fever infection. Res. Vet. Sci., 1984, 37: 255-257.
  • Makarov V., Nedosekov V., Sereda A., Matvienko N. Immunological conception of African swine fever. Zoology and Ecology, 2016, 26(3): 236-243 ( ) DOI: 10.1080/21658005.2016.1182822
  • Martins C.L.V., Lawman M.J.P., Scholl T., Mebus C.A., Lunney J.K. African swine fever virus specific porcine cytotoxic T cell activity. Arch. Virol., 1993, 129(1-4): 211-225 ( ) DOI: 10.1007/BF01316896
  • Oura C.A.L., Denyer M.S., Takamatsu H., Parkhouse R.M.E. In vivo depletion of CD8+ T lymphocytes abrogates protective immunity to African swine fever virus. J. Gen. Virol., 2005, 86: 2445-2450 ( ) DOI: 10.1099/vir.0.81038-0
  • Середа А.Д., Казакова А.С., Иматдинов А.Р., Колбасов Д.В. Гуморальные и клеточно-опосредованные механизмы иммунитета при африканской чуме свиней. Сельскохозяйственная биология, 2015, 50(6): 709-718. ( ) DOI: 10.15389/agrobiology.2015.6.709rus
  • Середа А.Д. Моделирование in vitro защитных иммунных механизмов при африканской чуме свиней. Сельскохозяйственная биология, 2013, 4: 59-64 ( ) DOI: 10.15389/agrobiology.2013.4.59rus
  • Kollnberger S.D., Gutierrez-Castañeda B., Foster-Cuevas M., Corteyn A., Parkhouses R.M.E. Identification of the principal serological immunodeterminants of African swine fever virus by screening a virus cDNA library with antibody. J. Gen. Virol., 2002, 83: 1331-1342 ( ) DOI: 10.1099/0022-1317-83-6-1331
  • Barderas M.G., Rodriguez F., Gomez-Puertas P., Aviles M., Beitia F., Alonso C., Escribano J. M. Antigenic and immunogenic properties of a chimera of two immunodominant African swine fever virus proteins. Arch. Virol., 2001, 146: 1681-1691 ( ) DOI: 10.1007/s007050170056
  • Neilan J.G., Zsak L., Lu Z., Burrage T.G., Kutish G.F., Rock D.L. Neutralizing antibodies to African swine fever virus proteins p30, p54, and p72 are not sufficient for antibody-mediated protection. Virology, 2004, 319: 337-342.
  • Salas M.L., Andrés G. African swine fever virus morphogenesis. Virus Res., 2013, 173(1): 29-41 ( ) DOI: 10.1016/j.virusres.2012.09.016
  • Pastor M.J., Laviada M.D., Sanchez-Vizcaino J.M., Escribano J.M. Detection of African swine fever virus antibodies by immunoblotting assay. Can. J. Vet. Res., 1989, 53(1): 105-107.
  • Gallardo C., Blanco E., Rodríguez J.M., Carrascosa A.L., Sanchez-Vizcaino J.M. Antigenic properties and diagnostic potential of African swine fever virus protein pp62 expressed in insect cells. J. Clin. Microbiol., 2006, 44: 950-956 ( ) DOI: 10.1128/jcm.44.3.950-956.2006
  • Andrés G., Simón-Mateo C., Viñuela E. Assembly of African swine fever virus: role of polyprotein pp220. J. Virol., 1997, 71: 2331-2341.
  • Reis A.L., Parkhouse R.M., Penedos A.R., Martins C., Leitão A. Systematic analysis of longitudinal serological responses of pigs infected experimentally with African swine fever virus. J. Gen. Virol., 2007, 88: 2426-2434 ( ) DOI: 10.1099/vir.0.82857-0
  • Kazakova A.S., Imatdinov I.R., Dubrovskaya O.A., Imatdinov A.R., Sidlik M.V., Balyshev V.M., Krasochko P.A., Sereda A.D. Recombinant protein p30 for serological diagnosis of African Swine Fever by immunoblotting assay. Transbound. Emerg. Dis., 2017, 64(5): 1479-1492 ( ) DOI: 10.1111/tbed.12539
  • Giménez-Lirola L.G., Mur L., Rivera B., Mogler M., Sun Y., Lizano S., Goodell C., Harris D.L.H., Rowland R.R.R., Gallardo C., Sánchez-Vizcaíno J.M., Zimmerman J. Detection of African Swine Fever Virus antibodies in serum and oral fluid specimens using a recombinant protein 30 (p30) dual matrix indirect ELISA. PLoS ONE, 2016, 11(9): 1-14 ( ) DOI: 10.1371/journal.pone.0161230
  • Середа А.Д., Анохина Е.Г., Макаров В.В. Гликопротеины вируса африканской чумы свиней. Вопросы вирусологии, 1994, 39(6): 278-281.
  • Середа А.Д. Иммуногенные и протективные свойства гликопротеинов вируса африканской чумы свиней. Актуальные вопросы ветеринарной биологии, 2013, 4(20): 31-35.
  • Borca M.V., Kutish G.F., Afonso C.L., Irusta P., Carrillo C., Brun A., Sussman M., Rock D.L. An African swine fever virus gene with similarity to the T-lymphocyte surface antigen CD2 mediates hemadsorption. Virology, 1994, 199: 463-468 ( ) DOI: 10.1006/viro.1994.1146
  • Malogolovkin A., Burmakina G., Tulman E.R., Delhon G., Diel D.G., Salnikov N., Kutish G.F., Kolbasov D., Rock D.L. African swine fever virus CD2v and C-type lectin gene loci mediate serologic specificity. J. Gen. Virol., 2015, 96(4): 866-873 ( ) DOI: 10.1099/jgv.0.000024
  • Argilaguet J.M., Pérez-Martín E., López S., Goethe M., Escribano J.M., Giesow K., Keil G.M., Rodríguez F. BacMam immunization partially protects pigs against sublethal challenge with African swine fever virus. Antiviral Res., 2013, 98(1): 61-65 ( ) DOI: 10.1016/j.antiviral.2013.02.005
  • Argilaguet J.M., Pérez-Martín E., Nofrarías M., Gallardo C., Accensi F., Lacasta А., Mora M., Ballester M., Galindo-Cardiel I., López-Soria S., Escribano J.M., Reche P.A., Rodríguez F. DNA vaccination partially protects against African Swine Fever Virus lethal challenge in the absence of antibodies. PLoS ONE, 2012, 7(9): 1-11 ( ) DOI: 10.1371/journal.pone.0040942
  • Jiao S., Williams P., Berg R.K., Hodgeman B.A., Liu L., Repetto G., Wolff J.A. Direct gene transfer into nonhuman primate myofibers in vivo. Hum. Gene Ther., 1992, 3: 21-33 ( ) DOI: 10.1089/hum.1992.3.1-21
  • Kutzler M.A., Weiner D.B. DNA vaccines: ready for prime time? Nat. Rev. Genet., 2008, 9: 776-788 ( ) DOI: 10.1038/nrg2432
  • Сюрин В.Н., Самуйленко А.Я., Соловьёв Б.В., Фомина Н.В. Вирусные болезни животных. М., 2001.
  • Rajcani J., Mosko T., Rezuchova I. Current developments in viral DNA vaccines: shall they solve the unsolved? Rev. Med. Virol., 2005, 15(5): 303-325 ( ) DOI: 10.1002/rmv.467
  • Liu M.A., Wahren B., Hedestam G.B.K. DNA vaccines: recent developments and future possibilities. Hum. Gene Ther., 2006, 17(11): 1051-1061 ( ) DOI: 10.1089/hum.2006.17.1051
  • van Drunen L.H., Babiuk S.L., Babiuk L.A. Strategies for improved formulation and delivery of DNA vaccines to veterinary target species. Immunol. Rev., 2004, 199: 113-125 ( ) DOI: 10.1111/j.0105-2896.2004.00140.x
  • Leifert J.A., Rodriguez-Carreno M.P., Rodriguez F., Whitton J.L. Targeting plasmid encoded proteins to the antigen presentation pathways. Immunol. Rev., 2004, 199(1): 40-53 ( ) DOI: 10.1111/j.0105-2896.2004.0135.x
  • Рыбаков С.С., Грубый В.А. Подходы к созданию вакцины против африканской чумы свиней (обзор зарубежной литературы). Ветеринария, 2014, 3: 3-9.
  • Argilaguet J.M., Perez-Martin E., Gallardo C., Salguero F.J., Borrego B., Lacasta A., Accensi F., Díaz I., Nofrarías M., Pujols J., Blanco E., Pérez-Filgueira M., Escribano J.M., Rodríguez F. Enhancing DNA immunization by targeting ASFV antigens to SLA-II bearing cells. Vaccine, 2011, 29(33): 5379-5385 ( ) DOI: 10.1016/j.vaccine.2011.05.084
  • Rodriguez J.M., Yanez R.J., Almazan F., Vinuela E., Rodriguez J.F. African swine fever virus encodes a CD2 homolog responsible for the adhesion of erythrocytes to infected cells. J. Virol., 1993, 67(9): 5312-5320.
  • Brossay A., Hube F., Moreau T., Bardos P., Watier H. Porcine CD58: cDNA cloning and molecular dissection of the porcine CD58-human CD2 interface. Biochem. Biophys. Res. Commun., 2003, 309: 992-998 ( ) DOI: 10.1016/j.bbrc.2003.08.099
  • Crosby K., Yatko C., Dersimonian H., Pan L., Edge A.S. A novel monoclonal antibody inhibits the immune response of human cells against porcine cells: identification of a porcine antigen homologous to CD58. Transplantation, 2004, 77(8): 1288-1294.
  • Ruffini P.A., Grodeland G., Fredriksen A.B., Bogen B. Human chemokine MIP1alpha increases efficiency of targeted DNA fusion Vaccines. Vaccine, 2010, 29(2): 191-199 ( ) DOI: 10.1016/j.vaccine.2010.10.057
  • Nchinda G., Kuroiwa J., Oks M., Trumpfheller C., Park C.G., Huang Y., Hannaman D., Schlesinger S.J., Mizenina O., Nussenzweig M.C., Überla K., Steinman R.M. The efficacy of DNA vaccination is enhanced in mice by targeting the encoded protein to dendritic cells. J. Clin. Invest., 2008, 118: 1427-1436 ( ) DOI: 10.1172/jci34224
  • Holliger P., Hudson P.J. Engineered antibody fragments and the rise of single domains. Nat. Biotechnol., 2005, 23(9): 1126-1136 ( ) DOI: 10.1038/nbt1142
  • Demangel C., Zhou J., Choo A.B., Shoebridge G., Halliday G.M., Britton W.J. Single chain antibody fragments for the selective targeting of antigens to dendritic cells. Mol. Immunol., 2005, 42(8): 979-985 ( ) DOI: 10.1016/j.molimm.2004.09.034
  • Grossmann C., Tenbusch M., Nchinda G., Temchura V., Nabi G., Stone G.W., Kornbluth R.S., Überla K. Enhancement of the priming efficacy of DNA vaccines encoding dendritic cell-targeted antigens by synergistic toll-like receptor ligands. BMC Immunol., 2009, 10: 43 ( ) DOI: 10.1186/1471-2172-10-43
  • Ivanovska N., Tchorbanov A., Prechl J., Maximova V., Voynova E., Vassilev T.L. Immunization with a DNA chimeric molecule encoding a hemagglutinin peptide and a scFv CD21-specific antibody fragment induces long-lasting IgM and CTL responses to influenza virus. Vaccine, 2006, 24(11): 1830-1837 ( ) DOI: 10.1016/j.vaccine.2005.10.029
  • Pereboev A.V., Asiedu C.K., Kawakami Y., Dong S.S., Blackwell J.L., Kashentseva E.A., Triozzi P.L., Aldrich W.A., Curiel D.T., Thomas J.M., Dmitriev I.P Coxsackie virus-adenovirus receptor genetically fused to anti-human CD40 scFv enhances adenoviral transduction of dendritic cells. Gene Ther., 2002, 9(17): 1189-1193 ( ) DOI: 10.1038/sj.gt.3301767
  • Barry M.A., Howell D.P., Andersson H.A., Chen J.L., Singh R.A. Expression library immunization to discover and improve vaccine antigens. Immunol. Rev., 2004, 199: 68-83 ( ) DOI: 10.1111/j.0105-2896.2004.00143.x
  • Talaat A.M., Stemke-Hale K. Expression library immunization: a road map for discovery of vaccines against infectious diseases. Infect. Immun., 2005, 73: 7089-7098 ( ) DOI: 10.1128/iai.73.11.7089-7098.2005
  • Rodriguez F., Whitton J.L. Enhancing DNA immunization. Virology, 2000, 268(2): 233-238 ( ) DOI: 10.1006/viro.2000.0209
  • Rodriguez F., An L.L., Harkins S., Zhang J., Yokoyama M., Widera G., Fuller J.T., Kincaid C., Campbell I.L., Whitton J.L. DNA immunization with minigenes: low frequency of memory cytotoxic T lymphocytes and inefficient antiviral protection are rectified by ubiquitination. J. Virol., 1998, 72(2): 5174-5181.
  • Lacasta A., Ballester M., Monteguado P.L., Rodriguez J.M., Salas M.L., Accensi F., Pina-Pedrero S., Bensaid A., Argilaguet J., López-Soria S., Hutet E., Le Potier M.F., Rodríguez F. Expression library immunization can confer protection against African swine fever virus lethal challenge. J. Virol., 2014, 88(22): 13322-13332 ( ) DOI: 10/1128/jvi.01893-14
  • Keil G.M., Klopfleisch C., Giesow K., Blohm U. Novel vectors for simultaneous high-level dual protein expression in vertebrate and insect cells by recombinant baculoviruses. J. Virol. Methods, 2009, 160: 132-137 ( ) DOI: 10.1016/j.jviromet.2009.05.001
  • Kost T.A., Condreay J.P. Recombinant baculoviruses as mammalian cell gene delivery vectors. Trends Biotechnol., 2002, 20: 173-180 ( ) DOI: 10.1016/s0167-7799(01)01911-4
  • O’Grady M., Batchelor R.H., Scheyhing K., Kemp C.W., Hanson G.T., Lakshmipathy U. BacMam-mediated gene delivery into multipotent mesenchymal stromal cells. Methods Mol. Biol., 2011, 698: 485-504 ( ) DOI: 10.1007/978-1-60761-999-4_34
  • Brun A., Albina E., Barret T., Chapman D.A., Czub M., Dixon L.K., Keil G.M., Klonjkowski B., Le Potier M.F., Libeau G., Ortego J., Richardson J., Takamatsu H.H. Antigen delivery systems for veterinary Vaccine development viralvector based delivery systems. Vaccine, 2008, 26: 6508-6528 ( ) DOI: 10.1016/j.vaccine.2008.09.044
  • Condreay J.P., Kost T.A. Baculovirus expression vectors for insect and mammalian cells. Curr. Drug Targets, 2007, 8(10): 1126-1131 ( ) DOI: 10.2174/138945007782151351
  • Huser A., Hofmann C. Baculovirus vectors: novel mammalian cell gene delivery vehicles and their applications. Am. J. Pharmacogenomics, 2003, 3: 53-63 ( ) DOI: 10.2165/00129785-200303010-00007
  • Koroleva N.N., Spirin P.V., Timokhova A.V., Rubtsov P.M., Kochetkov S.N., Prasolov V.S., Belzhelarskaia S.N. Baculovirus vectors for efficient gene delivery and expression in mammalian cells. Mol. Biol., 2010, 44(3): 541-550 ( ) DOI: 10.1134/s0026893310030180
  • Kost T.A., Condreay J.P., Ames R.S., Rees S., Romanos M.A. Implementation of BacMam virus gene delivery technology in a drug discovery setting. Drug Discov. Today, 2007, 12: 396-403 ( ) DOI: 10.1016/j.drudis.2007.02.017
  • Li Y., Ye J., Cao S., Xiao S., Zhao Q., Liu X., Jin M., Chen H. Immunization with pseudotype baculovirus expressing envelope protein of Japanese encephalitis virus elicits protective immunity in mice. J. Gene Med., 2009, 11(2): 150-159 () DOI: 10.1002/jgm.1282
  • Bai B., Lu X., Meng J., Hu Q., Mao P., Lu B., Chen Z., Yuan Z., Wang H. Vaccination of mice with recombinant baculovirus expressing spike or nucleocapsid protein of SARS-like coronavirus generates humoral and cellular immune responses. Mol. Immunol., 2008, 45: 868-875 ( ) DOI: 10.1016/j.molimm.2007.08.010
  • Tang X.C., Lu H.R., Ross T.M. Baculovirus-produced influenza virus-like particles in mammalian cells protect mice from lethal influenza challenge. Viral Immunol., 2011, 24(4): 311-319 ( ) DOI: 10.1089/vim.2011.0016
  • Wang S., Fang L., Fan H., Jiang Y., Pan Y., Luo R., Zhao Q., Chen H., Xiao S. Construction and immunogenicity of pseudotype baculovirus expressing GP5 and M protein of porcine reproductive and respiratory syndrome virus. Vaccine, 2007, 25: 8220-8227 ( ) DOI: 10.1016/j.vaccine.2007.09.069
  • Wu Q., Fang L., Wu X., Li B., Luo R., Yu Z., Jin M., Chen H., Xiao S. A pseudotype baculovirus-mediated vaccine confers protective immunity against lethal challenge with H5N1 avian influenza virus in mice and chickens. Mol. Immunol., 2009, 46: 2210-2217 ( ) DOI: 10.1016/j.molimm.2009.04.017
  • Facciabene A., Aurisicchio L., La Monica N. Baculovirus vectors elicit antigen-specific immune responses in mice. J. Virol., 2004, 78: 8663-8672 ( ) DOI: 10.1128/JVI.78.16.8663-8672.2004
  • Borrego B., Fernandez-Pacheco P., Ganges L., Domenech N., Fernandez-Borges N., Sobrino F., Rodríguez F. DNA Vaccines expressing B and T cell epitopes can protect mice from FMDV infection in the absence of specific humoral responses. Vaccine, 2006, 24: 3889-3899 ( ) DOI: 10.1016/j.vaccine.2006.02.028
  • Ganges L., Barrera M., Núñez J.I., Blanco I., Frias M.T., Rodríguez F., Sobrino F. A DNA Vaccine expressing the E2 protein of classical swine fever virus elicits T cell responses that can prime for rapid antibody production and confer total protection upon viral challenge. Vaccine, 2005, 23: 3741-3752 ( ) DOI: 10.1016/j.vaccine.2005.01.153
  • Wahren B., Liu M.A. DNA Vaccines: recent developments and the future. Vaccines, 2014, 2(4): 785-796 ( ) DOI: 10.3390/vaccines2040785
  • Cantlon J.D., Gord P.W., Bowen R.A. Immune responses in mice, cattle and horses to a DNA vaccine for vesicular stomatitis. Vaccine, 2000, 18(22): 2368-2374 ( ) DOI: 10.1016/S0264-410x(00)00007-4
  • Mateen I., Irshad S. A review on DNA Vaccines. Journal of Health Sciences, 2011, 1(1): 1-7 ( ) DOI: 10.5923/j.health.20110101.01
  • van Drunen S.L.H., Lawman Z., Wilson D., Luxembourg A., Ellefsen B., van den Hurk J.V., Hannaman D. Electroporation enhances immune responses and protection induced by a bovine viral diarrhea virus DNA Vaccine in newborn calves with maternal antibodies. Vaccine, 2010, 28: 6445-6454 ( ) DOI: 10.1016/j.vaccine.2010.07.045
  • Heegaard P.M., Dedieu L., Johnson N., Le Potier M.F., Mockey M., Mutinelli F., Vahlenkamp T., Vascellari M., Sørensen N.S. Adjuvants and delivery systems in veterinary vaccinology: current state and future developments. Arch. Virol., 2011, 156: 183-202 ( ) DOI: 10.1007/s00705-010-0863-1
  • Dale C.J., Thomson S., De Rose R., Ranasinghe C., Medveczky C.J., Pamungkas J., Boyle D.B., Ramshaw I.A., Kent S.J. Prime-boost strategies in DNA vaccines. Methods Mol. Med., 2006, 127: 171-197 ( ) DOI: 10.1385/1-59745-168-1:171
  • Radosevic K., Rodriguez A., Lemckert A., Goudsmit J. Heterologous prime-boost vaccinations for poverty-related diseases: advantages and future prospects. Expert Rev. Vaccines, 2009, 8(5): 577-592 ( ) DOI: 10.1586/erv.09.14
  • Корнева Е.А. Иммунофизиология -истоки и современные аспекты развития. Аллергия, астма и клиническая иммунология, 2000, 8: 36-44.
Еще
Статья обзорная