Механизмы взаимодействия мелатонина с лимфоцитами
Автор: Куклина Е.М., Глебездина Н.С.
Журнал: Вестник Пермского университета. Серия: Биология @vestnik-psu-bio
Рубрика: Иммунология
Статья в выпуске: 2, 2023 года.
Бесплатный доступ
Мелатонин представляет собой индоламин, синтезируемый из незаменимой аминокислоты триптофана. На системном уровне он производится преимущественно эпифизом, а на локальном - большинством органов и тканей. Гормон регулирует широкий спектр биологических реакций в норме и при патологии и обладает выраженной антиоксидантной, противовоспалительной и противоопухолевой активностью. Также он является эффективным регулятором иммунной системы, однако имеющиеся на сегодняшний день данные по проблеме крайне противоречивы, особенно это касается основных эффекторов адаптивного иммунитета - Т-лимфоцитов. С одной стороны, в физиологических условиях или при иммунодефицитных состояниях эффекты мелатонина, как правило, стимулирующие: он усиливает про-лиферативный ответ Т- и В-лимфоцитов, повышает продукцию Th1-цитокинов и ингибирует апоптоз лимфоцитов, индуцируемый различными стимулами. С другой стороны, имеется не меньшее количество работ, демонстрирующих иммуносупрессивную активность мелатонина, в частности, подавление продукции провоспалительных цитокинов. Разрешение этих противоречий и является целью настоящего обзора. При этом в работе сделаны акценты на два принципиальных момента. Во-первых, основная часть иммуностимулирующих эффектов получена в экспериментах in vitro, тогда как иммуносупрессивных - in vivo, а поскольку мелатонин контролирует синтез целого ряда других гормонов гипоталямо-гипофизарно-адренальной и/или гонадальной осей, многие из которых сами являются эффективными иммуномодуляторами, его непосредственные эффекты in vivo могут опосредоваться и нивелироваться другими гормонами. Во-вторых, лимфоциты экспрессируют три высокоаффинных рецептора для мелатонина - два мембранных, МТ1 и МТ2, и ядерный, RORα, а также целый ряд низкоспецифичных мишеней, и все с разной аффинностью к мелатонину. Связывание разных рецепторов запускает, по-видимому, различные сигнальные механизмы. Соответственно, физиологические, патологические и фармакологические концентрации мелатонина могут иметь разные иммуномодулирующие эффекты, и при оценке действия мелатонина на иммунную систему важно соотносить концентрации гормона с состоянием рецепторного аппарата исследуемых клеток.
Лимфоциты, мелатонин, мелатониновые рецепторы, мт1/мт2, rorα
Короткий адрес: https://sciup.org/147241921
IDR: 147241921 | DOI: 10.17072/1994-9952-2023-2-195-204
Текст обзорной статьи Механизмы взаимодействия мелатонина с лимфоцитами
Мелатонин (N-ацетил-5-метокситриптамин) – гормон, который секретируется преимущественно эпифизом и является одним из самых многофункциональных регуляторов в организме: он контролирует ритмы сна и бодрствования, репродукцию и костный метаболизм, а также нервную, сердечнососудистую, пищеварительную и эндокринную системы [Mahmood, 2019; Ferlazzo et al., 2020]. Кроме того, мелатонин обладает антиоксидантными, противовоспалительными, противоопухолевыми свойствами [Cutando et al., 2012; Tan et al., 2015; Favero et al., 2017] и является потенциальным терапевтическим средством при лечении сердечно-сосудистых заболеваний, нейродегенеративных расстройств и нарушений метаболизма [Srinivasan, Cardinali, Srinivasan, 2011; Cardinali et al., 2011; Sun, Gusdon, Qu, 2012; Lin et al., 2013; Xu et al., 2019; Spinedi, Cardinali, 2019; Shen et al., 2022].
Наряду с этим, гормон участвует в работе иммунной системы: иммунокомпетентные клетки экспрессируют специфические рецепторы для мелатонина, а также его неспецифические мишени, и эффективно регулируются гормоном, что подтверждено многочисленными работами [Drazen et al., 2000; Guerrero, Reiter, 2002; Pozo et al., 2004; Ragonda, Diederich, Ghibelli, 2010]. Но если в отношении мелатонин-зависимой регуляции клеток неспецифического иммунитета большинство исследователей единодушны [Calvo, Gonzalez-Yanes, Maldonado, 2013; NaveenKumar et al., 2020], то данные по влиянию гормона на эффекторы адаптивного иммунитета, в частности, на Т-лимфоциты, крайне противоречивы [Raghavendra et al., 2001; Arias et al., 2003; Carrillo-Vico et al., 2013; Gupta, Haldar, 2013; Alvarez-Sanchez et al., 2015]. И разрешить эти противоречия можно, очевидно, только с учетом наличия и уровня экспрессии мишеней для мелатонина в исследуемых клетках – именно такой анализ является предметом настоящего обзора.
Мелатонин-зависимая регуляция лимфоцитов
Роль мелатонина в регуляции иммунной системы и, в частности, основных эффекторов адаптивного иммунитета, лимфоцитов, известна давно. Тем не менее, имеющиеся на сегодняшний день данные по проблеме вызывают больше вопросов, чем ответов. С одной стороны, показано стимулирующее действие гормона как на ранние этапы активации лимфоцитов, так и на их функциональную дифференцировку. Так, мелатонин усиливает продукцию IL-2, экспрессию рецептора для IL-2 (IL-2-зависимый сигнал необходим для индукции пролиферации) [Garcia-Maurino et al., 1997; Carrillo-Vico, Lardone, Naji, 2005; Gupta, Haldar, 2013] и пролиферативный ответ Т- и В-лимфоцитов [Drazen et al., 2000; Raghavendra et al., 2001; Arias et al., 2003; Gupta, Haldar, 2013]. Более того, в экспериментах in vitro показана собственная продукция мелатонина Т-лимфоцитами в ответ на поликлональную активацию, причем в количествах, превышающих его верхний физиологический уровень, и участие такого эндогенного мелатонина в качестве аутокринного или паракринного фактора в индукции синтеза Т-клетками IL-2 и IL-2-рецептора
[Carrillo-Vico et al., 2004, 2005; Lardone et al., 2006, 2010; Naranjo et al., 2007] – это позволяет рассматривать гормон в качестве облигатного эндогенного костимулятора Т-лимфоцитов. В подтверждение этих данных выявлено гормон-зависимое повышение экспрессии активационного маркера лимфоцитов CD69 [Garcia-Maurino et al., 1997], костимулирующей мембранной молекулы CD28 и маркера Т-клеточной активации р21 наивными CD4+Т-лимфоцитами [Yoo et al., 2016], а также маркеров пролиферации Ki67 и Bcl2 антиген-специфичными Т-лимфоцитами [Yoo et al., 2016]. Одновременно показано стимулирующее действие мелатонина и на функциональную дифференцировку Т-хелперов (Th): он повышал продукцию ключевого Th1-цитокина IFNγ [Garcia-Maurino et al., 1997, 1999], а мы в недавней работе выявили гормон-зависимую стимуляцию дифференцировки Т-хелперов, продуцирующих IL-17 (Th17) [Куклина, Глебездина, Некрасова, 2015]. Наряду с этим, продемонстрирована способность мелатонина ингибировать апоптоз лимфоцитов, индуцируемый различными стимулами [Espino et al., 2011; Espino, Rodriguez, Pariente, 2013], что также вносит вклад в активацию клеток. Эти эффекты подкрепляются и данными in vivo : у грызунов Funambulus pennantii экзогенный гормон повышал Т-зависимый иммунный ответ, усиливая реакцию гиперчувствительности замедленного типа, и вызывал бласттрансформацию спленоцитов [Gupta, Haldar, 2013], а в исследовании на цыплятах-бройлерах пролиферация тимических Т-лимфоцитов позитивно коррелировала с концентрацией мелатонина в плазме, тогда как пинеалэктомия, сопровождавшаяся снижением уровня гормона в циркуляции, снижала Т-клеточную пролиферацию, как и блокада мелатонинового рецептора МТ1 [Chen et al., 2016].
С другой стороны, имеется не меньшее количество работ, демонстрирующих иммуносупрессивную активность мелатонина. В частности, мелатонин снижает продукцию IFNγ CD4+Т-лимфоцитами в ответ на поликлональную активацию ex vivo , но повышает уровень IL-4 и IL-10, сдвигая цитокиновый профиль в направлении Th2-типа [Raghavendra et al., 2001], а в работе Alvarez-Sanchez с коллегами стимуляция мононуклеарных клеток лимфоузлов аутоантигеном pMOG на фоне гормона приводила к снижению числа TNF-позитивных CD4+Т-лимфоцитов, не влияя на уровень IL-17+CD4+ и IFNγ+CD4+Т-лимфоцитов [Alvarez-Sanchez et al., 2015]. В то же время, Farez с соавторами продемонстрировали способность мелатонина ингибировать дифференцировку наивных CD4+Т-клеток в Th17 in vitro в Th17-поляризующих условиях, не оказывая влияния на развитие Th1, Th2 и классических Treg [Farez et al., 2015]. В экспериментах in vivo введение экзогенного мелатонина мышам сопровождалось снижением уровня IFNγ и одновременным повышением IL-4 в сыворотке [Shaji, Kulkarni, Agrewala, 1998], а также снижением продукции IFNγ и TNF CD4+Т-лимфоцитами ex vivo [Alvarez-Sanchez et al., 2015]. А у мышей, стимулированных аутоантигеном MOG, экзогенный мелатонин снижал численность IFNγ+CD4+, TNF+CD4+ и IL-17+CD4+Т-лимфоцитов в ЦНС [Alvarez-Sanchez et. al., 2015], а также IL-17+IFNγ+CD4+ и IL-17+GM-CSF+CD4+Т-лимфоцитов в селезенке, лимфоузлах и в ЦНС [Farez et al., 2015].
При анализе приведенных выше данных обращает на себя внимание, что непосредственные эффекты гормона в отношении лимфоцитов, как правило, стимулирующие [Drazen et al., 2000; Arias et al., 2003; Espino, Rodriguez, Pariente, 2013], тогда как основная часть иммуносупрессивных эффектов получена в экспериментах in vivo . И в этой связи важно учитывать, что мелатонин контролирует синтез целого ряда других гормонов гипоталямо-гипофизарно-адренальной и/или гонадальной осей, многие из которых сами являются эффективными иммуномодуляторами [Gupta, Haldar, 2013], поэтому действие мелатонина in vivo могут опосредоваться и нивелироваться другими гормонами, в частности, такими мощными иммуносупрессорами, как глюкокортикоиды или половые стероидные гормоны. Однако различия в методических подходах не позволяют полностью разрешить противоречия в эффектах мелатонина в отношении лимфоцитов – для этого необходимо разобраться с вопросом о специфических и неспецифических мишенях гормона в лимфоидных клетках.
Лимфоцитарные рецепторы для мелатонина и неспецифические внутриклеточные мишени
У млекопитающих идентифицировано два типа высокоаффинных мембранных рецепторов для мелатонина, MT1 и MT2 [Reppert, Weaver, Ebisawa, 1994; Reppert et al., 1995; Dubocovich, Markowska, 2005]. В недавних работах были представлены структуры этих рецепторов, полученные рентгеновской кристаллографией и криоэлектронной микроскопией [Johansson et al., 2019; Okamoto et al., 2019; Stauch et al., 2019]. MT1 и MT2 являются типичными G белок-связывающими рецепторами, имеющими 55% идентичности [Dubocovich, Markowska, 2005]. Оба рецептора действуют в основном через ингибиторные G-белки, Gi, подавляя аденилатциклазу и, как следствие, вызывая снижение уровня cAMP и активности сАМР-зависимой протеинкиназы PKA в клетке [Comai, Gobbi, 2014; Emet et al., 2015], а для МТ2 показано действие и через гуанилатциклазную систему [Dubocovich, Markowska, 2005; Comai, Gobbi, 2014]. MT1 и MT2 имеют разную аффинность к мелатонину – 80.7 и 383 pM, соответственно [Kato et al., 2005]. Оба рецептора широко представлены в иммунной системе, в том числе на мембране лимфоцитов
[Pozo et al., 2004; Ekmekcioglu, 2006; Lardone et al., 2011; Espino, Rodriguez, Pariente, 2013; Kuklina, 2014; Куклина, Глебездина, Некрасова, 2015; Глебездина и др., 2019a, b].
Наряду с мембранными рецепторами, идентифицирован высокоаффинный ядерный рецептор для мелатонина – это транскрипционный фактор, принадлежащий семейству ассоциированных с ретиноевой кислотой орфанных рецепторов (retinoic acid-related orphan receptor, ROR), RORα [Wiesenberg et al., 1995; Lardone et al., 2011], хотя в настоящее время непосредственное взаимодействие гормона с RORα оспаривается [Slominski et al., 2014]. Так, в 1995 г. I. Wiesenberg с коллегами идентифицировали RORα как ядерный рецептор для мелатонина [Wiesenberg et al., 1995], определив с помощью классического скэтчардовского анализа константу диссоциации для взаимодействия RORα с мелатонином (Kd = 1 .71 nM). В 2011 г. P.J. Lardone с коллегами «переоткрыли» RORα как рецептор для мелатонина [Lardone et al., 2011], показав на Т-лимфоцитарной линии Jurkat, что мелатонин копреципитируется (иммуноблоттинг) и колокализуется с RORα (иммунофлуоресцентный анализ), а также в наномолярных концентрациях вызывает перераспределение RORα внутри клетки, регистрируемое с помощью лазерной сканирующей конфокальной микроскопии [Lardone et al., 2011], что, хотя и косвенно, но убедительно указывает на взаимодействие гормона с RORα. Однако в 2014 г. A.J. Slominski с коллегами не выявили специфического связывания мелатонина с RORα в ходе кристаллографического исследования лиганд-связывающего домена RORα, а также функционального анализа способности мелатонина напрямую регулировать RORα [Slominski et al., 2014]. Следует отметить, что, несмотря на высокий методический уровень, работа имеет как минимум два слабых момента: во-первых, авторы никак не объясняют и не упоминают работы своих предшественников, оценивших конкретные параметры лиганд-рецепторного взаимодействия; во-вторых, представленные в статье результаты функциональных тестов явно неубедительны – мелатонин использован в работе в микромолярных концентрациях, в которых он неспецифически взаимодействует с другими внутриклеточными мишенями, которые будут рассмотрены ниже, и эффекты мелатонина, опосредуемые этими мишенями, вероятнее всего, просто перекрывают RORα-зависимое действие гормона. Так или иначе, вопрос о том, является ли RORα специфическим рецептором для мелатонина, до сих пор остается открытым [Ма et al., 2021]. Однако независимо от того, регулирует ли мелатонин RORα напрямую или такая регуляция опосредуется другими факторами (например, сигналами от мембранных рецепторов МТ1/МТ2), участие RORα в реализации эффектов мелатонина подтверждено многочисленными исследованиями [Lardone et al., 2011; Куклина, Глебездина, Некрасова, 2015; Garcia et al., 2015; Farez et al., 2016; Глебездина и др., 2019a, b; Ding et al., 2019; Huang et al., 2020; Li et al., 2020; Zang et al., 2020]. Важно отметить, что RORα имеет непосредственное отношение к иммунорегуляции – он выявляется как в миелоидных [Pozo et al., 2004], так и в лимфоидных [Lardone et al., 2011; Куклина, Глебездина, Некрасова, 2015; Глебездина и др., 2019a, b] клетках и служит одним из двух ключевых транскрипционных факторов, ответственных за дифференцировку и функционирование Т-хелперов, продуцирующих IL-17 (Th17), наряду с RORγt [Yang et al., 2008; Kojima, Muromoto, Takahashi, 2012]. Активация RORα промотирует дифференцировку Th17 и значительно усиливает продукцию IL-17А и IL-17F, тогда как дефицит этого фактора сопровождается снижением экспрессии IL-17 in vitro и in vivo [Yang et al., 2008; Kojima, Muromoto, Takahashi, 2012]. Кроме того, RORα является негативным регулятором активации Treg [Du et al. 2008].
Помимо прочего, в микромолярных концентрациях мелатонин может взаимодействовать с другими внутриклеточными мишенями, такими как кальмодулин, глутатион трансфераза [Leon et al., 2000; Ra-dogna, Diederich, Ghibelli, 2010] или хинон-редуктаза 2, идентифицированная как еще один, цитоплазматический рецептор для мелатонина, МТ3 [Calamini et al., 2008]. А поскольку указанные факторы являются облигатными для организма, большинство клеток служат потенциальными мишенями для мелатонина, хотя низкая аффинность этих факторов делает возможным такое взаимодействие только при концентрациях мелатонина, значительно превышающих физиологические.
В целом, что касается лимфоцитов, эти клетки экспрессируют как минимум два высокоаффинных рецептора для мелатонина – мембранные МТ1 и МТ2 [Reppert, Weaver, Ebisawa, 1994; Reppert et al., 1995], а для Т-хелперной популяции Th17 и для части регуляторных Т-лимфоцитов (regulatory T cells, Treg) к мембранным рецепторам добавляется ядерный, RORα [Wiesenberg et al., 1995; Lardone et al., 2011]. И все специфические рецепторы имеют разную аффинность к мелатонину: между мембранными рецепторами разница в 5 раз [Kato et al., 2005], что соответствует физиологическим колебаниям уровня гормона в течение суток, а аффинность ядерного на два порядка ниже, чем мембранных. Кроме того, в микромоляр-ных концентрациях мелатонин способен связываться с другими внутриклеточными мишенями, такими как хинон-редуктаза 2, идентифицированная как еще один, цитоплазматический рецептор для мелатонина, МТ3 [Calamini et al., 2008], или кальмодулин [Leon et al., 2000; Radogna, Diederich, Ghibelli, 2010], также присутствующие в лимфоцитах и участвующие в антиген-зависимой активации клеток. Связывание разных рецепторов запускает, по-видимому, различные сигнальные механизмы, приводящие к разным последствиям. Как следствие, физиологические, патологические и фармакологические концентрации мелатонина могут иметь совершенно разные иммуномодулирующие эффекты, и противоречия в данных по действию мелатонина на иммунную систему могут быть связаны, в том числе, и с этим фактом.
Заключение
Наличие у лимфоцитов большого количества мишеней для мелатонина с разной аффинностью к гормону свидетельствует о том, что ключевым моментом, определяющим направленность эффектов гормона в отношении этих клеток, является его концентрация. При этом важно учитывать и собственную продукцию мелатонина лимфоцитами, возрастающую при активации и превышающую его физиологические уровни в экспериментах in vitro [Carrillo-Vico et al., 2004; Carrillo-Vico, Lardone, Naji, 2005; Lardone et al., 2006, 2010; Naranjo et al., 2007], поскольку мелатонин, синтезируемый лимфоцитами, может маскировать эффекты как эндогенного гормона, секретируемого эпифизом, так и экзогенного. Не случайно стимулирующий эффект гормона в отношении продукции Т-лимфоцитами IL-2 и IFNγ in vitro выявлялся только для неактивированных клеток или в случае слабой активации, и для физиологических концентраций мелатонина [Garcia-Maurino et al., 1997]. И анализ других данных подтверждает это предположение: стимулирующие эффекты гормона выявляются в основном в физиологических условиях или при иммунодефицитных состояниях [Garcia-Maurino et al., 1997; Drazen et al., 2000; Arias et al., 2003], тогда как иммуносупрессивная активность мелатонина часто демонстрируется в условиях избыточной активации иммунной системы [Carrillo-Vico et al., 2005; Wu et al., 2012]. С этих позиций не выглядят неразрешимыми противоречия в данных о гормон-зависимой регуляции дифференцировки клеток Th17: мы показали стимулирующее действие для физиологических и низких фармакологических концентраций мелатонина [Куклина, Глебездина, Некрасова, 2015; Глебездина и др., 2019b], укладывающихся в диапазон аффинности его специфических рецепторов, в то время как в работе М.F. Farez с соавторами, продемонстрировавшей ингибиторные эффекты мелатонина, гормон использован in vitro в концентрации 500 нг/мл, которая несопоставима ни с физиологическими, ни с фармакологическими уровнями гормона. А в микромолярных концентрациях эффекты мелатонина реализуются преимущественно через неспецифические (низкоаффинные) мишени, такие как хинон редуктаза 2 или кальмодулин, – к слову, в ряде исследований мелатонин в таких дозах эффективно подавляет пролиферацию опухолевых клеток и индуцирует их апоптоз [Sanchez-Barcelo et al., 2005; Pariente et al., 2017], то есть демонстрирует эффекты, противоположные многократно подтвержденным эффектам для физиологических концентраций гормона. Важно также отметить, что при обсуждении RORα-зависимого действия мелатонина нужно учитывать ограниченную экспрессию RORα в лимфоцитах – он является облигатной молекулой в клетках Th17, для которых служит дифференцировочным фактором, а также в части регуляторных Т-клеток, но не представлен в остальных Т-хелперных популяциях, таких как Th1 или Th2, и не может опосредовать гормональные эффекты в этих клетках.
В целом, обсуждая и прогнозируя эффекты мелатонина в Т-лимфоцитах, следует учитывать два основных момента: во-первых, наличие у этих клеток трех типов специфических рецепторов и множества неспецифических мишеней для гормона, с разной аффинностью и разными сигнальными механизмами, что определяет прямую зависимость эффектов гормона от его концентрации, а также от наличия и уровня экспрессии соответствующих мишеней; во-вторых, участие мелатонина in vivo в синтезе целого ряда других гормонов, многие из которых являются эффективными иммунорегуляторами и могут как усиливать, так и нивелировать эффекты самого мелатонина.
Список литературы Механизмы взаимодействия мелатонина с лимфоцитами
- Глебездина Н.С. и др. Молекулярные механизмы контроля дифференцировки регуляторных Т-лимфоцитов экзогенным мелатонином // Доклады Академии наук. 2019a. Т. 484, № 2. С. 224-227.
- Глебездина Н.С. и др. Вклад разных типов мелатониновых рецепторов в гормон-зависимую регуляцию дифференцировки Т-лимфоцитов, продуцирующих IL-17 (Th17) // Российский иммунологический журнал. 2019b. Т. 13, № 2. С. 751-753.
- Куклина Е.М., Глебездина Н.С., Некрасова И.В. Роль мелатонина в контроле дифференцировки Т -лимфоцитов, продуцирующих интерлейкин-17 (Th17) // Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. 2015. Т. 160, № 11. С. 604-607.
- Alvarez-Sanchez N. et al. Melatonin controls experimental autoimmune encephalomyelitis by altering the T effector/regulatory balance // Brain Behav Immun. 2015. Vol. 50. P. 101-114.
- Arias J. et al. Effect of melatonin on lymphocyte proliferation and production of interleukin-2 (IL-2) and interleukin-1 beta (IL-1 beta) in mice splenocytes // Invest. Clin. 2003. Vol. 44, № 1. P. 41-50.
- Calamini B. et al. Kinetic, thermodynamic and X-ray structural insights into the interaction of melatonin and analogues with quinone reductase 2 // Biochem. J. 2008. Vol. 413(1). P. 81-91.
- Calvo J.R., Gonzalez-Yanes C., Maldonado M. D. The role of melatonin in the cells of the innate immunity: a review // J. Pineal. Res. 2013. Vol. 55, № 2. P. 103-120.
- Cardinali D.P et al. Melatonin and the metabolic syndrome: physiopathologic and therapeutical implications // Neuroendocrinology. 2011. Vol. 93, № 3. P. 133-142.
- Carrillo-Vico A. et al. Evidence of mle synthesis by human lymphocytes and its physiological significance: possible role as intracine, autocrine and/or paracrine substance // FASEB J. 2004. Vol. 18. P. 537-539.
- Carrillo-Vico A., Lardone P.J., Naji L. Beneficial pleiotropic actions of melatonin in an experimental model of septic shock in mice: Regulation of pro-/ anti-inflammatory cytokine network, protection against oxidative damage and anti-apoptotic effects // J. Pineal. Res. 2005. Vol. 39. P. 400-408.
- Carrillo-Vico A. et al. Melatonin: buffering the immune system // Int. J. Mol. Sci. 2013. Vol. 14, № 4. P. 8638-8683.
- Chen F. et al. Effect of melatonin on monochromatic light-induced T-lymphocyte proliferation in the thymus of chickens // J. Photochem. Photobiol B. 2016. Vol. 161. P. 9-16.
- Comai S., Gobbi G. Unveiling the role of melatonin MT2 receptors in sleep, anxiety and other neuropsychiatry diseases: a novel target in psychopharmacology // J. Psychiatry Neurosci. 2014. Vol. 39. P. 6-21.
- Cutando A. et al. Role of melatonin in cancer treatment // Anticancer Res. 2012. Vol. 32, № 7. P. 2747-2753.
- Ding S. et al. Melatonin stabilizes rupture-prone vulnerable plaques via regulating macrophage polarization in a nuclear circadian receptor RORa-dependent manner // J. Pineal. Res. 2019. Vol. 67. P. e12581.
- Drazen D.L. et al. In vitro melatonin treatment enhances splenocyte proliferation in prairie voles // J. Pineal. Res. 2000. Vol. 28, № 1. P. 34-40.
- Du J. et al. Isoform-Specific Inhibition of RORa-Mediated Transcriptional Activation by Human FOXP3 // J. Immunol. 2008. Vol. 180, № 7. P. 4785-4792.
- Dubocovich M.L., Markowska M. Functional MT1 and MT2 melatonin receptors in mammals // Endocrine. 2005. Vol. 27. P. 101-110.
- Ekmekcioglu C. Melatonin receptors in humans: biological role and clinical relevance // Biomed. Phar-macother. 2006. Vol. 60, № 3. P. 97-108.
- Emet M. et al. A Review of Melatonin, Its Receptors and Drugs // The Eurasian Journal of Medicine. 2016. Vol. 48 (2). P. 135-141.
- Espino J. et al. Protective effect of melatonin against human leukocyte apoptosis induced by intracellular calcium overload: relation with its antioxidant actions // J. Pineal. Res. 2011. Vol. 51, № 2. P. 195-206.
- Espino J., Rodriguez A.B., Pariente J.A. The inhibition of TNF-a-induced leucocyte apoptosis by melatonin involves membrane receptor MT1/MT2 interaction // J. Pineal. Res. 2013. Vol. 54, № 4. P. 442-452.
- Farez M.F. et al. Melatonin Contributes to the Seasonality of Multiple Sclerosis Relapses // Cell. 2015. Vol. 162. P. 1338-1352.
- Farez M.F. et al. Anti-inflammatory effects of melatonin in multiple sclerosis // Bioessays. 2016. Vol. 38. P. 1016-1026.
- Favero G. et al. Melatonin as an Anti-Inflammatory Agent Modulating Inflammasome Activation // Int. J. Endocrinol. 2017. Vol. 2017. P. 1835195.
- Ferlazzo N. et al. Is Melatonin the Cornucopia of the 21st Century? // Antioxidants. 2020. Vol. 9, № 11. P. 1088.
- Garcia J.A. et al. Disruption of the NF-kB/NLRP3 connection by melatonin requires retinoid-related orphan receptor-a and blocks the septic response in mice // FASEB J. 2015. Vol. 29. P. 3863-3875.
- Garcia-Maurino S. et al. Melatonin enhances IL-2, IL-6, and IFNy production by human circulating CD4+ cells: a possible nuclear receptor-mediated mechanism involving T helper type 1 lymphocytes and monocytes // J. Immunol. 1997. Vol. 159. P. 574-581.
- Garcia-Maurino S. Melatonin activates Th1 lymphocytes by increasing IL-12 production // Life Sci. 1999. Vol. 65 P. 2143-2150.
- Guerrero J.M., Reiter R.J. Melatonin-immune system relationships // Curr. Top. Med. Chem. 2002. V. 2. P. 167-179.
- Gupta S., Haldar C. Physiological crosstalk between melatonin and glucocorticoid receptor modulates t-cell mediated immune responses in a wild tropical rodent, funambulus pennant // J. Steroid. Biochem. Mol. Biol. 2013. Vol. 134. P. 23-36.
- Huang H. et al. Melatonin prevents endothelial dysfunction in SLE by activating the nuclear receptor ret-inoic acid-related orphan receptor-a // Int. Immunopharmacol. 2020. Vol. 83. P. 106365.
- Johansson L.C. et al. XFEL structures of the human MT2 melatonin receptor reveal the basis of subtype selectivity // Nature. 2019. Vol. 569 (7755). P. 289-292.
- Kato K. et al. Neurochemical properties of ramelteon (TAK-375), a selective MT35. 1/MT2 receptor agonist // Neuropharmacology. 2005. Vol. 48. P. 301-310.
- Kojima H., Muromoto R., Takahashi M. Inhibitory effects of azole-type fungicides on interleukin-17 gene expression via retinoic acid receptor-related orphan receptors a and y // Toxicol. Appl. Pharmacol. 2012. Vol. 259. P. 338-345.
- Kuklina E.M. Melatonin as potential inducer of Th17 cell differentiation // Medical Hypothesis. 2014. Vol. 83. P. 404-406.
- Lardone P.J. et al. Melatonin synthesized by Jurkat human leukemic T cell line is implicated in IL-2 production // J. Cell. Physiol. 2006. Vol. 206. P. 273-279.
- Lardone P.J. et al. Blocking of melatonin synthesis and MT(1) receptor impairs the activation of Jurkat T cells // Cell. Mol. Life. Sci. 2010. Vol. 67. P. 3163-3172.
- Lardone P.J. et al. Melatonin synthesized by T lymphocytes as a ligand of the retinoic acid-related orphan receptor // J. Pineal Res. 2011. Vol. 51. P. 454-462.
- Leon J. et al. Structure-related inhibition of calmodulin-dependent neuronal nitric-oxide synthase activity by melatonin and synthetic kynurenines // Mol. Pharmacol. 2000. Vol. 58, № 5. P. 967-975.
- Li Z. et al. Melatonin inhibits apoptosis in mouse Leydig cells via the retinoic acid-related orphan nuclear receptor a/p53 pathway // Life Sci. 2020. Vol. 246. P. 117431.
- Lin L. et al. Melatonin in Alzheimer's disease // Int. J. Mol. Sci. 2013. Vol. 14. P. 14575-14593.
- Ma H. et al. ROR: Nuclear Receptor for Melatonin or Not? // Molecules. 2021. Vol. 26, № 9. P. 2693.
- Mahmood D. Pleiotropic Effects of Melatonin // Drug Res (Stuttg). 2019. Vol. 69, № 2. P. 65-74.
- Naranjo M.C. et al. Melatonin biosynthesis in the thymus of humans and rats // Cell. Mol. Life Sci. 2007. Vol. 64, № 6. P. 781-790.
- NaveenKumar S.K. et al. Melatonin restores neutrophil functions and prevents apoptosis amid dysfunctional glutathione redox system // J. Pineal. Res. 2020. Vol. 69, № 3. P. e12676.
- Okamoto H.H. et al. Cryo-EM structure of the human MT1-Gi signaling complex // Nat. Struct. Mol Biol. 2021. Vol. 28 (8). P. 694-701.
- Pariente R. et al. Participation of MT3 melatonin receptors in the synergistic effect of melatonin on cytotoxic and apoptotic actions evoked by chemotherapeutics // Cancer Chemother Pharmacol. 2017. Vol. 80, № 5. P. 985-998.
- Pozo D. et al. mRNA expression of nuclear receptor RZR/RORa, melatonin membrane receptor MT1, and hydroxindole-O-methyltransferase in different populations of human immune cells // J. Pineal. Res. 2004. Vol. 37. P. 48-54.
- Raghavendra V. et al. Melatonin provides signal 3 to unprimed CD4(+) T cells but failed to stimulate LPS primed B cells // Clin. Exp. Immunol. 2001. Vol. 124. P. 414-422.
- Ragonda F., Diederich M., Ghibelli L. Melatonin: a pleiotropic molecule regulating inflammation // Bio-chem. Pharmacol. 2010. Vol. 80. P. 1844-1852.
- Reppert S.M. et al. Molecular characterization of a second melatonin receptor expressed in human retina and brain: the Mel1b melatonin receptor // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1995. Vol. 92, № 19. P. 8734-8738.
- Reppert S.M., Weaver D.R., Ebisawa T. Cloning and characterization of a mammalian melatonin receptor that mediates reproductive and circadian responses // Neuron. 1994 Vol. 13, № 5. P. 1177-1185.
- Sanchez-Barcelo E.J. et al. Melatonin-estrogen interactions in breast cancer // J. Pineal. Res. 2005. Vol. 38, № 4. P. 217-222.
- Shaji A.V., Kulkarni S.K., Agrewala J.N. Regulation of secretion of IL-4 and IgG1 isotype by melatonin-stimulated ovalbuminspecific T cells // Clin. Exp. Immunol. 1998. Vol. 111. P. 181-185.
- Shen S. et al. The role of melatonin in the treatment of type 2 diabetes mellitus and Alzheimer's disease // Int. J. Biol. Sci. 2022. Vol. 18, № 3. P. 983-994.
- Slominski A.T. et al. RORa and ROR y are expressed in human skin and serve as receptors for endoge-nously produced noncalcemic 20-hydroxy- and 20,23-dihydroxyvitamin D // FASEB J. 2014. Vol. 28. P. 27752789.
- Spinedi E., Cardinali D.P. Neuroendocrine-Metabolic Dysfunction and Sleep Disturbances in Neurodegenerative Disorders: Focus on Alzheimer's Disease and Melatonin // Neuroendocrinology. 2019. Vol. 108, № 4. P. 354-364.
- Srinivasan V., Cardinali D.P., Srinivasan U.S. Therapeutic potential of melatonin and its analogs in Parkinson's disease: focus on sleep and neuroprotection // Ther. Adv. Neurol. Disord. 2011. Vol. 4. P. 297-317.
- Stauch B. et al. Structural basis of ligand recognition at the human MT1 melatonin receptor // Nature. 2019. Vol. 569, № 7755. P. 284-288.
- Sun H., Gusdon A.M., Qu S. Effects of melatonin on cardiovascular diseases: progress in the past year // Curr. Opin. Lipidol. 2016. Vol. 27, № 4. P. 408-413.
- Tan D.X. et al. Melatonin as a Potent and Inducible Endogenous Antioxidant: Synthesis and Metabolism // Molecules. 2015. Vol. 20, № 10. P. 18886-18906.
- Wiesenberg I. et al. Transcriptional activation of the nuclear receptor RZRa by the pineal gland hormone melatonin and dentification of CGP52608 as a synthetic ligand // Nucleic. Acid. Res. 1995. Vol. 23. P. 327-333.
- Wu C.C. et al. Melatonin enhances endogenous heme oxygenase-1 and represses immune responses to ameliorate experimental murine membranous nephropathy // J. Pineal. Res. 2012. Vol. 52, № 4. P. 460-469.
- Xu L. et al. Melatonin differentially regulates pathological and physiological cardiac hypertrophy: Crucial role of circadian nuclear receptor RORa signaling // J. Pineal. Res. 2019. Vol. 67. P. e12579.
- Yang X.O. et al. T helper 17 lineage differentiation is programmed by orphan nuclear receptors ROR alpha and ROR gamma // Immunity. 2008. Vol. 28. P. 29-39.
- Yoo Y.M. et al. Pharmacological advantages of melatonin in immunosenescence by improving activity of T lymphocytes // J. Biomed. Res. 2016. Vol. 30. P. 314-321.
- Zang M. et al. The circadian nuclear receptor RORa negatively regulates cerebral ischemia-reperfusion injury and mediates the neuroprotective effects of melatonin. BBA // Mol. Basis Dis. 2020. Vol. 1866. P. 165890.