Микробиологическая защита растений в технологиях фитосанитарной оптимизации агроэкосистем: теория и практика (обзор)

Микробиологическая защита растений в технологиях фитосанитарной оптимизации агроэкосистем: теория и практика (обзор)

Автор: Павлюшин В.А., Новикова И.И., Бойкова И.В.

Журнал: Сельскохозяйственная биология @agrobiology

Рубрика: Обзоры, проблемы

Статья в выпуске: 3 т.55, 2020 года.

Бесплатный доступ

Фитосанитарная оптимизация агроэкосистем должна быть основана на использовании комплекса полифункциональных биопрепаратов на основе штаммов микробов - антагонистов возбудителей болезней, продуцентов биологически активных веществ и энтомопатогенных микроорганизмов для контроля вредных членистоногих и возбудителей болезней (В.Д. Надыкта с соавт., 2010; Rohini с соавт., 2016; М. Ghorbanpour с соавт., 2017). Для защиты растений наиболее перспективны штаммы микроорганизмов, которые обладают не только прямым целевым действием на вредные объекты, но и повышают болезнеустойчивость растений, опосредованно защищая их за счет фиторегуляторной активности штаммов-продуцентов (И.И. Новикова, 2016). Целостная концепция микробиологической защиты предполагает разработку и применение биопрепаратов на основе живых культур энтомопатогенных микроорганизмов и микробов-анта-гонистов, обладающих профилактическим и пролонгированным действием, а также препаративных форм на основе метаболитных комплексов для быстрого снижения плотности популяций фитопатогенов (И.И. Новикова с соавт., 2016). Методология создания полифункциональных биопрепаратов для защиты растений основана на использовании технологичных штаммов с высокой биологической активностью, безопасных для человека и теплокровных животных. Показано, что роль энтомопатогенных вирусов, микроспоридий, бактерий и грибов в динамике численности насекомых-фитофагов определяется типом патогенеза (облигатный или факультативный). При внутриклеточном облигатном паразитизме бакуловирусов и микроспоридий отмечены массовые эпизоотии у непарного шелкопряда ( Lymantria dispar Linnaeus), листоверток (сем. Tortricidae Latreille), капустной белянки ( Pieris brassicae Linnaeus), лугового и кукурузного мотыльков ( Loxostege sticticalis Linnaeus и Ostrinia nubilalis Hübner), рыжего соснового ( Neodiprion sertifer Geoffroy) и черного хлебного ( Cephus pygmeus Linnaeus) пилильщиков, сибирского шелкопряда ( Dendrolimus sibiricus Tschetverikov), хлопковой ( Helicoverpa armigera Hübner) и серой зерновой совки ( Apamea anceps Denis & Schiffermüller) (И.В. Исси, 1986; A. Vey с соавт., 1989; А.Н. Фролов с соавт., 2008; В.А. Павлюшин с соавт., 2013). Регулирующая роль энтомофторозов наиболее ярко проявляется у различных видов тлей и некоторых видов саранчовых (Г.Р. Леднев с соавт., 2013). При факультативном паразитизме, который характерен для энтомопатогенных грибов из родов Beauveria , Metarhizium , Lecanicillium и др. (E. Quessada-Moraga с соавт., 2004), а также бактерий группы Bacillus thuringiensis (Н.В. Кандыбин, 1989) и представителей рода Xenorhabdus , важнейший фактор в реализации вирулентных свойств - токсигенность в отношении насекомых-хозяев (M. Faria с соавт., 2007). Выявлена роль гидролитических ферментов (хитиназ, липаз, протеаз), токсинов, а также факторов антифагоцитарной защиты в реализации признака вирулентности энтомопатогенных грибов. Микробиологическая защита растений от болезней основана на использовании штаммов с высокой конкурентоспособностью, синтезирующих комплексы гидролаз и биологически активных соединений и эффективно колонизирующих подходящие экологические ниши (И.В. Максимов с соавт., 2015; И.И. Новикова, 2016; И.И. Новикова с соавт., 2016). Ряд активных соединений, образуемых ризосферными микроорганизмами, обладают элиситорной активностью и запускают механизмы индуцированной устойчивости (J.W. Kloepper с соавт., 2009; N. Ohkama-Ohtsu с соавт., 2010). Биологическая эффективность биопрепаратов, разработанных во Всероссийском НИИ защиты растений, в отношении развития и распространенности основных вредоносных заболеваний сельскохозяйственных культур достигает 60-90 %, что обеспечивает повышение продуктивности на 20-25 % и улучшение качества растениеводческой продукции (И.И. Новикова, 2017). Основные задачи микробиологической защиты растений включают расширение перспективных для создания новых биопрепаратов видов и штаммов микроорганизмов, разработку оптимальных для использования в разных экологических условиях новых препаративных форм, а также разработку систем биологической и интегрированной защиты растений на основе сочетания биопрепаратов разного целевого назначения с учетом состава фитопатогенных комплексов и фитосанитарной ситуации в целом (Н.А. Белякова с соавт., 2013).

Еще

Биопрепараты, биологическая эффективность, энтомопатогенные микроорганизмы, микробы-антагонисты, вредные членистоногие, фитопатогенные грибы, фитопатогенные бактерии, препаративные формы, биоактивные комплексы, элиситоры

Короткий адрес: https://sciup.org/142226306

IDR: 142226306   |   DOI: 10.15389/agrobiology.2020.3.421rus

Список литературы Микробиологическая защита растений в технологиях фитосанитарной оптимизации агроэкосистем: теория и практика (обзор)

  • Ghorbanpour M., Omidvari M., Abbaszadeh-Dahaji P., Omidvar R., Kariman K. Mechanisms underlying the protective effects of beneficial fungi against plant diseases. Biological Control, 2018, 117: 147-157 ( ). DOI: 10.1016/j.biocontrol.2017.11.006
  • Надыкта В.Д., Волкова Г.В., Долженко В.И. Биологическая защита растений - основа фитосанитарной стабилизации агроэкосистем и экологического земледелия. Защита и карантин растений, 2010, 11: 9-11.
  • Rohini, Gowtham H.G., Hariprasad P., Singh S.B., Niranjana S.R. Biological control of Phomopsis leaf blight of brinjal (Solanum melongena L.) with combining phylloplane and rhizosphere colonizing beneficial bacteria. Biological control, 2016, 101: 123-129 ( ). DOI: 10.1016/j.biocontrol.2016.05.007
  • Павлюшин В.А., Фасулати С.Р., Вилкова Н.А., Сухорученко Г.И., Нефедова Л.И. Антропогенная трансформация агроэкосистем и ее фитосанитарные последствия. СПб, 2008.
  • Павлюшин В.А., Вилкова Н.А., Сухорученко Г.И., Нефедова Л.И. Формирование агроэкосистем и становление сообществ вредных видов биотрофов. Вестник защиты растений, 2016, 2(88): 5-15.
  • Звягинцев Д.Г. Почва и микроорганизмы. М., 1987.
  • Полянский А.М., Головченко А.В., Полянская Л.М., Звягинцев Д.Г. Новые критерии для оценки специфики бактериальных комплексов различных почв. Микробиология, 2002, 71(5): 675-680.
  • Павлюшин В.А., Якуткин В.И., Таволжанский В.Н. Фитосанитарная оптимизация агроэкосистем Белгородской области. Вестник защиты растений, 2016, 1(87): 14-22.
  • Павлюшин В.А., Иващенко В.Г. Интенсификация растениеводства и эколого-продукционный баланс агроэкосистем: снижение плодородия почв и фитосанитарная дестабилизация. Вестник защиты растений, 2017, 3(93): 5-16.
  • Борисов Б.А., Серебров В.В., Новикова И.И., Бойкова И.В. Энтомопатогенные аскомицеты и дейтеромицеты. В сб.: Патогены насекомых: структурные и функциональные аспекты. М., 2001: 352-427.
  • Леднев Г.Р., Долгих В.В., Павлюшин В.А. Стратегии паразитизма энтомопатогенных микроорганизмов и их роль в снижении численности фитофагов. Вестник защиты растений, 2013, 3: 3-17.
  • Исси И.В. Микроспоридии как тип паразитических простейших. В кн.: Микроспоридии. Серия: Протозоология. Л., 1986, т. 10: 6-135.
  • Фролов А.Н., Малыш Ю.М., Токарев Ю.С. Особенности биологии и прогнозирования динамики численности лугового мотылька (Pyrausta sticticalis L.) в период его низкой численности в Краснодарском крае. Энтомологическое обозрение, 2008, 87(2): 291-302.
  • Павлюшин В.А., Исси И.В., Токарев Ю.С. Энтомопатогенные микроспоридии (Eukaria: Opisthokonta: Microsporidia): возможности применения против вредных насекомых. Вестник защиты растений, 2013, 2: 3-12.
  • Vey A., Riba G. Toxines insecticides issues de champignons entomopathogenes. Etat actuel des conaissances dutilsation de leurs activites. C. K. Acad. Agr., 1989, 75(6): 143-149.
  • Quessada-Moraga E., Vey A. Bassiacridin, a protein toxic for locusts secreted by the entomopathogenis fungus Beauveria bassiana. Mycol. Res., 2004, 108: 441-452 ( ).
  • DOI: 10.1017/S0953756204009724
  • Кандыбин Н.В. Бактериальные средства борьбы с грызунами и вредными насекомыми: теория и практика. М., 1989.
  • Augustyniak J., Dabert M., Wypijewski K. Transgenes in plants: protection against viruses and insects. Acta Physiologiae Plantarum, 1997, 19(4): 561-569 ( ).
  • DOI: 10.1007/s11738-997-0054-1
  • Faria M., Wraight S.P. Mycoinsecticides and mycoacaricides: a comprehensive list with worldwide coverage and international classification of formulation types. Biological Control, 2007: 43(3): 237-256 ( ).
  • DOI: 10.1016/j.biocontrol.2007.08.001
  • Митина Г.В., Козлова Е.Г., Пазюк И.М. Влияние биопрепарата вертициллина М на основе экстракта энтомопатогенного гриба Lecanicillium muscarium и его инсектицидных метаболитов на энтомофагов защищенного грунта. Вестник защиты растений, 2018, 2(96): 25-32.
  • Sharma M., Dangi P., Choudhary M. Actinomycetes: source, identification, and their applications. International Journal of Current Microbiology and Applied Sciences (IJCMAS), 2014, 3(2): 801-832.
  • Aggarwal N., Thind S.K., Sharma S. Role of secondary metabolites of Actinomycetes in crop protection. In: Plant growth promoting actinobacteria: A new avenue for enhancing the productivity and soil fertility of grain legumes /G. Subramaniam, S. Arumugam, V. Rajendran (eds.). Springer, Singapore, 2016: 99-121 ( ).
  • DOI: 10.1007/978-981-10-0707-1_7
  • Méndes W.A., Valle J., Ibarra J.E., Cisneros J., Penagos D.I., Williams T. Spinosad and nucleopolyhedrovirus mixtures for control of Spodoptera frugiperda (Lepidoptera: Noctuidae) in maize. Biological Control, 2002, 25(2): 195-206 (
  • DOI: 10.1016/S1049-9644(02)00058-0)
  • Kirst H.A. The spinosyn family of insecticides: realizing the potential of natural products research J. Antibiot. (Tokio), 2010, 63(3): 101-11 ( ).
  • DOI: 10.1038/ja.2010.5
  • Baker G.H., Dorgan R.J., Everett J.R., Hood J., Poulton M.E. A novel series of milbemicin antibiotics from Streptomyces strain E225. II. Isolation, characterisation, structure elucidation. J. Antibiot. (Tokyo), 1990, 43(9): 1069-1076 ( ).
  • DOI: 10.7164/antibiotics.43.1069
  • Джафаров М.Х., Василевич Ф.И., Мирзаев М.Н. Получение авермектинов: биотехнологии и органический синтез (обзор). Сельскохозяйственная биология, 2019, 54(2): 199-215 ( ).
  • DOI: 10.15389/agrobiology.2019.2.199rus
  • Бойкова И.В. Биологические особенности стрептомицетов - основы новых инсектицидных биопрепаратов. Автореф. кан. дис. СПб, 1998.
  • Бойкова И.В., Павлюшин В.А. Актиномицеты - основа новых биопрепаратов для защиты растений от вредных членистоногих. Информационный бюллетень ВПРС МОББ, 2002, 33: 102-113.
  • Бойкова И.В., Козлова Е.Г., Анисимова О.С., Кононенко А.В. Индоцид и гербен - перспективные биопрепараты для закрытого грунта. Защита и карантин растений, 2007, 9: 40-41.
  • Тихонович И.А., Проворов Н.А. Симбиозы растений и микроорганизмов: молекулярная генетика агроэкосистем будущего. СПб, 2009.
  • Doornbos R.F., van Loon L.C., Bakker P.A.H.M. Impact of root exudates and plant defense signaling on bacterial communities in the rhizosphere. a review. Agronomy for Sustainable Development, 2012, 32(1): 227-243 ( ).
  • DOI: 10.1007/s13593-011-0028-y
  • Pieterse C.M.J., Zamioudis C., Berendsen R.L., Weller D.M., van Wees S.C.M., Bakker P.A.H.M. Induced systemic resistance by beneficial microbes. Annual Review of Phytopathology, 2014, 52: 347-375 ( ).
  • DOI: 10.1146/annurev-phyto-082712-102340
  • Compant S., Duffy B., Nowak J., Clément C., Barka E.A. Use of plant growth-promoting bacteria for biocontrol of plant diseases: principles, mechanisms of action, and future prospects. Applied and Environmental Microbiology, 2005, 71(9): 4951-4959 ( ).
  • DOI: 10.1128/AEM.71.9.4951-4959.2005
  • Beneduzi A., Ambrosini A., Passaglia L.M.P. Plant growth-promoting rhizobacteria (PGPR): their potential as antagonists and biocontrol agents. Genet. Mol. Biol., 2012, 35(4, suppl. 1): 1044-1051 ( ).
  • DOI: 10.1590/S1415-47572012000600020
  • Kumar P., Dubey R.C., Maheshwari D.K. Bacillus strains isolated from rhizosphere showed plant growth promoting and antagonistic activity against phytopathogens. Microbiological Research, 2012, 167(8): 493-499 ( ).
  • DOI: 10.1016/j.micres.2012.05.002
  • Ye Y.F., Li Q.Q., Fu G., Yuan G.Q., Miao J.H, Lin W. Identification of antifungal substance (Iturin A2) produced by Bacillus subtilis B47 and its effect on southern corn leaf blight. J. Integr. Agric., 2012, 11(1): 90-99 (
  • DOI: 10.1016/S1671-2927(12)60786-X)
  • Dunlap C.A, Schisler D.A, Bowman M.J, Rooney A.P. Genomic analysis of Bacillus subtilis OH 131.1 and co-culturing with Cryptococcus lavescens for control of Fusarium head blight. Plant Gene, 2015, 2: 1-9 ( ).
  • DOI: 10.1016/j.plgene.2015.03.002
  • Новикова И.И. Биологическое разнообразие микроорганизмов - основа для создания новых полифункциональных биопрепаратов для фитосанитарной оптимизации агроэкосистем. Вестник защиты растений, 2016, 89(3): 120-122.
  • Новикова И.И., Попова Э.В., Бойкова И.В., Павлюшин В.А., Тютерев С.Л. Роль интродуцированных микробов-антагонистов фитопатогенных микромицетов в повышении супрессивности почвы. Защита и карантин растений, 2016, 8: 35-43.
  • Yang L., Quan X., Xue B., Goodwin P.H., Lu S., Wang J., Wei D., Wu C. Isolation and identification of Bacillus subtilis strain YB-05 and its antifungal substances showing antagonism against Gaeumannomyces graminis var. tritici. Biological Control, 2015, 85: 52-58 ( ).
  • DOI: 10.1016/j.biocontrol.2014.12.010
  • Максимов И.В., Веселова С.В., Нужная Т.В., Сарварова Е.Р., Хайруллин Р.М. Стимулирующие рост растений бактерии в регуляции устойчивости растений к стрессовым факторам. Физиология растений, 2015, 62(6): 763-775 ( ).
  • DOI: 10.7868/S0015330315060111
  • Tan S.Y., Jiang Y., Song S., Huang J.F., Ling N., Xu Y.C., Shen Q.R. Two Bacillus amyloliquefaciens strains isolated using the competitive tomato root enrichment method and their effects on suppressing Ralstonia solanacearum and promoting tomato plant growth. Crop Protection, 2013, 43: 134-140 ( ).
  • DOI: 10.1016/j.cropro.2012.08.003
  • Duffy B., Schouten A., Raaijmakers J.M. Pathogen self-defense: mechanisms to counteract microbial antagonism. Annual Review of Phytopathology, 2003, 41: 501-538 ( ).
  • DOI: 10.1146/annurev.phyto.41.052002.095606
  • Аринбасарова А.Ю., Баскунов Б.П., Меденцев А.Г. Низкомолекулярный антимикробный пептид из Trichoderma cf. Rifai ВКМF-4268D. Микробиология, 2017, 86(2): 258-260 ( ).
  • DOI: 10.7868/S0026365617020057
  • Benítez T., Rincón A.M., Limón M.C., Codón A.C. Biocontrol mechanisms of Trichoderma strains. International Microbiology, 2004, 7(4): 249-260.
  • Sivasakthi S., Kanchana D., Usharani G., Saranraj P. Production of plant growth promoting substance by Pseudomonas fluorescens and Bacillus subtilis isolates from paddy rhizosphere soil of Cuddalore district, Tamil Nadu, India. International Journal of Microbiological Research, 2013, 4(3): 227-233 ( ).
  • DOI: 10.5829/idosi.ijmr.2013.4.3.75171
  • Bakker P.A.H.M., Pieterse C.M.J., van Loon L.C. Induced systemic resistance by fluorescent Pseudomonas spp. Phytopathology, 2007, 97(2): 239-243 ( ).
  • DOI: 10.1094/PHYTO-97-2-0239
  • Van Loon L.C. Plant responses to plant growth-promoting rhizobacteria. European Journal of Plant Pathology, 2007, 119: 243-254 ( ).
  • DOI: 10.1007/s10658-007-9165-1
  • Porcel R., Zamarreño Á.M., García-Mina J.M., Aroca R. Involvement of plant endogenous ABA in Bacillus megaterium PGPR activity in tomato plants. BMC Plant Biology, 2014, 14: 36 ( ).
  • DOI: 10.1186/1471-2229-14-36
  • Kilian M., Steiner U., Krebs B., Junge H., Schmiedeknecht G., Hain R. FZB24® Bacillus subtilis - mode of action of microbial agent enhancing plant vitality. Pflanzenschutz-Nachrichten Bayer, 2000, 1/00(1): 72-93.
  • Dobbelaere S., Vanderleyden J., Okon Y. Plant growth-promoting effects of diazotrophs in the rhizosphere. Critical Reviews in Plant Sciences, 2003, 22(2): 107-149 ( ).
  • DOI: 10.1080/713610853
  • Arkhipova T.N., Prinsen E., Veselov S.U., Martynenko E.V., Melentiev A.I., Kudoyarova G.R. Cytokinin producing bacteria enhance plant growth in drying soil. Plant and Soil, 2007, 292(1): 305-315 ( ).
  • DOI: 10.1007/s11104-007-9233-5
  • Belimov A.A., Dodd I.C., Safronova V.I., Dumova V.A., Shaposhnikov A.I., Ladatko A.G., Davies W.J. Abscisic acid metabolizing rhizobacteria decrease ABA concentrations in planta and alter plant growth. Plant Physiology and Biochemistry, 2014, 74: 84-91 ( ).
  • DOI: 10.1016/j.plaphy.2013.10.032
  • Cohen A.C., Travaglia C.N., Bottini R., Piccoli P.N. Paticipation of abscisic acid and gibberellins produced by endophytic Azospirillum in the alleviation of drought effects in maize. Botany, 2009, 87(5): 455-462 ( ).
  • DOI: 10.1139/B09-023
  • Kumar P., Dubey R.C., Maheshwari D.K. Bacillus strains isolated from rhizosphere showed plant growth promoting and antagonistic activity against phytopathogens. Microbiological Research, 2012, 167(8): 493-499 ( ).
  • DOI: 10.1016/j.micres.2012.05.002
  • de Werra P., Péchy-Tarr M., Keel C., Maurhofer M. Role of gluconic acid production in the regulation of biocontrol traits of Pseudomonas fluorescens CHA0. Applied and Environmental Microbiology, 2009, 75: 4162-4174 ( ).
  • DOI: 10.1128/AEM.00295-09
  • Final Screening Assessment of Bacillus megaterium strain ATCC 14581. Environment and Climate Change Canada. Health Canada, February, 2018.
  • Курдиш И.К., Чуйко Н.В., Бега З.Т. Хемотаксисные и адгезивные свойства Azotobacter vinelandii и Bacillus subtilis. Прикладная биохимия и микробиология, 2010, 4(1): 58-63.
  • Junior I.T., Schafer J.T., Corrêa B.O., Funck G.D., Moura A.B. Expansion of the biocontrol spectrum of foliar diseases in rice with combinations of rhizobacteria. Revista Ciência Agronômica, 2017, 48(3): 513-522 ( ).
  • DOI: 10.5935/1806-6690.20170060
  • Ohkama-Ohtsu N., Wasaki J. Recent progress in plant nutrition research: cross-talk between nutrients, plant physiology and soil microorganisms. Plant and Cell Physiology, 2010, 51(8): 1255-1264 ( ).
  • DOI: 10.1093/pcp/pcq095
  • Kloepper J.W., Gutierrez-Estrada A., McInroy J.A. Photoperiod regulates elicitation of growth promotion but not induced resistance by plant growth-promoting rhizobacteria. Canadian Journal of Microbiology, 2009, 53(2): 159-167 ( ).
  • DOI: 10.1139/w06-114
  • Verhagen B.W.M., Trotel-Aziz P., Couderchet M., Höfte M., Aziz A. Pseudomonas spp.-induced systemic resistance to Botrytis cinerea is associated with induction and priming of defense responses in grapevine. Journal of Experimental Botany, 2010, 61(1): 249-260 ( ).
  • DOI: 10.1093/jxb/erp295
  • Ongena M., Henry G., Thonart P. The role of cyclic lipopeptides in the biocontrol activity of Bacillus subtilis. In: Recent developments in management of plant diseases (Plant pathology in the 21st century), vol. 1 /U. Gisi, I. Chet, M.L. Guillino (eds.). Springer, Dordrecht, 2010: 59-69 ( ).
  • DOI: 10.1007/978-1-4020-8804-9_5
  • Meena K.R., Kanwar S.S. Lipopeptides as the antifungal and antibacterial agents: applications in food safety and therapeutics. BioMed Research International, 2015, 2015: Article ID 473050 ( ).
  • DOI: 10.1155/2015/473050
  • Falardeau J., Wise C., Novitsky L., Avis T.J. Ecological and mechanistic insights into the direct and indirect antimicrobial properties of Bacillus subtilis lipopeptides on plant pathogens. Journal of Chemical Ecology, 2013, 39: 869-878 ( ).
  • DOI: 10.1007/s10886-013-0319-7
  • Cawoy H., Mariutto M., Henry G., Fisher C., Vasilyeva N., Thonart P., Dommes J., Ongena M. Plant defense stimulation by natural isolates of Bacillus depends on efficient surfactin production. Molecular Plant-Microbe Interactions, 2014, 27(2): 87-100 ( ).
  • DOI: 10.1094/MPMI-09-13-0262-R
  • Henry G., Deleu M., Jourdan E., Thonart P., Ongena M. The bacterial lipopeptide surfactin targets the lipid fraction of the plant plasma membrane to trigger immune-related responses. Cellular Microbiology, 2011, 13(11): 1824-1837 ( ).
  • DOI: 10.1111/j.1462-5822.2011.01664.x
  • Patel H., Tscheka C., Edwards K., Karlsson G., Heerkotz H. All-or-none membrane permeabilization by fengycin-type lipopeptides from Bacillus subtilis QST713. Biochimica et Biophysica Acta (BBA) - Biomembranes, 2011, 1808(8): 2000-2008 ( ).
  • DOI: 10.1016/j.bbamem.2011.04.008
  • Ongena M., Jourdan E., Adam A., Paquot M., Brans A., Joris B., Arpigny J.-L., Thonart P. Surfactin and fengycin lipopeptides of Bacillus subtilis as elicitors of induced systemic resistance in plants. Environmental Microbiology, 2007, 9(4): 1084-1090 ( ).
  • DOI: 10.3389/fmicb.2019.02327
  • De Vleesschauwer D., Höfte M. Rhizobacteria-induced systemic resistance. Advances in Botanical Research, 2009, 51: 223-281 (
  • DOI: 10.1016/S0065-2296(09)51006-3)
  • Четвериков С.П., Сулейманова Л.Р., Логинов О.Н. Комплексообразование триглицеридпептидов псевдомонад с корневыми экссудатами растений как механизм воздействия на фитопатогены. Прикладная биохимия и микробиология, 2009, 45(5): 565-570.
  • Luo S., Xu T., Chen L., Chen J., Rao C., Xiao X., Wan Y., Zeng G., Long F., Liu C., Liu Y. Endophyte-assisted promotion of biomass production and metal-uptake of еnergy crop sweet sorghum by plant-growth-promoting endophyte Bacillus sp. SLS18. Applied Microbiology and Biotechnology, 2012, 93(4):1745-1753 ( ).
  • DOI: 10.1007/s00253-011-3483-0
  • Bakker P.A.H.M., Pieterse C.M.J., van Loon L.C. Induced systemic resistance by fluorescent Pseudomonas spp. Phytopathology, 2007, 97(2): 239-243 ( )
  • DOI: 10.1094/PHYTO-97-2-0239
  • De Vleesschauwer D., Djavaheri M., Bakker P.A.H.M., Höfte M. Pseudomonas fluorescens WCS374r-induced systemic resistance in rice against Magnaporthe oryzae is based on pseudobactin-mediated priming for a salicylic acid-repressible multifaceted defense response. Plant Physiology, 2008, 148(4): 1996-2012 ( ).
  • DOI: 10.1104/pp.108.127878
  • Nikoo F.S., Sahebani N, Aminian H. Induction of systemic resistance and defense-related enzymes in tomato plants using Pseudomonas fluorescens CHAO and salicylic acid against root-knot nematode Meloidogyne javanica. Journal of Plant Protection Research, 2014, 54(4): 383-398 ( ).
  • DOI: 10.2478/jppr-2014-0057
  • Lachin Mokhtarnejad, Reza Ghaderi, De Vleesschauwer D., Djavaheri M., Bakker P.A.H.M., Höfte M. Pseudomonas fluorescens WCS374r-induced systemic resistance in rice against Magnaporthe oryzae is based on pseudobactin-mediated priming for a salicylic acid-repressible multifaceted defense response. Plant Physiology, 2008, 148(4): 1996-2012 ( ).
  • DOI: 10.1104/pp.108.127878
  • Павлюшин В.А., Вилкова Н.А., Сухорученко Г.И., Нефедова Л.И. Новая парадигма развития защиты растений. Программы управления фитосанитарным состоянием агроэкосистем. Мат. 9-й Международной научно-практической конференции "Биологическая защита растений - основа стабилизации агроэкосистем". Краснодар, 2016: 504-508.
  • Новикова И.И. Биоценотическое значение микробов-антагонистов в фитосанитарной оптимизации агроэкосистем. В сб.: Биологические средства защиты растений, технологии их изготовления и применения. СПб-Пушкин, 2005: 303-332.
  • Головлев Е.Л. Экологическая стратегия бактерий: специфика проблемы. Микробиология, 2001, 70(4): 437-443.
  • Головлев Е.Л. Метастабильность фенотипа у бактерий. Микробиология, 1998, 67(2): 149-155.
  • Биология отдельных групп актиномицетов /Под ред. Н.А. Красильникова. М., 1965.
  • Зенова Г.М., Звягинцев Д.Г., Манучарова Н.А., Степанова О.А., Чернов И.Ю. Актиномицетный комплекс светлого серозема предгорной равнины Копетдага. Почвоведение, 2016, 10: 1214-1217 ( ).
  • DOI: 10.7868/S0032180X16100166
  • Зенова Г.М., Дуброва Н.С., Грачева Т.А., Кузнецова А.И., Степанова О.А., Чернов И.Ю., Манучарова А.С. Актиномицетные комплексы почв Приэльтонья. Вестник Московского университета, 2016, 17(4): 43-46.
  • Шенин Ю.Д., Новикова И.И., Кругликова Л.Ф., Калько Г.В. Характеристика алирина В[1] - основного компонента фунгицидного препарата, продуцируемого штаммом Bacillus subtilis 10-ВИЗР. Антибиотики и химиотерапия, 1995, 40(5): 3-7.
  • Novikova I.I., Shenin Y.D. Isolation, identification, and antifungal activity of a Gamair complex formed by Bacillus subtilis M-22, a producer of a biopreparation for plant protection from mycoses and bacterioses. Applied Biochemistry and Microbiology, 2011, 47(9): 817-826 ( ).
  • DOI: 10.1134/S0003683811090031
  • Шенин Ю.Д., Новикова И.И., Каминский Г.В., Иванова И.А. Алириномицин С - новый макролидный антибиотик из Streptomyces felleus S-8 ВИЗР. Антибиотики и химиотерапия, 2001, 46(2): 10-16.
  • Новикова И.И., Шенин Ю.Д., Цыпленков А.Е., Фоминых Т.С., Суика П.В., Бойкова И.В. Биологические особенности пептидов и гептаеновых ароматических макролидов, выделенных из Streptomyces chrysomallus Р-21 и S. globisporus Л-242 - штаммов-про-дуцентов полифункциональных биопрепаратов Хризомал и Глоберин для защиты растений от болезней разной этиологии. Вестник защиты растений, 2009, 2: 3-19.
  • Шенин Ю.Д., Новикова И.И., Суика П.В. Выделение и характеристика антибиотиков, продуцируемых Streptomyces chrysomallus P-21 и S. globisporus Л-242. Биотехнология, 2010, 2: 41-53.
  • Новикова И.И. Микробиологическая защита растений - основа фитосанитарной оптимизации агроэкосистем. Защита и карантин растений, 2017, 4: 3-6.
  • Основные итоги работы Российской академии сельскохозяйственных наук за 2013 год. М., 2014.
  • Отчет отделения сельскохозяйственных наук РАН о выполнении фундаментальных и поисковых научных исследований в 2014 году. М., 2015.
  • Отчет отделения сельскохозяйственных наук РАН о выполнении фундаментальных и поисковых научных исследований в 2014-2016 гг. М., 2017.
  • Штерншис М.В. Тенденции развития биотехнологии микробных средств защиты растений в России. Вестник Томского государственного университета. Биология, 2012, 2(18): 92-100.
  • Белякова Н.А., Павлюшин В.А. Концепция развития биологической защиты растений. Мат. 3-го Всероссийского съезда по защите растений. СПб, 2013, т. 2: 7-10.
Еще
Статья обзорная
QR-код для установки приложения SciUp Наведите камеру и скачайте бесплатное приложение SciUp