Микробиом почв различных ампелоценозов

119017, Москва, Пыжевский пер, 7, стр. 2, *, e-mail:

7 Bld. 2 Pyzhevskiy per., Moscow 119017, Russian Federation, *, e-mail:

Среди плодовых и ягодных культур виноград занимает лидирующую позицию по объему производства (Hajji-Hedfi et al., 2025). Выращиванием винограда занимаются 75 стран мира. На долю винограда приходится около 32.5% от общего объема мировой продукции садоводства. При этом свыше 80% урожая используется для производства вина, около 10–12 % потребляется в свежем виде, а 5% перерабатывается в сушеную продукцию – изюм и кишмиш (Зармаев, 2020).

Значение выращивания винограда важно для экономики, которое заключается в том, что культура винограда возможна на та- ких землях, которые малопригодны для возделывания других растений, например, на каменистых почвах, крутых склонах, песчаных землях. Благодаря относительной засухоустойчивости виноградная лоза может произрастать в пустынных и полупустынных местностях. Помимо данных почв, виноград выращивают на легких по гранулометрическому составу почвах: суглинистые, песчаные, которые содержат большое количество щебня, хряща, камней. Виноград хорошо растет в широких пределах рН почвенной среды от 5.0 до 8.8, но экологический оптимум составляет 6.5–8.5 (Шеуджен и др., 2013).

Для успешного выращивания винограда на почвах по различному гранулометрическому составу, агрохимическим и агрофизическим параметрам, необходимо обращать внимание также и на состав почв по присутствию в них микроорганизмов различного происхождения, включая бактерии и патогенные микромицеты, так как их концентрация и видовой состав могут оказывать существенное влияние на плодородие почв (Коба и др., 2025; Ould Amer et al., 2023).

По мере того, как виноградарство все больше основывается на понимании микробных сообществ в почве, исследования все чаще сосредотачиваются на том, какие факторы, включая методы ведения виноградников и географическое расположение, формируют состав этих сообществ, особенно в отношении патогенных микромицетов и бактерий. Микробиом почв виноградников включает разнообразные виды микроорганизмов, среди которых присутствуют как патогенные, так и супрессивные грибы и бактерии. Микрофлора почв может включать в себя патогенные грибы, такие как Fusarium spp. (Link.), Cephalosporium sp., и Rhizopus sp. Ehrenb (Rebouh et al., 2020). Данные микромицеты могут наносить вред виноградной лозе, вызывая заболевания корневой системы, листьев и стеблей. Fusarium spp. активно развивается на почвах, где ранее росли такие культуры, как кукуруза и сахарная свекла, а также на полях севооборота, свободных от возделывания культур (Morales-Castilla et al., 2023). Постоянное присутствие этих грибов приводит к накоплению инфекций, что создает риск для фитоса-нитарного состояния виноградников (Россельхозцентр, 2024). Кроме патогенных, в почве обнаруживаются сапротрофные грибы, такие как Aspergillus sp. (Micheli ex Haller) и Penicillium sp. (Link), которые при значительном накоплении вызывают “утомление почвы” и снижают ее качество. Грибы рода Trichoderma Pers. способствуют оздоровлению почвы, улучшают разложение растительных остатков и снижают патогенную нагрузку, особенно если применяются препараты-деструкторы. Также основными и преобладающими родами, обитающими в почвах винограда, являются микромицеты родов Alternaria Nees, Verticillium Kleb., Mucor Fresen., которые также могут играть значительную роль, участвуя в разложении органических веществ, но при этом могут представлять угрозу, вызывая различные заболевания виноградной лозы (Лукьянов, 2020).

В дополнение к грибам микробное сообщество обогащено бактериями рода Pseudomonas Migula, которые, как и другие микроорганизмы, играют важную роль в азотном обмене и фитостимуляции растений (Семенов, 2025). Также отмечается разнообразие бактерий, включая азотфиксирующие, аммонификаторы и целлюлозоразрушающие микроорганизмы, которые играют важную роль в поддержании плодородия почвы. Например, актино-мицеты, такие как Streptomyces Waksman and Henrici и Nocardia Trevisan, участвуют в минерализации органического вещества и структурировании почвы, особенно в местах, где предшественниками были бобовые культуры (Россельхозцентр, 2024; Завьялова и др., 2022). Благодаря способности метаболизировать сложные органические соединения микроорганизмы Arthrobacter sp. играют важную роль в разложении органического вещества, поддерживая устойчивое агроэкологическое состояние почвы (Волынчук и др., 2022).

Исследования показывают, что патогенные микромицеты широко распространены в почвах виноградников и могут сохраняться там длительное время, представляя постоянную угрозу здоровью растений. В своей работе Brilhante et al. (Brilhante et al., 2017) описали устойчивость Fusarium и Phytophthora de Bary в почвах виноградников, подчеркивая их способность выживать в различных условиях. Дальнейшие исследования Makádi et al. (Makádi et al., 2022) показали, что методы ведения сельского хозяйства, такие как внесение органических удобрений и сокраще- ние механической обработки почвы, могут влиять на распространенность этих грибов. Их исследования показали, что определенные агротехнические подходы, включая добавление органического вещества и снижение использования химических средств, способствуют формированию более разнообразного микробного сообщества, которое способно подавлять рост патогенных микроорганизмов.

Географическое положение также играет важную роль в составе почвенных микробных сообществ. Lundberg и др. (Lundberg et al., 2015) продемонстрировали, что разнообразие микроорганизмов в почвах виноградников определяется не только физикохимическими характеристиками почвы, но и климатическими условиями окружающей среды. Это исследование показало, что в регионах с высокой влажностью и частыми осадками преобладают патогены, такие как Phytophthora и Pythium Pringsheim, в то время как в засушливых районах чаще встречаются грибы рода Fusarium . Таким образом, климатические условия региона оказывают решающее влияние на состав патогенных микромицетов.

Баланс между полезными и патогенными микроорганизмами в почве виноградников является сложным взаимодействием. Некоторые микробные таксоны обладают способностью естественным образом подавлять развитие патогенов. Hill и др. (Hill et al., 2021) ввели концепцию “микробного терруара”, согласно которой микробиом почвы не только оказывает прямое влияние на здоровье лозы, но и может выступать в качестве естественного барьера против почвенных патогенов. Это подтверждается исследованиями Ruiz и Portillo (Ruiz, Portillo, 2022), которые изучали взаимодействие между подвоями виноградной лозы и микробиомом почвы. Они установили, что некоторые подвои способствуют развитию полезных микробных сообществ, способных ингибировать рост патогенных грибов, предлагая тем самым экологически безопасный метод борьбы с почвенными заболеваниями без использования химикатов.

Методы ведения виноградников, особенно выбор между органическим и традиционным виноградарством, также оказывают значительное влияние на микробиом почвы. Perazzolli et al. (Perazzolli et al., 2023) сравнили микробиомы органических и тра- диционных виноградников и обнаружили, что органическое земледелие способствует большему разнообразию почвенных микроорганизмов, что, в свою очередь, снижает распространенность патогенных грибов. Органические методы, такие как использование зеленого удобрения и севооборот, способствуют развитию полезных бактерий и грибов, которые конкурируют с патогенами и подавляют их рост. В то же время традиционные методы часто приводят к сокращению биоразнообразия почвы, что способствует доминированию патогенов, таких как Fusarium и Rhizoctonia.

В связи с выше сказанным, изучение микробиома почв винограда является актуальным. Целью исследований было изучение структурной организации микробиома различных типов почв винограда и их агрохимических показателей .

ОБЪЕКТЫ И МЕТОДЫ

Отбор почвенных образцов проведен в зоне произрастания дикого винограда и ампелографической коллекции в следующих точках (табл. 1) малогабаритным буром конструкции С.Ф. Негове-лова по профилю до глубины 0–20 см методом конверта с формированием объединенной пробы.

Анализ микробиома почвы винограда проводился методом последовательных разведений до –6-й степени. С предельной степени разведения производим газонный посев почвенной суспензии в объеме 250 мкл на плотные питательные среды (Эшби; Гетчинсона и Клейтона; ГРМ) при помощи шпателя Дригальского. Для идентификации микромицетов в почвенной суспензии посев производился с –3-й степени на картофельно-глюкозный агар с добавлением 10%-ной лимонной кислоты (табл. 1). Посев каждого разведения проводился в трех повторностях (3 чашки Петри для твердых питательных сред и 3 пробирки для жидких сред) для каждого смешанного образца. Инкубация 3–7 дней при t = 25 °С. Число колониеобразующих единиц на грамм сухой почвы (КОЕ/г) определено методом последовательных разведений. Подсчет количества пропагул или КОЕ бактерий и грибов на 1 г воздушносухой почвы рассчитывали по формуле 1:

X = (a × c) : (v × m), (1)

где a – среднее количество колоний на чашке Петри;

v – объем наносимой суспензии;

c – разведение почвенной суспензии;

m – вес почвы, взятой для анализа.

Посев на жидкие питательные среды проводился методом внесения почвенной суспензии объемом 555 мкл с –4-й и –5-й степенями разведения в пробирки с целью идентификации бактерий нитрификаторов 1-й и 2-й фазы, целлюлозоразлагающих аэробных и анаэробных бактерий и денитрификаторов.

Таблица 1. Типы почв и места отбора образцов (2024)

Table 1 . Soil types and sampling sites (2024)

Тип почвы	Место отбора проб		Координаты
Бурые лесные насыщенные глинистые на делювиальных глинах (Крымский район, хутор Даманка)	1	Куст 1.1	44°57'53.3"N 37°46'43.2"E
	2	Куст 1.2	44°57'50.8"N 37°46'35.6"E
	3	Куст 1.3	44°57'58.8"N 37°47'54.8"E
	4	Куст 2	44°96'49.22"N 37°77'83.05"E
Аллювиальные луговые пойменные среднесуглинистые на аллювиальных суглинках (Абинский район, хутор Нечаевский)	5	Куст 2.2	45°09'30.2"N 38°17'08.4"E
	6	Куст 2.4	45°09'33.3"N 38°17'06.0"E
	7	Куст 2.5	45°09'34.4"N 38°17'05.8"E
	8	Куст 2.6	45°09'38.1"N 38°17'04.8"E
Чернозем выщелоченный малогумусный сверхмощный на лессовидных суглинках (Учебноопытное хозяйство “Кубань”, Краснодар)	9	Ампелографическая коллекция КубГАУ	45°06'41.02"N 38°86'84.24"E

Посевы инкубировались при t = 25–30 °С 2–3 недели. Через 2 недели после посева возбудителей I фазы нитрификации проведена реакция на аммоний с реактивом Несслера (раствор дигидрата тетраиодомеркурата калия (K 2 [HgI 4 ] × 2H 2 O) в щелочной среде), а на азотистую кислоту – с реактивом Грисса (смесь 1-нафтиламина, сульфаниловой кислоты и винной кислоты). При изучении возбудителей II фазы нитрификации проведена реакция на азотистую кислоту с реактивом Грисса, при ее отсутствии – на азотную кислоту с дифениламином (несколько кристаллов дифениламина помещалось в концентрированную серную кислоту – 2– 3 капли на предметном стекле – и добавляется несколько капель культуральной жидкости). Определение продуктов восстановления нитратов в процессе денитрификации проведено с помощью реактива Грисса.

Первичное определение выделенных штаммов микромице-тов производилось с использованием микроскопов Olympus BX41 AXIO SCOPE. A1, PZO WARSZAWA SK14 06142, а также отечественной и зарубежной определительной литературы (Пидоплич-ко; Саттон).

Идентификацию изолятов проводили методами исследования морфологических и тинкториальных свойств и масс-спектрометрии с использованием масс-спектрометра MALDI-TOF MS (“BactoSCREEN, Литех”, Россия) по белковым профилям (Agustini et al., 2018) на базе центра биотехнологий Кубанского ГАУ.

Агрохимический анализ образцов почв проводился согласно общепринятым ГОСТам: ГОСТ 26423-85; ГОСТ 28268-89; ГОСТ 26213-91; ГОСТ 26951-86; ГОСТ 26295-91. Для проведения анализа были использованы смеси образцов 3 точек отбора почвы:

• 1)    бурые лесные (смесь образцов 1–4);

• 2)    аллювиальные луговые (смесь образцов 5–8);

• 3)    чернозем выщелоченный (образец 9).

РЕЗУЛЬТАТЫ И ОБСУЖДЕНИЕ

В результате исследований микробиоты различных типов почв на питательных средах были выделены колонии микромице-тов (36 штаммов). Патогенные и условно-патогенные грибы были представлены 12 родами, среди которых основу составляли представители Aspergillus sp. P. Micheli ex Haller, (1768), Penicillium sp. Link, (1809) и других (рис. 1).

Образец 6, аллювиальная луговая

Образец 4, бурая лесная

Образец 9, чернозем выщелоченный

Рис. 1. Микромицеты почвенной микробиоты анализируемых участков (КГА).

Fig. 1. Micromycetes of the soil microbiota according to the analyzed sites (PGA).

Общая численность микромицетов варьировала от 2 млн КОЕ/г в черноземе выщелоченном до 4.9 млн КОЕ/г в бурых лесных почвах (табл. 2). Видовое разнообразие, напротив, было максимальным в черноземе (12 видов) и минимальным в бурых лесных (7 видов).

Численность аммонификаторов (рис. 2, табл. 3) была максимальной в бурых лесных почвах (до 3.8 × 109 КОЕ/г), что свидетельствует о наиболее активных процессах минерализации органического вещества в данном типе почв.

Численность азотфиксаторов и целлюлозолитиков (табл. 3) была максимальной в аллювиально-луговых почвах (6.4 × 107 и 9.2 × 107 КОЕ/г соответственно), что коррелирует с высоким содержанием органического вещества в данном типе почвы.

Таблица 2. Количество микромицетов различных типов почв

Table 2. The number of micromycetes according to soil types

Образцы		КОЕ
Бурые лесные насыщенные глинистые на делювиальных глинах (Крымский район, хутор Даманка)	1	4 × 105
	2	1.2 × 105
	3	1.6 × 105
	4	1.2 × 105
Аллювиальные луговые пойменные среднесуглинистые на аллювиальных суглинках (Абинский район, хутор Нечаевский)	5	1.2 × 105
	6	2.2 × 105
	7	1.7 × 106
	8	4 × 104
Чернозем выщелоченный малогумусный сверхмощный на лессовидных суглинках (Учебно-опытное хозяйство “Кубань”, Краснодар)	9	2 × 105

Образец 5, аллювиальная луговая

Образец 4, бурая лесная

Образец 9, чернозем выщелоченный

Рис. 2. Аммонификаторы почвенной микробиоты анализируемых участков (ГРМ).

Fig. 2. Ammonifiers of the soil microbiota according to the analyzed sites.

Таблица 3. Численность и групповой состав микрофлоры различных типов почв, 2024 г., тыс/г сухой почвы Table 3. Abundance and group composition of microflora according to the various soil types, 2024, thousand/g of dry soil

Образец		Аммонификаторы	Азотфикса-торы	Целлюло-литики	Нитрификаторы		Денитрифи-каторы
					Фаза 1	Фаза 2
Бурая лесная	1	3.8 × 109	4 × 106	5.2 × 107	6.8 × 107	< 1 × 104	1 × 104
	2	7.2 × 107	4 × 106	2 × 107	4 × 106	< 1 × 104	< 1 × 104
	3	4 × 106	1.2 × 107	4 × 106	2 × 107	< 1 × 104	< 1 × 104
	4	7.6 × 107	1.2 × 107	3.6 × 107	1.2 × 107	< 1 × 104	1 × 104
Аллювиальная луговая	5	1.2 × 108	1.2 × 107	4 × 106	1.2 × 107	< 1 × 104	1 × 104
	6	1.2 × 107	2.4 × 107	2.8 × 107	1.2 × 107	< 1 × 104	< 1 × 104
	7	3.2 × 109	1.7 × 108	9.2 × 107	4 × 108	< 1 × 104	1 × 105
	8	5.6 × 107	5.2 × 107	5.2 × 107	4 × 106	< 1 × 104	< 1 × 104
Чернозем выщелоченный		3.6 × 107	3.6 × 107	8 × 106	1 × 107	< 104	1 × 104

Численность нитрификаторов 1-й фазы достигала 6.8 × 107 в бурых лесных почвах. Тогда как нитрификации 2-ой фазы, так же как и денитрификаторы в подавляющем большинстве образцов, находились на уровне предела обнаружения метода (< 1 × 104). Лишь в одном образце аллювиально-луговой почвы (образец 8) численность денитрификаторов составила 1 × 105. Полученные данные свидетельствуют о низкой активности на завершающих этапах нитрификации и процесса денитрификации в исследованных почвах, что может быть связано с недостатком кислорода субстрата или иными лимитирующими факторами.

Значения < 1 × 104 КОЕ/г соответствуют пределу обнаружения культурального метода и отражают лишь культивируемую долю микробного сообщества, что не позволяет напрямую интерпретировать их как низкую общую микробную активность.

Максимальное видовое разнообразие бактерий выявлено в бурых лесных почвах (13 видов, 28 штаммов), минимальное – в аллювиально-луговых (5 видов, 14 штаммов) (табл. 4). Во всех типах почв доминировали спорообразующие бактерии родов Bacillus и Priestia . Видовая структура различалась: в бурых лесных преобладали Bacillus cereus и Peribacillus simplex , в черноземе и аллювиальных почвах – Priestia megaterium . Среди доминантов присутствуют виды, значимые для биоконтроля и биотехнологии.

По общей численности и видовому составу бактерий в целом нативные ценозы отличались незначительно. Данные по численности микромицетов изученных участков имели тенденцию снижения количества и разнообразия микроорганизмов в ампело-ценозе по сравнению с нативными ценозами винограда.

Также в ходе исследования был проведен агрохимический анализ почв (табл. 5), включающий определение удельной электропроводности, гумуса, содержание нитратного азота (N-NO 3 ), фосфора (P 2 O 5 ) и калия (K 2 O) по Мачигину.

Агрохимический анализ (табл. 5) выявил следующие межвидовые различия:

• -    аллювиально-луговые почвы: максимум гумуса (6.87%) и подвижного фосфора (69.7 мг/кг);

• -    бурые лесные почвы: максимум калия (546.8 мг/кг) и электропроводности (0.153 мСм/см);

Таблица 4. Видовой состав бактерий почвенных образцов, 2024

Table 4. Bacterial species composition of soil samples, 2024

Вид	Бурые лесные насыщенные глинистые на делювиальных глинах (Крымский район, хутор Даманка)	Аллювиальные луговые пойменные среднесуглинистые на аллювиальных суглинках (Абинский район, хутор Нечаевский)	Чернозем выщелоченный малогумусный сверхмощный на лессовидных суглинках (Учебноопытное хозяйство “Кубань”, Краснодар)
Bacillus cereus	++++++	++++	-
Peribacillus simplex	++++++	++	++
Priestia megaterium	+++	+++++	+++++
Bacillus pumilus	+++	-	++
Bacillus thuringiensis	++	+	-
Bacillus mycoides	+	-	-
Tsukamurella paurometabola	+	-	-
Acinetobacter lwoffii	+	-	-
Bacillus subtilis	+	-	-
Bacillus mojavensis	+	-	-

Продолжение таблицы 4

Table 4 continued

Вид	Бурые лесные насыщенные глинистые на делювиальных глинах (Крымский район, хутор Даманка)	Аллювиальные луговые пойменные среднесуглинистые на аллювиальных суглинках (Абинский район, хутор Нечаевский)	Чернозем выщелоченный малогумусный сверхмощный на лессовидных суглинках (Учебноопытное хозяйство “Кубань”, Краснодар)
Alishewanella fetalis	+	-	-
Alishewanella fetalis	+	-	-
Solibacillus silvestris	+	-	-
Exiguobacterium aurantiacum	+	-	-
Metabacillus idriensis	-	+	-
Lysinibacillus sp	-	+	-
Pseudarthrobacter oxydans	-	++	-
Bacillus muralis	-	+	-

Продолжение таблицы 4

Table 4 continued

Вид	Бурые лесные насыщенные глинистые на делювиальных глинах (Крымский район, хутор Даманка)	Аллювиальные луговые пойменные среднесуглинистые на аллювиальных суглинках (Абинский район, хутор Нечаевский)	Чернозем выщелоченный малогумусный сверхмощный на лессовидных суглинках (Учебноопытное хозяйство “Кубань”, Краснодар)
Arthrobacter globiformis	-	+	-
Peribacillus simplex	-	+	-
Priestia megaterium	-	+	-

Примечание. * – организм не обнаружен.

Note. * – organism was not detected.

Таблица 5. Агрохимические показатели почвенных образцов анализируемых участков, 2024 г.

Table 5. Agrochemical parameters of soil samples according to the analyzed sites, 2024

Образец	Удельная электропроводность, мСм/см	N-NO 3, мг/кг	Гумус, %	P 2 O 5 , мг/кг	K 2 O, мг/кг
				По Мачигину
Аллювиальная луговая	0.152 ± 0.008	10.90 ± 4.989	6.87 ± 1.124	69.7 ± 2.643	484.4 ± 12.774
Бурая лесная	0.153 ± 0.010	11.47 ± 3.205	5.27 ± 0.83	43.8 ± 9.54	546.8 ± 25.2
Чернозем выщелоченный	0.080 ± 0.015	16.40 ± 1.352	2.65 ± 0.012	54.3 ± 0.451	357.0 ± 5.886

• -    чернозем выщелоченный: максимум нитратного азота (16.40 мг/кг) при минимуме гумуса (2.65%).

Наибольшая изменчивость (по стандартному отклонению) наблюдается по гумусу и калию в аллювиальной луговой и бурой лесной почвах, что указывает на их высокую пространственную гетерогенность. В черноземе выщелоченном показатели более стабильны. Агрохимические показатели представлены по объединенным пробам и отражают фоновые характеристики участков.

Линейный коэффициент корреляции между КОЕ грибов и КОЕ бактерий (аммонификаторы) (рис. 3) равен R = –0.056, что указывает на очень слабую отрицательную связь.

Рис. 3. Коэффициент корреляции между КОЕ грибов и КОЕ бактерий (аммонификаторы).

Fig. 3. Correlation coefficient between CFU of fungi and CFU of bacteria (ammonifiers).

Это означает, что статистически значимой зависимости между количеством грибов и бактерий в исследуемых образцах не наблюдается. Аллювиальная луговая почва демонстрирует наиболее благоприятные условия для развития как грибов, так и бакте- рий (аммонификаторов), что подтверждается высокими значениями КОЕ для обоих показателей. Бурая лесная почва имеет благоприятные условия для развития бактерий (аммонификаторов), но менее благоприятные для развития грибов, что видно по низкому значению КОЕ грибов. Чернозем выщелоченный показывает оптимальные условия для развития грибов, но наименее благоприятные для бактерий (аммонификаторов) по сравнению с другими районами.

Линейный коэффициент корреляции между каноническими переменными КОЕ бактерий и агрохимическими показателями (рис. 4) составляет R = 0.92 и отражает зависимость между показателями в пределах имеющейся выборки (n = 3), что может свидетельствовать о наличии выраженной тенденции к прямой связи между этими параметрами в исследованных образцах. Учитывая ограниченное число независимых точек, данный результат следует рассматривать как предварительное наблюдение, требующее подтверждения на расширенной выборке.

Бурые лесные и аллювиальные луговые почвы демонстрируют наиболее благоприятные условия для развития микроорганизмов, что подтверждается высокими значениями КОЕ бактерий и агрохимических показателей. Чернозем выщелоченный показывает наименьшие значения как для КОЕ бактерий, так и для агрохимических показателей, что может указывать на менее благоприятные условия для развития микроорганизмов.

В данном исследовании был проведен анализ микробиома почв нативного ценоза винограда бурых лесных насыщенных глинистых на делювиальных глинах (Крымский район, хутор Даманка) и аллювиальных луговых пойменных среднесуглинистых на аллювиальных суглинках (Абинский район, хутор Нечаевский), также почв ампелографической коллекции – чернозема выщелоченного малогумусного сверхмощного на лессовидных суглинках. Основные результаты показали, что в аллювиальных луговых почвах нативного ценоза было выделено наибольшее количество микромицетов и аммонификаторов, тогда как в бурых лесных почвах наблюдалась высокая численность азотфиксаторов, целлюлозоразрушающих бактерий, нитрификаторов и денитрифика-торов.

Рис. 4. Коэффициент канонической корреляции между КОЕ бактерий и агрохимическими показателями.

Fig. 4. Coefficient of canonical correlation between CFU of bacteria and agrochemical indicators.

Следует учитывать, что культуральный метод позволяет оценить лишь культивируемую часть микробного сообщества. Значительная доля микроорганизмов остается некультивируемой и не отражается в показателях КОЕ, что ограничивает интерпретацию полученных результатов.

Результаты данного исследования согласуются с предыдущими работами, которые также подчеркивают важность микробиома почвы для плодородия и здоровья растений. Например, исследования Lundberg et al. (2015) и Yeoh et al. (2020) показали, что состав почвенных микроорганизмов сильно зависит от географического положения и климатических условий, что подтверждается нашими данными о различиях в микробиоме между бурыми лес- ными и аллювиальными луговыми почвами. Кроме того, наши результаты о высокой численности азотфиксаторов и целлюлозоразрушающих бактерий в образцах бурых лесных почвах согласуются с исследованиями Brilhante et al. (2017), которые также отмечали важность этих микроорганизмов для поддержания плодородия почвы.

Однако наши данные о снижении разнообразия микроорганизмов в ампелоценозе, по сравнению с нативными ценозами, несколько расходятся с результатами Perazzolli et al. (2023), которые обнаружили, что органическое земледелие способствует большему разнообразию почвенных микроорганизмов. Это может быть связано с различиями в методах ведения виноградников или с особенностями исследуемых зон.

Полученные результаты могут быть объяснены различиями в агрохимических и климатических условиях между исследуемыми районами. Например, более высокая численность азотфиксато-ров в образцах бурых лесных почв может быть связана с более благоприятными условиями для азотфиксации, такими как оптимальный уровень влажности и температуры. Высокое содержание гумуса в образцах аллювиальных луговых почв может способствовать активному разложению органических веществ, что объясняет большое количество аммонификаторов.

Полученные результаты могут служить основой для дальнейших исследований виноградарства, так как они подчеркивают необходимость учета микробиологического состава почвы при выборе методов ведения виноградников. Понимание взаимосвязей между микробиомом почвы и агрохимическими параметрами может помочь в разработке более эффективных стратегий управления почвенным здоровьем и повышения урожайности винограда.

Данное исследование предоставляет важные данные о структурной организации микробиома почв нативного ценоза винограда и его взаимосвязи с агрохимическими параметрами. Результаты подчеркивают значимость микробиологического состава почвы для успешного выращивания винограда и указывают на необходимость дальнейших исследований в этой области. Наши данные могут быть использованы для разработки более эффективных стратегий управления фитосанитарным состоянием почвы, что в конечном итоге будет способствовать повышению урожайности и устойчивости виноградников.

ВЫВОДЫ

В результате проведенной работы были достигнуты следующие ключевые результаты: в аллювиальных луговых почвах зафиксирована максимальная численность микромицетов (3.2 млн КОЕ/г) и аммонификаторов (3.2 х 10⁹ КОЕ/г), что коррелирует с высоким содержанием гумуса (6.87%). Для бурых лесных почв характерна повышенная активность азотфиксирующих (1.2 х 10⁷ КОЕ/г), целлюлозолитических (5.2 х 107 КОЕ/г) и нитрифицирующих (6.8 х 107 КОЕ/г) микроорганизмов. Чернозем выщелоченный ампелографической коллекции отличается сниженным микробным разнообразием (2 млн КОЕ/г) и доминированием ограниченного числа видов ( Priestia megaterium ).

Выявлены различия агрохимических показателей: аллювиальные почвы характеризуются максимальным содержанием гумуса (6.87%) и подвижного фосфора (69.7 мг/кг). Бурые лесные почвы демонстрируют наивысшие значения калия (546.8 мг/кг) и электропроводности (0.153 мСм/см). Чернозем выщелоченный выделяется повышенным содержанием нитратного азота (16.4 мг/кг) при минимальных показателях гумуса (2.65%).

Корреляционный анализ выявил слабую отрицательную связь между численностью грибов и бактерий (R = –0.056). При анализе трех интегральных проб почвы наблюдалась тенденция к прямой зависимости (R = 0.92) между количеством бактерий и агрохимическими параметрами, что требует дополнительной проверки.

В исследованных условиях наблюдается тенденция к более высоким значениям показателей нативных ценозах (в 1 .5–2 раза). Однако различия могут быть обусловлены комплексом факторов (тип почвы, география, особенности землепользования) и требуют проверки на сопоставимых парах “ампелоценоз – нативный участок” в пределах одного района.

Разработка стратегий управления почвенным здоровьем на основе данных о микробиологическом составе почвы, позволит повысить урожайность и устойчивость виноградников. Получен- ные результаты могут служить основой для дальнейших исследований научного сообщества и практики в виноградарстве, предлагая новые подходы к управлению почвенным здоровьем и повышению урожайности. Дальнейшие исследования в этой области могут способствовать развитию более устойчивых и экологически безопасных методов ведения сельского хозяйства.