Микрофлора свиноматок при послеродовых эндометритах в условиях промышленного свиноводческого комплекса

Рост свинопоголовья, разведение и повышение его продуктивности позволяют в короткий срок значительно увеличить производство свинины. Вместе с тем равномерные на протяжении всего года опоросы с ритмичным выходом готовой продукции – важное условие в развитии свиноводства, позволяющее максимально использовать воспроизводи- тельную способность маточного поголовья. Также рост потребления свинины вызывает необходимость интенсификации отрасли [2–4].

При современных способах производства на промышленных свинокомплексах наблюдается значительное ограничение возможности проявления выработанных эволюцией физиологических функций свиноматок, которое приводит к снижению продуктивных и воспроизводительных качеств, нарушению обмена веществ, расстройству деятельности ряда органов и систем из-за изменения традиционных условий кормления и содержания животных, отсутствия активного моциона и инсоляции. Следствием этого является приплод нежизнеспособный или с ослабленным иммунитетом, его низкое качество, отставание в развитии и росте, что сопровождается большими убытками от выбраковки животных и недополучения готовой продукции. Наибольшую опасность в снижении репродуктивного потенциала маточного поголовья свиней представляют биологические факторы, в частности инфекционные болезни, большинство которых могут вызывать нарушения репродуктивной функции, гибель плодов и аборты. К наиболее распространенным из них относятся: вирусные (репродуктивно-респираторный синдром свиней (РРСС), цирковирусная инфекция свиней (ЦВИС), парвовирусная инфекция свиней (ПВИС), болезнь Ауески), а также бактериальные заболева-н и я . Зачастую свиноматки подвержены послеродовым болезням, в развитии которых значительную роль играет микробный фактор [5–7].

Затрудняют диагностику, а также проведение эффективного лечения инфекционные заболевания мочеполовой системы свиноматок, обусловленные различными возбудителями, как бактериальной, так и вирусной этиологии, нередко протекающие ассоциативно [8].

К одной из распространенных причин развития патологии репродуктивной системы свиноматок относятся ассоциации условно-патогенных и патогенных микроорганизмов, которые провоцируют развитие воспалительных процессов в виде послеродовых эндометритов [9–13].

Активное применение антибиотиков в животноводстве, как в качестве стимуляторов роста, так и для лечения, породило проблему распространения резистентности микроорганизмов к антимикробным препаратам, что осложняет лечение больных животных.

Цель исследований . Изучить состав микрофлоры цервикально-маточного содержимого от свиноматок с клиническими признаками послеродового эндометрита.

Задачи : установить распространение эндометритов, определить видовой состав микрофлоры влагалищных смывов и ее биологические свойства.

Материалы и методы. Исследования проводили на базе крупного промышленного свиноводческого комплекса Омской области. При клиническом обследовании свиноматок (n=60) после опороса были выявлены животные с симптомами эндометрита (15 %). Пробы для бактериологического исследования были взяты с использованием общепринятых методов. Влагалищные смывы и пробы экссудата помещали в пробирки с транспортной средой и доставляли в производственную ветеринарную лабораторию.

Первичный посев исследуемого материала из транспортной среды производили на мясопептонный бульон (МПБ), мясо-пептонный агар (МПА) и кровяной агар (КА), который содержал 5 % дефибринированной крови лошади. Посевы инкубировали в аэробных условиях при 37 °C в течение 24 ч в термостате.

В процессе выделения и культивирования микроорганизмов на питательных средах изучали их культуральные свойства. Тинкториальные и морфологические свойства микроорганизмов изучали в мазках-препаратах, окрашенных по Граму. Наличие спор определяли по Шефферу-Фултону, капсул – по Ольту, подвижность изучали в препаратах «висячая капля».

В зависимости от морфологических и культуральных свойств выделенные культуры пересевали на питательные среды: Эндо, желточно-солевой агар (ЖСА), МПБ с содержанием 6,5 % NaCl – для последующей идентификации.

Определение резистентности выделенных микроорганизмов проводили согласно инструкции по применению дисков для определения чувствительности к антибиотикам, утвержденной Управлением по внедрению новых лекарственных средств и медицинской техники МЗ СССР 08.07.1986. С целью выявления резистентности стрептококков применяли МПА с добавлением 5 % дефибринированной крови, для остальных микроорганизмов – среду АГВ (питательная среда для определения чувствительности к антибиотикам).

Результаты полученных данных и их статистическую обработку проводили с использованием M. Excel на кафедре ветеринарной микробиологии, инфекционных и инвазионных болезней ИВМиБ Ом-скогоГАУ.

Результаты исследований и их обсуждение . Клинический осмотр свиноматок осуществляли в первые 2–3 сут после опороса. У свиноматок с клиническими признаками послеродового эндометрита (n=9) отмечали угнетение, снижение материнского инстинкта, плохой аппетит или отказ от корма, нередко вынужденную позу для мочеиспускания. Также фиксировали повышение температуры тела до 39,5–40,2 °C, снижение секреции молока.

У всех животных с характерными признаками эндометрита отмечали выделение экссудата из наружных половых органов слизисто-гнойного характера, количество которого увеличивалось при лежании свиноматок.

В результате бактериологических исследований проб выделены культуры возбудителей, которые были идентифицированы с применением общепринятых микробиологических методов (рис.).

• □    Staphylococcus sp.

• □    Streptococcus sp.

• □    E. coli

i Proteus sp.

• □    Citrobacter sp.

в Klebsiella sp.

s Enterobacter sp.

« Corynebacterium sp.

• □    Neisseria sp.

• □    Micrococcus sp.

E Serratia sp.

Микроорганизмы, выделенные при эндометритах свиноматок

Из полученных данных выяснили, что в послеродовой период у свиноматок выделяются следующие микроорганизмы: Staphylococcus sp. (21,4 %). Следующими по частоте выделения являются Streptococcus sp. (16,7 %); E. coli (12 %); Proteus sp. (9,8 %); из рода энтеробактерий Citrobacter sp. (9,1 %); Klebsiella sp. (7,4 %); Enterobacter sp. (7,1 %) ; Corynebacterium sp. (6,8 %). Другие микроорганизмы ( Neisseria sp., Micrococcus sp., Serratia sp. ) встречались реже и почти всегда в ассоциациях.

Так, среди микроорганизмов регистрировали следующие ассоциации: Streptococcus sp. + Staphylococcus sp. (34,3 %); E. coli + Proteus sp. (21,6 %) ; E. coli + Streptococcus sp. + Staphylococcus sp. + Corynebacterium sp. (16,1 %); Staphylococcus sp. + Klebsiella sp. + Enterobacter sp. (12,3 %). Также выделяли ассоциации E. coli + Proteus sp. + Citrobacter sp. + Neisseria sp. (7,4 %); E. coli + Streptococcus sp. + Micrococcus sp. (4,7 %); Proteus sp. + Serratia sp. (3,2 %).

Анализ результатов бактериологического исследования цервикально-маточного содержимого свиноматок показал, что качественный и количественный состав микроорганизмов представлен Staphylococcus sp. (7*10 6 +0,05 КОЕ/г); культуры Streptococcus sp. выделяли (6*10 5 +0,02 кОе/г); E. coli (5х10 5 ±0,04 КОЕ/г); Proteus sp. (4*10⁴+0,08 КОЕ/г); из рода энтеробактерий Citrobacter sp. (4*10³+0,03 КОЕ/г); Klebsiella sp. (3^10 2 +0,02 КОЕ/г); культуры Enterobacter sp. (3*10²+0,05 КОЕ/г); Corynebacterium sp. (3*10²±0,03 КОЕ/г). Neisseria sp. (1*10 2 +0,07 КОЕ/г) , Micrococcus sp. (1*10 1 +0,02 КОЕ/г) , Serratia sp. (1*10 1 +0,04 КОЕ/г).

Установлено, что все выделенные микроорганизмы чувствительны к неопену и цефоперазону. Культуры Staphylococcus sp. и Streptococcus sp. оказались чувствительны к спектаму, офлоксацину, цефазолину и левомицетину. Выделенные культуры Staphylococcus sp. проявили резистентность к эритромицину, а Streptococcus sp. в 75 % случаев - к доксициклину. Большинство культур Enterobacter sp. чувствительны к спектаму, цефазолину и офлоксацину, но были устойчивы к стрептомицину, доксициклину и эритромицину. Выделенные микроорганизмы Neisseria sp. и Corynebacterium sp. проявили чувствительность ко всем антибактериальным препаратам, кроме стрептомицина и доксициклина.

Выводы. При клиническом осмотре животных в послеродовой период у 15 % опоросившихся свиноматок наблюдали клинические признаки эндометритов, а именно - выделение экссудата слизистогнойного характера, угнетение, снижение материнского инстинкта, плохой аппетит или отказ от корма, повышение температуры тела до 39,5–40,2 °C, снижение секреции молока.

При проведении бактериологических исследований были выделены следующие ассоциации микро- организмов: Staphylococcus sp. (21,4 %); Streptococcus sp. (16,7 %); E. coli (12 %); Proteus sp. (9,8 %); из рода энтеробактерий Citrobacter sp.  (9,1  %);

Klebsiella sp.  (7,4  %); Enterobacter sp.  (7,1  %) ;

Corynebacterium sp. (6,8 %). Такие микроорганизмы, как Neisseria sp., Micrococcus sp., Serratia sp., встречались почти всегда в ассоциациях.

Выделены ассоциации микроорганизмов: Streptococcus sp.+ Staphylococcus sp. (34,3 %); E. coli + Proteus sp. (21,6 %) ; E. coli + Streptococcus sp. + Staphylococcus sp. + Corynebacterium sp. (16,1 %); Staphylococcus sp. + Klebsiella sp. + Enterobacter sp. (12,3 %); E. coli + Proteus sp. + Citrobacter sp. + Neisseria sp. (7,4 %); E. coli + Streptococcus sp. + Micrococcus sp. (4,7 %); Proteus sp.+ Serratia sp. (3,2 %).

Качественный и количественный состав микроорганизмов влагалищных смывов представлен Staphylococcus sp. (7*10⁶±0,05 КОЕ/г); культуры Streptococcus sp. выделяли (6*10 5 +0,02 КОЕ/г); E. coli (5*10⁵±0,04КОЕ/г); Proteus sp. (4*10⁴+0,08 КОЕ/г); из рода энтеробактерий Citrobacter sp.  (4*10³+0,03

кОе/г); Klebsiella sp. (3*10²+0,02 кОе/г); культуры Enterobacter sp. (3*10²+0,05 КОЕ/г); Corynebacterium sp. (3*10²+0,03 КОЕ/г). Neisseria sp. (1*10²+0,07 КОЕ/г) ; Micrococcus sp. (1*10 1 +0,02 КОЕ/г) , Serratia sp. (1*10 1 +0,04 КОЕ/г).

Выделенные микроорганизмы чувствительны к неопену и цефоперазону. Staphylococcus sp. и Streptococcus sp. чувствительны к спектаму, офлоксацину, цефазолину и левомицетину. Культуры Staphylococcus sp. проявили резистентность к эритромицину; Streptococcus sp. в 75 % случаев - к доксициклину. Enterobacter sp. чувствительны к спектаму, цефазо-лину, гентамицину и офлоксацину, но устойчивы к стрептомицину, доксициклину и эритромицину. Neisseria sp. и Corynebacterium sp. чувствительны ко всем химиотерапевтическим препаратам, кроме стрептомицина и доксициклина.