Минеральный обмен и микробное разнообразие слепого отдела кишечника у цыплят-бройлеров (Gallus gallus L.) при включении в полусинтетический рацион пищевых волокон

Автор: Кван О.В., Сизова Е.А., Вершинина И.А., Камирова А.М.

Журнал: Сельскохозяйственная биология @agrobiology

Рубрика: Метаболизм, микробиота, кормление

Статья в выпуске: 4 т.58, 2023 года.

Бесплатный доступ

Кормовые добавки могут изменять минеральный статус сельскохозяйственной птицы. Например, пищевые волокна долгое время относили к антипитательным факторам, так как считалось, что они снижают усвояемость питательных веществ и неблагоприятно сказываются на потреблении корма. Однако позднее было доказано положительное влияние пищевых волокон на переваривание корма, ферментацию и процессы всасывания у домашней птицы. В настоящей работе впервые продемонстрировано снижение накопления токсичных микроэлементов и изменение в микробном сообществе слепого отдела кишечника у цыплят-бройлеров при добавлении в корм микрокристаллической целлюлозы, лактулозы и хитозана. Цель исследования - изучить влияние пищевых волокон на минеральный обмен и микробиоценоз слепого отдела кишечника у цыплят-бройлеров, содержащихся на полусинтетической диете. Эксперименты на цыплятах-бройлерах (Gallus gallus L.) кросса Arbor Acres были проведены в условиях вивария ФНЦ БСТ РАН. Отобрали 150 цыплят-бройлеров в возрасте 1 нед, которых разделили на 5 групп ( n = 30) методом пар-аналогов. Продолжительность эксперимента составила 35 сут, подготовительного и учетного периодов - соответственно 7 и 28 сут. В течение учетного периода первая контрольная группа (К1) находилась на полусинтетическом рационе (ПР), вторая контрольная (К2) - на ПР, дефицитном по микроэлементам (ПДР), I опытная группа получала ПДР c дополнительным введением микрокристаллической целлюлозы (Е460) в дозе 0,25 г/кг корма, II опытная - ПДР с лактулозой в дозе 1 г/кг корма, III опытная - ПДР с пищевым хитозаном в дозе 0,5 г/кг корма. Анализ элементного состава кормов и биосубстратов бройлеров включал определение 25 химических элементов: Ca, Cu, Fe, Li, Mg, Mn, Ni, As, Cr, K, Na, P, Zn, I, V, Co, Se, Ti, Al, Be, Cd, Pb, Hg, Sn, Sr. Исследование элементного состава кормов и биоматериалов проводили атомно-эмиссионным и масс-спектральным методами. Микробное биоразнообразие слепого отдела кишечника птицы оценивали на 42-е сут. NGS-секвенирование выполняли на платформе MiSeq («Illumina, Inc.», США). Включение пищевых волокон в состав полусинтетических рационов привело в I опытной группе к статистически значимому увеличению содержания кальция на 23,4 % (р ≤ 0,05) относительно К2, в III опытной группе - к снижению показателя в 1,50 раза (р ≤ 0,05) в сравнении с К1 и на 26,3 % (р ≤ 0,05) относительно К2. Введение хитозана в полусинтетический рацион, дефицитный по микроэлементам, способствовало увеличению содержания лития в 1,70 раза (р ≤ 0,05) относительно К1. Концентрация марганца и кобальта достоверно (р ≤ 0,05) снижалась во всех опытных группах относительно К1. В I группе наблюдали повышение количества селена в 2,35 раза (р ≤ 0,05) в сравнении с К1, а также его снижение (р ≤ 0,05) в 1,74 раза по сравнению с К2. В этой же группе выявили увеличение количества йода в 1,74 и 1,50 раза (р ≤ 0,05) относительно обеих контрольных групп. Во II и III опытных группах мы отмечали снижение накопления селена в 4,64 и 4,55 раза (р ≤ 0,05) по сравнению с К2. Концентрация мышьяка во II группе превысила К1 в 1,63 раза (р ≤ 0,05), а в III группе его концентрация, напротив, снизилась в 1,58 и 2,00 раза (р ≤ 0,05) по отношению к К1 и К2. Добавление пищевых волокон способствовало активному выведению токсичных элементов. Содержание стронция в I и в III опытных группах снизилось соответственно на 25,7 и 45,9 % (р ≤ 0,05) относительно К1 и на 22,2 и 43,4 % (р ≤ 0,05) по сравнению с К2. Выполненное нами определение микробного профиля содержимого слепой кишки бройлеров показало, что в I группе численность Rikenellaceae увеличилась в 6,3 и 6,8 раза, Lachnospiraceae - в 12,0 и 4,9 раза, Ruminococcaceae - в 2,1 раза и 3,9 раза по сравнению соответственно с К1 и К2. Во II группе отмечали снижение содержания Lactobicallaceae в 6 раз, численность Rikenellaceae увеличилась в 6,20 раза, Lachnospiraceae - в 9,57 раза, Ruminococcaceae - в 3,10 раза относительно К1. В III группе произошло снижение содержания Lactobicallaceae в 13,30 и 1,55 раза по сравнению с К1 и К2. Численность Rikenellaceae увеличилась в 5,5 раза, Lachnospiraceae - в 11,8 раза, Ruminococcaceae - в 3,5 раза по сравнению с К1. Таким образом, введение пищевых волокон в полусинтетический рацион цыплят-бройлеров кросса Arbor Acres приводило к снижению содержания макроэлементов в организме, элиминации токсичных элементов, увеличению численности таксонов Rikenellaceae и Lachnospiraceae с одновременным снижением численности Lactobacillaceae в кишечнике.

Еще

Полусинтетическая диета, пищевые волокна, обмен веществ, минеральный обмен, микробиом, слепой отдел кишечника

Короткий адрес: https://sciup.org/142239846

IDR: 142239846   |   DOI: 10.15389/agrobiology.2023.4.700rus

Список литературы Минеральный обмен и микробное разнообразие слепого отдела кишечника у цыплят-бройлеров (Gallus gallus L.) при включении в полусинтетический рацион пищевых волокон

  • Zhou C., Xu D., Lin K., Sun C., Yang X. Intelligent feeding control methods in aquaculture with an emphasis on fish: a review. Reviews in Aquaculture, 2018, 10(4): 975-993 (doi: 10.1111/raq.12218).
  • Sklan D. Development of the digestive tract of poultry. World’s Poultry Science Journal, 2001, 57(4): 425-428 (doi: 10.1079/wps20010030).
  • Stein H.H., Sève B., Fuller M.F., Moughan P.J., de Lange C.F.M. Invited review: Amino acid bioavailability and digestibility in pig feed ingredients: Terminology and application. Journal of Animal Science, 2007, 85(1): 172-180 (doi: 10.2527/jas.2005-742).
  • Nahm K.H., Carlson C.W., Halverson A.W., Thiex N. Effects of cellulase supplementation and wheat bran on mineral utilization in broilers. South Dakota Poultry Field Day Proceedings and Research Reports, 1983: 12.
  • Kvan O., Duskaev G., Rakhmatullin S., Kosyan D. Changes in the content of chemical ele-ments in the muscle tissue of broilers on the background of plant extract and tetracyclines. International Journal of Environmental Science and Development, 2019, 10(12): 419-423 (doi: 10.18178/ijesd.2019.10.12.1209).
  • Anwar M.N., Ravindran V. Influence of methodology on the measurement of ileal endogenous calcium losses in broiler chickens. Journal of Applied Animal Research, 2020, 48(1): 264-267 (doi: 10.1080/09712119.2020.1781133).
  • Иванов А.А., Полякова Е.П., Ксенофонтов Д.А. Общебиологический феномен депонирования катионов структурами химуса и его значение для создания смесей энтерального питания. Экспериментальная и клиническая гастроэнтерология, 2012, 2: 71-75.
  • Bassi L.S., Teixeira L.V., Sens R.F., Almeida L., Zavelinski V.A.B., Maiorka A. High doses of phytase on growth performance, bone mineralization, diet utilization, and plasmatic myo-inositol of turkey poults. Poultry Science, 2021, 100(5): 101050 (doi: 10.1016/j.psj.2021.101050).
  • Yaqoob M.U., Abd El-Hack M.E., Hassan F., El-Saadony M.T., Khafaga A.F., Batiha G.E., Yehia N., Elnesr S.S., Alagawany M., El-Tarabily K.A., Wang M. The potential mechanistic insights and future implications for the effect of prebiotics on poultry performance, gut microbiome, and intestinal morphology. Poultry Science, 2021, 100(7): 101143 (doi: 10.1016/j.psj.2021.101143).
  • Jiménez-Moreno E., de Coca-Sinova A., González-Alvarado J.M., Mateos G.G. Inclusion of insoluble fiber sources in mash or pellet diets for young broilers. 1. Effects on growth performance and water intake. Poultry Science, 2016, 95(1): 41-52 (doi: 10.3382/ps/pev309).
  • Tejeda O.J., Kim W.K. Role of dietary fiber in poultry nutrition. Animals, 2021, 11(2): 461 (doi: 10.3390/ani11020461).
  • Scott M.L., Nesheim M.C., Young R.J. Nutrition of the chicken. M.L. Scott & Assoc, Ithaca, NY, 1969.
  • Short F.J., Gorton P., Wiseman J., Boorman K.N. Determination of titanium dioxide added as an inert marker in chicken digestibility studies. Animal Feed Science and Technology, 1996, 59(4): 215-221 (doi: 10.1016/0377-8401(95)00916-7).
  • Ansia I., Stein H.H., Vermeire D.A., Brøkner C., Drackley J.K. Ileal digestibility and endogenous protein losses of milk replacers based on whey proteins alone or with an enzyme-treated soybean meal in young dairy calves. Journal of Dairy Science, 2020, 103(5): 4390-4407 (doi: 10.3168/jds.2019-17699).
  • Blaut M. Relationship of prebiotics and food to intestinal microflora. European Journal of Nutri-tion, 2002, 41(Suppl. 1): i11-i16 (doi: 10.1007/s00394-002-1102-7).
  • Jha R., Woyengo T.A., Li J., Bedford M.R., Vasanthan T., Zijlstra R.T. Enzymes enhance deg-radation of the fiber—starch—protein matrix of distillers dried grains with solubles as revealed by a porcine in vitro fermentation model and microscopy. Journal of Animal Science, 2015, 93(3): 1039-1051 (doi: 10.2527/jas.2014-7910).
  • Williams B.A., Grant L.J., Gidley M.J., Mikkelsen D. Gut fermentation of dietary fibres: physico-chemistry of plant cell walls and implications for health. International Journal of Molecular Sci-ences, 2017, 18(10): 2203 (doi: 10.3390/ijms18102203).
  • JøRgensen H., Zhao X.Q., Knudsen K.E.B., Eggum B.O. The influence of dietary fibre source and level on the development of the gastrointestinal tract, digestibility and energy metabolism in broiler chickens. British Journal of Nutrition, 1996, 75(3): 379-395 (doi: 10.1079/BJN19960141).
  • Sadeghi A., Toghyani M., Tabeidian S.A., Foroozandeh A.D., Ghalamkari G. Efficacy of die-tary supplemental insoluble fibrous materials in ameliorating adverse effects of coccidial chal-lenge in broiler chickens. Archives of Animal Nutrition, 2020, 74(5), 362-379 (doi: 10.1080/1745039X.2020.1764811).
  • Kheravii S.K., Morgan N.K., Swick R.A., Choct M., Wu S.B. Roles of dietary fibre and ingredient particle size in broiler nutrition. World’s Poultry Science Journal, 2018, 74(2): 301-316 (doi: 10.1017/S0043933918000259).
  • Sozcu A. Growth performance, pH value of gizzard, hepatic enzyme activity, immunologic indi-cators, intestinal histomorphology, and cecal microflora of broilers fed diets supplemented with processed lignocellulose. Poultry Science, 2019, 98(12): 6880-6887 (doi: 10.3382/ps/pez449).
  • Mahmood T., Guo Y. Dietary fiber and chicken microbiome interaction: where will it lead to? Animal Nutrition, 2020, 6(1): 1-8 (doi: 10.1016/j.aninu.2019.11.004).
  • Mateos G.G., Jiménez-Moreno E., Serrano M., Lázaro R. Poultry response to high levels of dietary fiber sources varying in physical and chemical characteristics. Journal of Applied Poultry Research, 2012, 21(1): 156-174 (doi: 10.3382/JAPR.2011-00477).
  • Jha R., Fouhse J.M., Tiwari U.P., Li L., Willing B.P. Dietary fiber and intestinal health of mo-nogastric animals. Frontiers in Veterinary Science, 2019, 6: 48 (doi: 1010.3389/fvets.2019.00048).
  • Adhikari P., Kiess A., Adhikari R., Jha R. An approach to alternative strategies to control avian coccidiosis and necrotic enteritis. Journal of Applied Poultry Research, 2020, 29(2): 515-534 (doi: 10.1016/j.japr.2019.11.005).
  • Li Y.P., Wang Z.Y., Yang H.M., Xu L., Xie Y.J., Jin S.L., Sheng D.F. Effects of dietary fiber on growth performance, slaughter performance, serum biochemical parameters, and nutrient utiliza-tion in geese. Poultry Science, 2017, 96(5): 1250-1256 (doi: 10.3382/ps/pew385).
  • Houshmand M., Azhar K., Zulkifli I., Bejo M.H., Meimandipour A., Kamyab A. Effects of non-antibiotic feed additives on performance, tibial dyschondroplasia incidence and tibia characteris-tics of broilers fed low-calcium diets. Journal of Animal Physiology and Animal Nutrition, 2011, 95(3): 351-358 (doi: 10.1111/j.1439-0396.2010.01061.x).
  • Sadeghi A., Toghyani M., Gheisari A. Effect of various fiber types and choice feeding of fiber on performance, gut development, humoral immunity, and fiber preference in broiler chicks. Poultry Science, 2015, 94(11): 2734-2743 (doi: 10.3382/ps/pev292).
Еще
Статья научная