Молекулярное маркирование локусов, определяющих высокие темпы роста на начальных этапах развития растений у российских сортов риса (Oryza sativa L.)

Автор: Харитонов Е.М., Гончарова Ю.К., Гончаров С.В., Бруяко В.Н.

Журнал: Сельскохозяйственная биология @agrobiology

Рубрика: Зерновые культуры генетика и селекция

Статья в выпуске: 5 т.54, 2019 года.

Бесплатный доступ

Высокая скорость роста - признак, который в значительной степени определяет физиологические преимущества гетерозисных гибридов различных культур. Быстрое развитие листового аппарата и корневой системы обеспечивает высокую эффективность фотосинтеза и минерального питания. Гетерозисные гибриды быстро проходят фазу, характеризующуюся низкой устойчивостью к абиотическим стрессовым факторам, что значительно снижает вероятность повреждения всходов. Скорость роста связана с генами, определяющими высоту растения. Наследуемость признаков, характеризующих эффективность роста проростка, его массу и длину корня и стеблей, составляет 87-90 %. В настоящей работе мы впервые обнаружили локусы, определяющие формирование признака скорость роста в период прорастания у отечественных сортов риса ( Oryza sativa L.). Целью работы было выявление локусов и хромосомных регионов, а также изучение генетики признаков, обусловливающих быстрое получение и развитие всходов риса. Опыты проводили в 2013-2019 годах. Коллекционные образцы (32 сорта российской селекции) и гибриды риса изучали общепринятыми методами. Семенной материал обрабатывали 20 % стерилизующим раствором (гипохлорит натрия с содержанием активного хлора 95,2 %, ООО «Гринфилд РУС», Россия) в течение 40 мин с целью стерилизации. Проращивали по 30 зерновок каждого образца (в 2 повторностях) при температуре 28-29 °С в термостате в течение 7 сут. У 20 растений каждого сорта или гибрида определяли массу проростка, размеры колеоптиля и зародышевого корня. Гибридизацию между сортами с контрастными признаками проводили твелл-методом (метод Борлоуга) по полной диаллельной схеме. Полиморфизм изучали с помощью 60 нейтральных или ассоциированных с высокой скоростью роста проростков SSR маркеров, распределенных по 12 хромосомам риса. Массу проростков российских сортов определяли локусы, расположенные на четырех хромосомах. Выявлены маркеры, позволяющие изучить их полиморфизм: RM261, RM405, RM463, RM242, RM6314, RM289, RM126. Два хромосомных региона на 4-й и 9-й хромосомах обусловливали длину зародышевого корня, а высоту проростка - локус на 5-й хромосоме, расположенный в районе маркера RM289. Показана возможность упростить методику выявления хромосомных регионов, детерминирующих величину признаков, при изучении неизвестных образцов. Для выявления маркеров с максимальным фенотипическим эффектом проявления признаков можно использовать групповую селекцию (bulk breeding). Для этого нет необходимости создавать популяции для маркирования признака типа рекомбинантных инбредных линий (recombinant inbred lines, RILs) или дигаплоидных линий (doubled haploid, DН) и фенотипировать их. Гораздо больше информации дает использование сортов, контрастных по признаку, что в короткие сроки позволяет определить наиболее важные для формирования признака локусы. Полученная информация позволит установить маркеры, тесно сцепленные с генами, определяющими признак в выявленном хромосомном регионе (http://www.gramene.org). В дальнейшей работе можно использовать именно эти маркеры, если изучение полиморфизма подтвердит возможность достоверного разделения сортов с их помощью на контрастные группы. Таким образом, у отечественных сортов риса нами установлены восемь хромосомных регионов, связанных с темпами роста, и предложена методика, упрощающая их выявление.

Еще

Рис, молекулярное маркирование, генетика, темпы роста, начальные фазы развития, проростки, масса, высота, зародышевые корни

Короткий адрес: https://sciup.org/142226259

IDR: 142226259   |   DOI: 10.15389/agrobiology.2019.5.892rus

Список литературы Молекулярное маркирование локусов, определяющих высокие темпы роста на начальных этапах развития растений у российских сортов риса (Oryza sativa L.)

  • Meyer R.C., Törjék O., Becher M., Altman T. Heterosis of biomass production in Arabidopsis. Establishment during early development. Plant Physiology, 2004, 134(4): 1813-1823 ( ). DOI: 10.1104/pp.103.033001
  • Meyer R., Pospisil C.H., Scholten S. Heterosis associated gene expression in maize embryos 6 days after fertilization exhibits additive, dominant and overdominant pattern. Plant Mol. Biol., 2007, 63: 381-391 ( ). DOI: 10.1007/s11103-006-9095-x
  • Chang T.T. Manual on genetic conservation of rice germplasm for evaluation and utilization: IRRI Los Banos. Philippines, 1976: 75.
  • Suge H. The genetic control of gibberellin production in rice. Jpn. J. Genet., 1976, 53: 199-207.
  • Hu C.H. Evaluation of breeding semidwarf rice by induced mutation and hybridization. Euphytica, 1973, 22: 562-574.
  • Alvarado-Sanabria O., Garcés-Varón G., Restrepo-Díaz H. Physiological response of rice seedlings (Oryza sativa L.) subjected to different periods of two night temperatures. Journal of Stress Physiology and Biochemistry, 2017, 13(1): 35-43.
  • Science of the rice plant. Vol. 3. Genetics /T. Matsuo, Y. Futsuhara, F. Kikuchi, H. Yamaguchi (eds.). Food and Agriculture Policy Research Center, Tokyo, 1997.
  • Miura K., Kuroki M., Shimizu H., Ando I. Introduction of the long-coleoptile trait to improve the establishment of direct-seeded rice in submerged fields in cool climates. Plant Production Science, 2002, 5(3): 219-223 ( ).
  • DOI: 10.1626/pps.5.219
  • Wang Z., Wang J., Bao Y., Wu Y., Zhang H. Quantitative trait loci controlling rice seed germination under salt stress. Euphytica, 2011, 178(3): 297-307 ( ).
  • DOI: 10.1007/s10681-010-0287-8
  • Ohsumi A., Furuhata M., Matsumura O. Varietal differences in biomass production of rice early after transplanting at low temperatures. Plant Production Science, 2012, 15(1): 32-39 ( ).
  • DOI: 10.1626/pps.15.32
  • Fukuda A., Terao T. QTLs for shoot length and chlorophyll content of rice seedlings grown under low-temperature conditions, using a cross between indica and japonica cultivars. Plant Production Science, 2015, 18(2): 128-136 ( ).
  • DOI: 10.1626/pps.18.128
  • Sasaki A., Ashikari M., Ueguchi-Tanaka M., Itoh H., Nishimura A., Swapan D., Ishiyama K., Saito T., Kobayashi M., Khush G.S., Kitano H., Matsuoka M. Green revolution: A mutant gibberellin-synthesis gene in rice. Nature, 2002, 416: 701-702 ( ).
  • DOI: 10.1038/416701a
  • Adachi Y., Sugiyama M., Sakagami J., Fukuda A., Ohe M., Watanabe H. Seed germination and coleoptile growth of new rice lines adapted to hypoxic conditions. Plant Production Science, 2015, 18(4): 471-475 ( ).
  • DOI: 10.1626/pps.18.471
  • Bastawisi A.O., El-Mowafi H.F., Abo Yousef M.I., Draz A.E., Aidy I.R., Maximos M.A., Badawi A.T. Hybrid rice research and development in Egypt. In: Hybrid rice for food security, poverty alleviation and environmental protection. Proceedings of the 4th International Symposium on Hybrid Rice, Hanoi, Vietnam, 14-17 May 2002 /S.S. Virmani, C.X. Mao, B. Hardy (eds.). International Rice Research Institute, Los Baños, Philippines, 2003: 257-263.
  • Костылев П.И., Вожжова Н.Н. Селекция сортов на устойчивость к глубокому затоплению и полеганию. В сб.: Экологическая генетика культурных растений. Краснодар, 2011: 296-299.
  • Гончарова Ю.К. Генетические основы повышения продуктивности риса. Докт. дис. Краснодар, 2014.
  • Гончарова Ю.К., Харитонов Е.М. О генетико-физиологических механизмах солеустойчивости у риса (Oryza sativa L.). Сельскохозяйственная биология, 2013, 3: 3-11 ( ).
  • DOI: 10.15389/agrobiology.2013.3.3rus
  • Goncharova Yu.K. Inheritance of heat resistance in rice. Russian Journal of Genetics: Applied Research, 2011, 1(3): 248-251.
  • Meyer S., Scholten S. Equivalent parental contribution to early plant zygotic development. Current Biology, 2007, 17: 1686-1691 ( ).
  • DOI: 10.1016/j.cub.2007.08.046
  • Meitzel T., Radchuk R., Link W., Weber H. Molecular physiology and genetics of seed heterosis in the model Vicia faba L. Proc. International Conference on Heterosis in Plants, University of Hohenheim, Stuttgart, Germany September 7-9, 2009. Stuttgart, 2009: 32.
  • Шаптуренко М.Н. Генетическая дивергенция и гетерозис у растений. Докт. дис. Минск, 2018.
  • Костылев П.И., Парфенюк А.А., Степовой В.И. Северный рис. Ростов-на-Дону, 2004.
  • Hua J.P., Xing Y.Z., Xu C.O., Sun X.L., Yu S.B., Zhang Q. Genetic dissection of an elite rice hybrid revealed that heterozygotes are not always advantageous for performance. Genetics, 2002, 162: 1885-1895.
  • Wang Y., Guo Y., Hong D.-l. QTL аnalysis of anoxic tolerance at seedling stage in rice. Rice Science, 2010, 17(3): 192-198 (
  • DOI: 10.1016/S1672-6308(09)60017-2)
  • Wang Z., Wang F., Zhou R., Wang J., Zhang H. Identification of quantitative trait loci for cold tolerance during the germination and seedling stages in rice (Oryza sativa L.). Euphytica, 2011, 181(3): 405-413 ( ).
  • DOI: 10.1007/s10681-011-0469-z
  • Бруяко В.Н. Дифференциация сортообразцов риса по темпам роста и развития растений. Канд. дис. Краснодар, 2016.
  • McCouch S.R., Sweeney M., Li J., Jiang H., Thomson M., Septiningsih E., Edwards J., Moncada P., Xiao J., Garris A., Tai T., Martinez C., Tohme J., Sugiono M., McClung A., Yuan L., Ahn S. Through the genetic bottleneck: O. rufipogon as a source of trait-enhancing alleles for O. sativa. Euphytica, 2007, 154(3): 317-339 ( ).
  • DOI: 10.1007/s10681-006-9210-8
  • Matsushima K., Sakagami J. Effects of seed hydropriming on germination and seedling vigor during emergence of rice under different soil moisture conditions. American Journal of Plant Sciences, 2013, 4(8): 1584-1593 ( ).
  • DOI: 10.4236/ajps.2013.48191
  • Лось Г.Д. Перспективный способ гибридизации риса. Сельскохозяйственная биология, 1987, 2: 107-109.
  • Thomson M., de Ocampo M., Egdane J., Rahman M.A., Sajise A.G., Adorada D.L., Tumimbang-Raiz E., Blumwald E., Seraj Z.I., Singh R.K., Gregorio G.B., Ismail A.M. Characterizing the Saltol quantitative trait locus for salinity tolerance in rice. rice, 2010, 3(2-3): 148-160 ( ).
  • DOI: 10.1007/s12284-010-9053-8
  • Тюрин В.В., Щеглов С.Н. Дискриминантный анализ в биологии. Краснодар, 2015.
  • Драгавцев В.А., Цильке P.А., Рейтер В.Г., Воробьев В.А., Дубровская А.Г., Коробейников Н.И., Новохатин В.В., Максименко В.П., Бабакишиев А.Г., Илющенко В.Г., Калашник Н.А., Зуйков Ю.П., Федотов А.М. Генетика признаков продуктивности яровых пшениц в Западной Сибири. Новосибирск, 1984.
  • Gramene: A comparative resource for plants. Режим доступа: http://www.gramene.org. Дата обращения: 20.10.2018.
  • Zhang S., Zheng J., Liu B., Peng S., Leung H., Zhao J., Wang X., Yang T., Huang Z. Identification of QTLs for cold tolerance at seedling stage in rice (Oryza sativa L.) using two distinct methods of cold treatment. Euphytica, 2014, 195(1): 95-104 ( ).
  • DOI: 10.1007/s10681-013-0977-0
  • Verma S.K., Xalxo M.S., Saxena R.R., Verulkar S.B. Identification of QTLs for cold tolerance at seedling stage in rice (Oryza sativa L.). Indian Journal of Genetics and Plant Breeding, 2014, 74(1): 86-89 ( ).
  • DOI: 10.5958/j.0975-6906.74.1.012
  • Xie L., Tan Z., Zhou Y., Xu R., Feng L., Xing Y., Qi X. Identification and fine mapping of quantitative trait loci for seed vigor in germination and seedling establishment in rice. Journal of Integrative Plant Biology, 2014, 56(8): 749-759 ( ).
  • DOI: 10.1111/jipb.12190
  • Singh B.K., Singh A.K., Meetei Ng.T., Mukherjee A., Mandal N. QTL mapping for cold tolerance at the seedling stage in rice. International Journal of Bio-resource and Stress Management, 2016, 7(5): 1214-1224 ( ).
  • DOI: 10.23910/IJBSM/2016.7.5.1615
  • Goncharova J.K., Gontcharov S.V., Chicharova E.E. Localization of chromosome regions controlling high photosynthetic potential in Russian rice cultivars. Russian Journal of Genetics, 2018, 54(7): 796-804 ( ).
  • DOI: 10.1134/S1022795418070037
Еще
Статья научная