Морфофизиологические изменения у пшеницы (Triticum vulgare L.) под влиянием наночастиц металлов (Fe, Cu, Ni) и их оксидов (Fe3O4, CuO, NiO)
Автор: Короткова А.М., Лебедев С.В., Каюмов Ф.Г., Сизова Е.А.
Журнал: Сельскохозяйственная биология @agrobiology
Рубрика: Биоэффекты металлов и их форм
Статья в выпуске: 1 т.52, 2017 года.
Бесплатный доступ
В последние десятилетия развитие нанотехнологий привело к необходимости тщательно исследовать безопасность ультрадисперсных металлов. Известно, что многие из них обладают прооксидантными и токсическими эффектами в отношении различных организмов. В то же время данные по сравнению биологической активности наночастиц металлов и их оксидов на растения отсутствуют. Нами впервые комплексно изучено воздействие сферических наночастиц (НЧ) железа Fe0, магнетита Fe3O4, меди Cu0 и оксида меди CuO, никеля Ni0 и оксида никеля NiO в различных концентрациях на рост, содержание пигментов и перекисное окисление липидов у проростков пшеницы обыкновенной ( Triticumvulgarе L.). Семена пшеницы дезинфицировали, промывали и помещали на подложку из фильтровальной бумаги в пластиковые чашки Петри по 20 шт. на расстоянии не менее 0,5-1,5 см друг от друга. На 3-и сут в чашки вносили по 5 мл наночастиц металлов и их оксидов (концентрации по металлу от 0,0125 до 1,0 М). На 5-е сут после прорыва колеоптиля оценивали физиолого-биохимические показатели. У 10 проростков измеряли длину 1-го листа (от основания до апекса главного листа) и главного корня (от корневой шейки до кончика главного корня). По 3 растения из каждого варианта отбирали для определения содержания фотосинтетических пигментов (ФП) и оценки окислительного стресса. Анализ метрических характеристик показал, что чувствительность проростков пшеницы к наночастицам чистых металлов Cu0 и Ni0 была гораздо выше, чем к наночастицам их оксидов (CuO, NiO). В изучаемом диапазоне концентраций наночастицы CuO и NiO не вызывали летального эффекта, несмотря на существенное (более чем в 2 раза) снижение большинства ростовых показателей. В низких концентрациях (менее 0,05 М) наночастицы Fe0 и Fe3O4 достоверно стимулировали рост проростков по сравнению с контролем. Напротив, в присутствии наночастиц Cu0 и CuO, Ni0 и NiO развивался токсический эффект, который усиливался с возрастанием концентрации металла. У корневой системы как первой мишени обнаружена высокая чувствительность к НЧ металлов. Добавление наночастиц Cu0, CuO, Ni0 и NiO подавляло рост корня соответственно в 19,0; 7,4; 4,8 и 2,2 раза. По возрастанию способности ингибировать рост главного корня и 1-го листа наночастицы расположили в следующем порядке: Fe3O4→Fe0→NiO→CuO→Ni0→Cu0. Положительное воздействие НЧ Fe0 и НЧ Fe3O4 на содержание пигментов было в целом сильнее и стабильнее, чем у наноматериалов на основе Сu и Ni. После инкубации с металлами в концентрации менее 0,05 М зеленая окраска проростков не только сохранялась, но даже отмечался стимулирующий эффект. На содержание хлорофилла a наиболее сильное отрицательное влияние оказывали НЧ Cu0 (снижение относительно контроля на 22,0-33,0 %), хлорофилла b - НЧ Ni0 (на 16,0-68,0 %). Эффект от воздействия НЧ CuO на состояние пигментного комплекса был дозозависимым: статистически значимое снижение содержания хлорофилла а отмечали в вариантах 0,054; 0,1 и 0,5 М (на 9,0-21,5 %), хлорофилла b - в вариантах 0,0125 и 0,025 М (на 4,0-15,0 %). НЧ NiО не оказывали существенного угнетающего действия на хлорофиллы (снижение содержания всего на 8,7 %). Каротиноиды в листьях проростков T. vulgare оказались менее чувствительными к наночастицам металлов по сравнению с хлорофиллами. В присутствии наночастиц содержание МДА изменялось в корнях в большей степени, чем в листьях. Влияние некоторых наночастиц, особенно Ni0, Сu0 и CuO, способствовало достоверному повышению количества МДА в корневой части растений - соответственно на 17,0, 25,0 и 18,7 %. Действие наночастиц Fe0, Fe3O4 и NiО практически не приводило к изменению этого показателя, а НЧ Fe3O4 снижали его на 30,0 %. Таким образом, наночастицы металлов и их оксидов избирательно влияют на метаболические реакции и проявляют различную биологическую активность в зависимости от состава металлов и используемой концентрации.
Наночастицы металлов, показатели роста, фотосинтетические пигменты, малоновый диальдегид, перекисное окисление липидов
Короткий адрес: https://sciup.org/142214008
IDR: 142214008 | DOI: 10.15389/agrobiology.2017.1.172rus
Список литературы Морфофизиологические изменения у пшеницы (Triticum vulgare L.) под влиянием наночастиц металлов (Fe, Cu, Ni) и их оксидов (Fe3O4, CuO, NiO)
- Karkone A., Kuchitsu K. Reactive oxygen species in cell wall metabolism and development in plants. Phytochemistry, 2015, 112: 22-32 ( ) DOI: 10.1016/j.phytochem.2014.09.016
- Liu Y., Tourbin M., Lachaize S., Guiraud P. Nanoparticles in waste waters: hazards, fate and remediation. Powder Technol., 2014, 255: 149-156 ( ) DOI: 10.1016/j.powtec.2013.08.025
- Lee W.M., An Y.J., Yoon H., Kweon H.S. Toxicity and bioavailability of copper nanoparticles to the terrestrial plants mung bean (Phaseolus radiatus) and wheat (Triticum aestivum): plant agar test for water-insoluble nanoparticles. Environ. Toxicol. Chem., 2008, 27: 1915-1921 ( ) DOI: 10.1897/07-481.1
- Geremias R., Fattorini D., Favere V.T.D., Pedrosa R.C. Bioaccumulation and toxic effects of copper in common onion Allium cepa L. Chemistry and Ecology, 2010, 26(1): 19-26 ( ) DOI: 10.1080/02757540903468144
- Chandra R., Bharagava R.N., Yadav S., Mohan D. Accumulation and distribution of toxic metals in wheat (Triticum aestivum L.) and Indian mustard (Brassica campestris L.) irrigated with distillery and tannery effluents. Journal of Hazardous Materials, 2009, 162(2-3): 1514-1521 ( ) DOI: 10.1016/j.jhazmat.2008.06.040
- Lebedev S.V., Korotkova A.M., Osipova E.A. Influence of Fe0 nanoparticles, magnetite Fe3O4 nanoparticles, and iron (II) sulfate (FeSO4) solutions on the content of photosynthetic pigments in Triticum vulgare. Russ. J. Plant Physiol., 2014, 61(4): 564-569 ( ) DOI: 10.1134/S1021443714040128
- Zhao L., Peng B., Hernandez-Viezcas J.A., Rico C., Sun Y., Peralta-Videa J.R. Tang X., Niu G., Jin L., Varela-Ramirez A., Zhang J.Y., Gardea-Torresdey J.L. Stress response and tolerance of Zea mays to CeO2 nanoparticles: cross talk among H2O2, heat shock protein, and lipid peroxidation. ACS Nano, 2012, 6(11): 9615-9622 ( ) DOI: 10.1021/nn302975u
- Rico C.M., Peralta-Videa J.R., Gardea-Torresdey J.L. Chemistry, biochemistry of nanoparticles, and their role in antioxidant defense system in plants. In: Nanotechnology and plant sciences: nanoparticles and their impact on plants/M.H. Siddiqui, M.H. Al-Whaibi, F. Mohammad (eds.). Springer, NY, 2015: 1-17 ( ) DOI: 10.1007/978-3-319-14502-0_1
- Faisal M., Saquibb Q., Alatara A.А., Al-Khedhairyb A.A., Hegazya A.K., Musarratd J. Phytotoxic hazards of NiO-nanoparticles in tomato: a study on mechanism of cell death. Journal of Hazardous Materials, 2013, 250-251: 318-332 ( ) DOI: 10.1016/j.jhazmat.2013.01.063
- Шлык А.А. О спектрофотометрическом определении хлорофиллов а и б. Биохимия, 1968, 33(2): 275-285.
- Сибгатуллина Г.В., Хаертдинова Л.Р., Гумерова Е.А., Акулов А.Н., Костюкова Ю.А., Никонорова Н.А., Румянцева Н.И. Методы определения редокс-статуса культивируемых клеток растений. Казань, 2011. Режим доступа: http://old.kpfu.ru/f1/docs/genetic1.pdf. Без даты.
- Полесская О.Г. Растительная клетка и активные формы кислорода. М., 2007 (ISBN 978-5-98227-252-2).
- Pokhrel L.R., Dubey B. Early developmental responses of plants exposed to metals and oxides nanoparticles. In: Nanotechnology and plant sciences: nanoparticles and their impact on plants/M.H. Siddiqui, M.H. Al-Whaibi, F. Mohammad (eds.). Springer, NY, 2015: 153-165 ( ) DOI: 10.1007/978-3-319-14502-0_8
- Shi J., Abid A.D., Kennedy I.M., Hristova K.R., Silk W.K. To duckweeds (Landoltia punctata), nanoparticulate copper oxide is more inhibitory than the soluble copper in the bulk solution. Environ Pollut., 2011, 159: 1277-1282 ( ) DOI: 10.1016/j.envpol.2011.01.028
- Dimkpa C.O., McLean J.E., Latta D.E., Manango E., Britt D.W., Johnson W.P., Boyanov M.I., Anderson A.J. CuO and ZnO nanoparticles: phytotoxicity, metal speciation, and induction of oxidative stress in sand-grown wheat. J. Nanopart. Res., 2012, 814(9): 1125-1129 ( ) DOI: 10.1007/s11051-012-1125-9
- Nair P.M., Chung I.M. Impact of copper oxide nanoparticles exposure on Arabidopsis thaliana growth, root system development, root lignificaion, and molecular level changes. Environ. Sci. Pollut. Res. Int., 2014, 21: 12709-127022 ( ) DOI: 10.1007/s11356-014-3210-3
- Aslani F., Bagheri S., Julkapli N.M., Juraimi A.S., Hashemi F.S.G., Baghdadi A. Effects of engineered nanomaterials on plants growth: an overview. Scientific World Journal, 2014, 28: 75 ( ) DOI: 10.1155/2014/641759
- Ouzounidou G. The use of photoacoastic spectroscopy in assessing leaf photosynthesis under copper stress: correlation of energy storage to photosystem II fluorescence parameters and redox change of P700. Plant Sci., 1996, 113: 229-237 ( ) DOI: 10.1016/0168-9452(95)04297-0
- Held P. An introduction to reactive oxygen species -measurement of ROS in cells. BioTek Instruments, Inc., 2015. Режим доступа: http://www.biotek.com/resources/articles/reactive-oxygen-species.html. Без даты.
- Carpita N.С. Limiting diameters of pores and the surface structure of plant cell walls. Science, 1982, 218: 813-814 ( ) DOI: 10.1126/science.218.4574.813
- Whitby M., Quirke N. Fluid flow in carbon nanotubes and nanopipes. Nature Nanotechnology, 2007, 2: 87-94 ( ) DOI: 10.1038/nnano.2006.175
- Дерябина Т.Д. Адаптивные реакции и пределы толерантности Triticum aestivum L. и Allium cepa L. к наночастицам меди и железа. Автореф. канд. дис. Оренбург, 2015.
- Kasemets K., Ivask A., Dubourguier H., Kahru A. Toxicity of nanoparticles of ZnO, CuO and TiO2 to yeast Saccharomyces cerevisiae. Toxicology in Vitro, 2009, 23: 1116-1122 ( ) DOI: 10.1016/j.tiv.2009.05.015
- Wang Z., Xie X., Zhao J., Liu X., Feng W., White J.C., Xing B. Xylem-and phloem-based transport of CuO nanoparticles in maize (Zea mays L.). Environ. Sci. Technol., 2012, 46(8): 4434-4441 ( ) DOI: 10.1021/es204212z
- Korotkova A., Sizova Е., Lebedev S. Influence of iron nanoparticles on induction of oxidative damage in Triticum vulgare. Ecology, Environment and Conservation Paper, 2015, 21: 101-111.