Морфологические аспекты применения коллагенового имплантата при заживлении ран фиброзной оболочки глаза

Лечение заболеваний сосудистой оболочки и травм глаза продолжает оставаться актуальной проблемой офтальмологии. Наличие большого количества разнообразных способов лечения свидетельствует о недостаточной удовлетворенности офтальмологов их результатами, что дает основание поиска новых эффективных способов терапии.

Одним из способов герметизации раны при проникающих ранениях склеральной капсулы, является пломбирование его разнообразными биологическими и синтетическими материалами. Однако в настоящее время получение пересадочного материала связано с решением ряда правовых, моральных и финансовых вопросов, что создает определенные трудности в трансплантологии. Применение же синтетических материалов ограничено в связи с возможной реакцией отторжения синтетической пломбы.

В то же время, в последние годы в офтальмологической хирургии активно применяется коллагеновый имплантат, который является абсорбирующим гемостатическим средством для местного применения. Препарат состоит из коллагеновой пластины, покрытой с одной стороны активными компонентами, способствующими свертыванию крови. Покрывающий слой состоит из высококонцентрированного фибриногена, тромбина и апротинина. Рибофлавин желтого цвета обозначает клейкую поверхность. При контакте с кровоточащей раной или жидкостями организма содержащиеся в покрывающем слое факторы свертывания высвобождаются, и тромбин превращает фибриноген в фибрин, а протинин препятствует преждевременному фибринолизу плазмином. Пластина склеивается с раневой поверхностью за счет полимеризации; во время этого процесса (3-5 мин) пластина должна быть прижата к раневой поверхности. Пластина рассасывается и впоследствии замещается соединительной тканью в течение 3-6 недель.

В доступной литературе имеются лишь единичные работы по применению коллагенового имплантата в офтальмологической практике (1-3).

Цель исследования: оценить гистологическую картину заживления ран фиброзной оболочки глаза в присутствии коллагенового имплантата и его биостимулирующем действии.

Материал и методы: экспериментальная часть работы выполнена на 10 половозрелых кроликах (объект исследования 20 глаз) породы шиншилла со сред- ней массой 2,5 кг. Возраст животных составлял 3-3,5 мес. Правый глаз - экспериментальный (10 глаз), левый глаз - контрольный (10 глаз).

Каждый глаз был подвержен эксперименту: после предварительной эпибульбарной анестезии раствором инокаина 0,4%, между прямыми мышцами в 4 сегментах в 10 мм от лимба произведен разрез коньюнктивы 10мм, тенонова капсула была отсепарована от склеры тупым путем. Микроскальпелем в 3 сегментах нанесены проникающие ранение склеры линейного характера 6 мм. Выделены 4 группы эксперимента: в одном сегменте из четырех наложена коллагеновая пластина размером 1,0 смх1,0 см, с предварительным наложением швов на склеру (викрил 7/0); во втором - после наложения швов установлена коллагеновая пластина прежних размеров, пропитанная аутокровью; в третьем сегменте была наложена пластина коллагенового имплантата размером 1,0 смх1,0 см без предварительного нанесения проникающего ранения; четвертый сегмент «контрольный», представленный проникающим ранением склеры с наложением швов. В послеоперационном периоде применена стандартная антибактериальная терапия. Контрольный осмотр проводился еженедельно. В сроки через 1 неделю, 2 недели, 1 месяц, 3 месяца и 6 месяцев животные выводились из эксперимента. Энуклеация глаза производилась по традиционной методике после углубления наркоза, путем внутривенного введения 3 мл фентанила на внутренней стороне ушной раковины. Энуклеированные глаза фиксировались в 10% растворе нейтрального формалина, в последующем материал склеры энуклеированного глаза проводился по общепринятой методике и заливался в воск-парафин. Изготовленные парафиновые срезы, толщиной 4-5 микрон для гистологического исследования окрашивались гематоксилином и эозином. Морфологические исследования проведены с использованием компьютеризованного комплекса «Leica microsystems» и микроскопа «Leica DM1000» с цветным микрофотографированием, просматривали при увеличении микроскопа Х100, Х200 и Х400 на базе патоморфологической лаборатории кафедры патологической анатомии и судебной медицины КГМУ.

Результаты и обсуждение. Результаты морфологического исследования показали, что в первой группе опыта при наложении коллагеновой пластины с предварительным наложением шва на склеру викри-лом 7/0 при гистологическом исследовании выявлено место наложения шовного материала с четко отграниченной границей без деструктивных изменений в окружающей ткани склеры и без новообразования коллагеновых волокон. В группе эксперимента (вторая группа) после наложения швов и установления коллагеновой пластины, пропитанной аутокровью наблюдался умеренный межуточный отек склеры и хорошо просматривалась зона имплантации коллагеновой губки имбибированная негемолизированными эритроцитами и без каких-либо воспалительных процессов в окружающей ткани. В третьей группе при наложении пластины коллагенового имплантата без предварительного нанесения проникающего ранения склеры микроскопически воспалительных и деструктивных изменений ткани склеры не было выявлено. При этом отмечена проникновение элементов коллагеновой губки между соединительнотканными структурами склеры с формированием крупных ячеистых образований и стимуляция процесса новообразования коллагеновых волокон. В четвертом сегменте - «контрольная группа», представленной проникающим ранением склеры с наложением швов при микроскопическом исследовании не было выявлено реактивных изменений в зоне шовного материала.

Выводы. Проведенные морфологические исследования показывают, что шовный материал и введенная коллагеновая губка не вызывают деструктивных изменений и воспалительный процесс. Введение коллагеновой губки в участок дефекта ткани стимулирует новообразование коллагена и не вызывает реактивного процесса при пропитывании её аутокровью.