Накопление фотосинтетических пигментов и вторичных метаболитов в листьях галеги (Galega orientalis Lam.) сорта гале в зависимости от возраста травостоя и агротехнологии при интродукции в зоне средней тайги Западной Сибири

Автор: Моисеева Е.А., Кравченко И.В., Шепелева Л.Ф., Бордей Р.Х.

Журнал: Сельскохозяйственная биология @agrobiology

Рубрика: Нетрадиционные кормовые культуры

Статья в выпуске: 1 т.57, 2022 года.

Бесплатный доступ

Продуктивность растений и накопление биологически активных веществе определяются комплексом сложных взаимодействий физиолого-биохимических процессов, экологических факторов и применяемых агротехнологий. Возможности широкого использования галеги восточной во многом обусловлены ее исключительной приспособляемостью к различным условиям окружающей среды и большим потенциалом урожайности. Несмотря на достаточно длительную историю интродукции G. orientalis как кормовой культуры в разных регионах мира и в России, сведения об аккумуляции в ее зеленой массе фотосинтетических пигментов, витамина С и флавоноидов при адаптации к новым условиям произрастания немногочисленны, а для севера России полностью отсутствуют. Ранее мы впервые описали фенологические, эко-морфологические особенности и оценили фотосинтетический потенциал, продуктивность зеленой массы и семян у галеги восточной при выращивании в зоне Средней тайги Западной Сибири. В настоящей работе систематизированы полученные нами впервые данные о накоплении фотосинтетических пигментов, витамина С и флавоноидов в растениях галеги восточной в пункте интродукции. Цель исследования - охарактеризовать содержание этих соединений при адаптации к новым экологическим условиям при разных агротехнических приемах и в зависимости от возраста травостоя. Интродукционные исследования проводили в 2013-2015 годах на экспериментальном участке в поселке Барсово (Ханты-Мансийский автономный округ - Югра, Сургутский р-н, 61°15′00″ с.ш., 73°25′00″ в.д.) на сорте Гале. Растения выращивали с использованием гороха в качестве покровной культуры, в монокультуре с предпосевной обработкой семян микробиологическим препаратом Байкал-ЭМ1 (ООО НПО «ЭМ-Центр», Россия) и в монокультуре без обработки. Эффект сравниваемых агротехнических приемов (монокультура, монокультура с предпосевной обработкой семян микробиопрепаратом Байкал-ЭМ1, смешанный посев с горохом) при сравнении суммарного содержания хлорофиллов (Chl a + Chl b) в листьях проявился со 2-го года жизни растений. При обработке микробиопрепаратом в течение 2-го и 3-го года этот показатель был выше, чем в контроле (по фазам развития на 19-22 % и на 16-18 %), в смешанном посеве - снижался в конце 2-го года, но к концу 3-го года превысил контрольные значения на 33 %. В контроле содержание Chl a в листьях галеги восточной в год посева, на 2-й и 3-й годы жизни в среднем за вегетационный сезон составило 1,23±0,10; 1,29±0,12 и 1,32±0,14 мг/г сухой массы. В среднем за 2-й год при применении удобрения Байкал-ЭМ1 содержание Chl a в листьях возросло на 15 % в сравнении с контролем, при совместном посеве с горохом - оставалось в пределах контрольных значений (1,20±0,23 мг/г) (р≤£ 0,05). В среднем за 3 года при применении микробиологического препарата значение Chl a/Chl b в листьях достоверно (р≤£ 0,05) снизилось, что может указывать на повышение адаптивного потенциала растений, в бинарных посевах - осталось в пределах контрольных значений. Доля хлорофиллов (Chl a + Chl b), локализованных в светособирающих комплексах листьев, варьировала от 20 до 90 % от фенологи-ческой фазы, возраста травостоя и варианта опыта. В контроле, при инокуляии микробиопре-паратом и в смешанном посеве корреляция между Chl a/Chl b и долей хлорофиллов (Chl a + Chl b), локализованных в ССК, составила соответственно r = -0,83; r = -0,93 и r = -0,65. Сравниваемые агротехнические приемы не привели к статистически значимому изменению показателя Chl/Car у интродуцента. Тем не менее при инокуляции препаратом Байкал-ЭМ1 и в смешанном посеве с горохом накопление каротиноидов в листьях галеги восточной превышало таковое в контроле. В среднем за годы исследования по всем вариантам опыта накопление всех пигментов в листьях прямо коррелировало с ГТК. Содержание Chl b и каротиноидов оказалось слабее связано с температурным режимом региона, при этом первый показатель прямо коррелировал с количеством осадков за сезон, а для второго отмечали отрицательную корреляцию. При инокуляции препаратом Байкал-ЭМ1 содержание витамина С в листьях в 1-й и 2-й год жизни растений повышалось относительно контроля, к 3-му году - практически сравнялось с контрольными значениями, в бинарном посеве на 3-й год снижалось относительно контроля. Содержание флавоноидов в листьях при при-менении микробиопрепарата и в контроле на 3-й год (когда растения перешли к генеративному развитию) резко снизилось, тогда как в посеве с покровной культурой, где продолжалась виргинильная стадия - резкое возросло (в 1,6 раза по сравнению с предыдущими годами). В целом полученные данные свидетельствуют, что применение микробиологического препарата Байкал-ЭМ1 в большей степени способствовало адаптации растений галеги восточной 2-го и 3-го годов жизни к новым экологическим условиям.

Еще

Пигменты фотосинтеза, витамин с, флавоноиды, galega orientalis lam, галега восточная, сорт гале, интродукция, байкал-эм1

Короткий адрес: https://sciup.org/142234468

IDR: 142234468

Список литературы Накопление фотосинтетических пигментов и вторичных метаболитов в листьях галеги (Galega orientalis Lam.) сорта гале в зависимости от возраста травостоя и агротехнологии при интродукции в зоне средней тайги Западной Сибири

  • Ignaczak S., Andrzejewska J., Sadowska K., Albrecht K.A. Fractional harvest of fodder galega for improved herbage nutritive value. Agronomy, 2021, 11(3): 480 (doi: 10.3390/agron-omy11030480).
  • Домаш В.И., Прохоров В.Н., Канделинсксая, О.Л., Шарпио Т.П., Забрейко С.А., Гри-щенко Е.Р. Биохимическая характеристика генотипов галеги восточной (Galega orientalis Lam.), произрастающей в условиях Беларуси. Сельскохозяйственная биология, 2013, 6: 105111 (doi: 10.15389/agrobiology.2013.6.105rus)
  • Balezentiene L., Spruogis V. Experience of fodder Galega (Galega orientalis Lam) and traditional fodder grasses use for forage production in organic farm. Veterinarija ir zootechnika (Vet. Med. Zoot.), 2011, 56(78): 19-26.
  • Zarczynski P.J., Sienkiewicz S., Wierzbowska J., Krzebietke S.J. Fodder Galega — a versatile plant. Agronomy, 2021, 11(9): 1797 (doi: 10.3390/agronomy11091797).
  • POWO Plants of the World Online. Facilitated by the Royal Botanic Gardens, Kew, 2021. Режим доступа: https://powo.sci-ence.kew.org/taxon/urn:lsid:ipni.org:names:495682-1. Дата обращения: 09.02.2022.
  • Osterman J., Chizhevskaja E.P., Andronov E.E., Fewer D.P., Terefework Z., Rou-milantseva M.L., Onichtchouk O.P., Dresler-Nurmi A., Simarov B.V., Dzyubenko N.I., Lindstrom K. Galega orientalis is more diverse than Galega officinalis in Caucasus—whole-genome AFLP analysis and phylogenetics of symbiosis-related genes. Molecular Ecology, 2011, 20(22): 4808-4821 (doi: 10.1111/j.1365-294X.2011.05291).
  • Баркалов В.Ю., Прокопенко С.В. Galega orientalis Lam. (Fabaceae) — новый вид для адвентивной флоры российского Дальнего Востока. Бюллетень Ботанического сада-института, 2017, 17: 45-46.
  • Teleu^a A., TOei V., Cowman S. Biological peculiarities and nutritional value of Astragalus galegi-formis L. and Galega orientalis Lam. species in Moldova. J. Bot., 2015, VII(1-10): 126-133.
  • Fairey N.A., Lefkovitch L.P., Coulman B.E., Fairey D.T., Kunelius T., McKenzie D.B., Michaud R., Thomas W.G. Cross-Canada comparison of the productivity of fodder galega (Galega orientalis Lam.) with traditional herbage legumes. Canadian Journal of Plant Science, 2000, 80(4): 793-800 (doi: 10.4141/P99-162).
  • Iwabuchi K. Adaptability and cultivation of Leguminosae galega (Galega orientalis Lam.) in Hokkaido (usefulness, cultivation and feeding value of galega (Galega orientalis Lam.) in Hokkaido). Journal of the Japanese Grassland Society, 2012, 58(2): 113-121 (doi: 10.14941/grass.58.113).
  • Гульшина И.И. Основные приемы возделывания козлятника восточного (Galega orientalis Lam.) в одновидовых и смешанных посевах в условиях лесостепи ЦЧР. Автореф. канд. дис. М., 2000.
  • Кшникаткина А.Н., Гущина В.А., Варламов В.А., Галиуллин А.А. Продукционный процесс агрофитоценозов козлятника восточного в условиях Cреднего Поволжья. Сельскохозяйственная биология, 2003, 2: 101-107.
  • Фаизов И.Ф. Продуктивность козлятника восточного в чистых и смешанных посевах на обыкновенных черноземах степной зоны Саратовского правобережья. Автореф. канд. дис. Пенза, 2004.
  • Батыршина Э.Р. Основные технологические приемы возделывания козлятника восточного в одновидовых и смешанных посевах в условиях Среднего Урала. Автореф. канд. дис. М., 2004.
  • Сагирова Р.А. Онтогенетический морфогенез галеги восточной (Galega orientalis Lam.) как перспективного кормового растения. Сельскохозяйственная биология, 2009, 4: 75-80.
  • Литвяк Г.К. Продуктивность козлятника восточного на корм и семена в зависимости от нормы высева и способа посева в условиях оренбургского Предуралья. Автореф. канд. дис. Оренбург, 2002.
  • Жукова М.А. Биохимическая характеристика популяций козлятника восточного (Galega orientalis Lam.). Автореф. канд. дис. СПб, 2003.
  • Shymanska O.V., Vergun O.M., Rakhmetov D.B., Brindza J. Antiradical activity of plant extracts of Galega officinalis L. and G. orientalis Lam. Plant Introduction, 2018, 78: 12-19 (doi: 10.5281/ze-nodo.2229075).
  • Darmohray L.M., Sedilo G.M., Gutyj B.V. Conceptual framework for the assessment of the nutritional and biological value of the plant Galega orientalis (Lam.). Scientific Messenger LNUVMB, 2017, 19(79): 9-12 (doi: 10.15421/nvlvet7902).
  • Perez-Galvez A., Viera I., Roca M. Carotenoids and chlorophylls as antioxidants. Antioxidants (Basel), 2020, 9(6): 505 (doi: 10.3390/antiox9060505).
  • Akbari A., Jelodar G., Nazifi S., Sajedianfard J. An overview of the characteristics and function of vitamin C in various tissues: relying on its antioxidant function. Zahedan J. Res. Med. Sci., 2016, 18(11): e4037 (doi: 10.17795/zjrms-4037).
  • Kumar S., Pandey A.K. Chemistry and biological activities of flavonoids: an overview. The Scientific World Journal, 2013, 2013: Article ID 162750 (doi: 10.1155/2013/162750).
  • Apak R., OzyUrek M., Gttijlu K., Qapanoglu E. Antioxidant activity/capacity measurement. 1. Classification, physicochemical principles, mechanisms, and electron transfer (ET)-based assays. J. Agric. Food Chem, 2016, 64(5): 997-1027 (doi: 10.1021/acs.jafc.5b04739).
  • Swapnil P., Meena M., Singh S.K., Dhuldhaj U.P., Harish, Marwal A. Vital roles of carotenoids in plants and humans to deteriorate stress with its structure, biosynthesis, metabolic engineering and functional aspects. Current Plant Biology, 2021, 26: 100203 (doi.org/10.1016/j.cpb.2021.100203).
  • Тютерева Е.В., Иванова А.Н., Войцеховская О.В. Фотосинтез без хлорофилла b: уникальная организация фотосинтетического аппарата мутанта ячменя chlorina 3613. Труды Межд. науч. конф. «Ботаника: история, теория, практика (к 300-летию основания Ботанического института им. В.Л. Комарова Российской академии наук». СПб, 2014: 190-203.
  • Gest N., Gautier H., Stevens R. Ascorbate as seen through plant evolution: the rise of a successful molecule. Journal of Experimental Botany, 2013, 64(1): 33-53 (doi: 10.1093/jxb/ers297).
  • Иванов Б.Н. Роль аскорбиновой кислоты в фотосинтезе. Биохимия, 2014, 79(3): 364-372.
  • Toth S.Z., Nagy V., Puthur J.T., Kovacs L., Garab G. The physiological role of ascorbate as photosystem II electron donor: protection against photoinactivation in heat-stressed leaves. Plant Physiology, 2011, 156(1): 382-392 (doi: 10.1104/pp.110.171918).
  • Trubitsin B.V., Mamedov M.D., Semenov A.Y., Tikhonov A.N. Interaction of ascorbate with photosystem I. Photosynthesis Research, 2014, 122: 215-231 (doi: 10.1007/s11120-014-0023-7).
  • Ivanov B., Asada K., Kramer D.M., Edwards G. Characterization of photosynthetic electron transport in bundle sheath cells of maize. I. Ascorbate effectively stimulates cyclic electron flow around PSI. Planta, 2005, 220: 572-581 (doi: 10.1007/s00425-004-1367-6).
  • Зверев Я.Ф. Флавоноиды глазами фармаколога. Антиоксидантная и противовоспалительная активность. Обзоры по клинической фармакологии и лекарственной терапии, 2017, 15(4): 5-13 (doi: 10.17816/RCF1545-13).
  • Vergun O., Shymanska O., Rakhmetov D., Grygorieva O., Ivanisova E., Brindza J. Parameters of antioxidant activity of Galega officinalis L and Galega orientalis Lam. (Fabaceae Lindl.) plant raw material. Potravinarstvo Slovak Journal of Food Sciences, 2020, 14: 125-134 (doi: 10.5219/1271).
  • Balezentiene L. Bioassay of phenolics accumulation and activity in fodder galega at different growth stages. Zemdirbyste-Agriculture, 2009, 96(1): 170-181.
  • Лапина Е.А., Шепелева Л.Ф. Эколого-биоморфологические особенности развития козлятника восточного (Galega orientalis L.) первого года интродукции в условиях средней тайги Западной Сибири. Вестник Оренбургского государственного университета, 2014, 6(167): 30-35.
  • Моисеева Е.А., Шепелева Л.Ф. Продукционные процессы при интродукции галеги восточной (Galega orientalis Lam.) в условиях средней тайги Западной Сибири. Вестник Крас-ГАУ, 2016, 8: 9-14.
  • Моисеева Е.А., Шепелева Л.Ф., Кравченко И.В. Динамика содержания пигментов фотосинтеза галеги восточной (Galega orientalis Lam.) в условиях средней тайги Западной Сибири. Вестник КамчатГТУ, 2016, 37: 70-76 (doi: 10.17217/2079-0333-2016-37-70-76).
  • Моисеева Е.А., Бордей Р.Х. Эколого-биологическая оценка козлятника восточного (Galega orientalis Lam.) как перспективной культуры для интродукции в условиях г. Сургута. Вестник КрасГАУ, 2017, 10: 140-147.
  • Моисеева Е.А., Бордей Р.Х, Самойленко З.А. Перспективы возделывания галеги восточной (Galega orientalis Lam.) на подзолистых почвах средней тайги Западной Сибири (в условиях Ханты-Мансийского автономного округа-Югры). Известия Коми научного центра Уральского отделения Российской академии наук, 2018, 3(35): 54-60.
  • Моисеева Е.А. Некоторые аспекты репродуктивной биологии козлятника восточного (Galega orientalis Lam.) в условиях средней тайги Западной Сибири. Мат. IVМежд. науч.-практ. конф. «Экология и география растений и растительных сообществ». Екатеринбург, 2018: 567-570.
  • Доспехов Б.А. Методика полевого опыта (с основами статистической обработки результатов исследований). М., 1985.
  • Методика полевых опытов с кормовыми культурами /Под ред. А.С. Митрофанова, Ю.П. Новоселова, Г.Д. Харькова. М., 1971.
  • Работнов Т.А. Работы в области изучения жизненного цикла многолетних травянистых растений в естественных ценозах. Вопросы ботаники. М.-Л., 1954, вып. 2.
  • Федоров А.А., Кирпичников М.Э., Артюшенко З.Т. Атлас по описательной морфологии высших растений. Лист. М.-Л., 1956.
  • Федоров А.А., Кирпичников М.Э., Артюшенко З.Т. Атлас по описательной морфологии высших растений. Стебель и корень. М.-Л., 1962.
  • Федоров А.А., Кирпичников М.Э., Артюшенко З.Т. Атлас по описательной морфологии высших растений. Соцветие. М.-Л., 1979.
  • Федорова А.И., Никольская А.Н. Практикум по экологии и охране окружающей среды. М., 2003.
  • Мокроносов А.Т. Нефтегазодобыча и окружающая среда. М., 1994.
  • Maslova T.G., Popova I.A. Adaptive properties of the plant pigment systems. Photosynthetica, 1993, 29(2): 195-203.
  • Lichtenthaler H.K. Chlorophylls and carotenoids: pigments of photosynthetic biomembranes. In: Methods in enzymology, V. 148 /L. Packer, R. Douce (eds.). Academic Press, San Diego, 1987: 350-382 (doi: 10.1016/0076-6879(87)48036-1).
  • Hewitt E.J., Dickes G.J. Spectrophotometric measurements on ascorbic acid and their use for the estimation of ascorbic acid and dehydroascorbic acid in plant tissues. Biochemical Journal, 1961, 78(2): 384-391 (doi: 10.1042/bj0780384).
  • Чупахина Г.Н. Система аскорбиновой кислоты растений. Калининград, 1997.
  • Флавиновые гликозиды. Методы выделения, очистки, разделения и анализа. Л., 1991.
  • Дымова О.В., Головко Т.К. Фотосинтетические пигменты в растениях природной флоры таежной зоны европейского северо-востока России. Физиология растений, 2019, 66(3): 198206 (doi: 10.1134/S0015330319030035).
  • Ладыгин В.Г., Ширшикова Г.Н. Современные представления о функциональной роли каротиноидов в хлоропластах эукариот. Журнал общей биологии, 2006, 67(3): 163-189. Иванова Л.А., Ронжина Д.А., Юдина Д.А., Золотарева Н.В., Калашникова И.В., Иванова Д.А. Сезонная динамика содержания хлорофиллов и каротиноидов в листьях степных и лесных растений на уровне вида и сообщества. Физиология растений, 2020, 67(3): 278-288 (doi: 10.31857/S0015330320030112).
  • Zhang H., Zhong H., Wang J., Sui X., Xu N. Adaptive changes in chlorophyll content and photosynthetic features to low light in Physocarpus amurensis Maxim and Physocarpus opulifolius "Diabolo". PeerJ, 2016, 4: e2125 (doi: 10.7717/peerj.2125).
  • Jansson S. Light-harvesting complex (LHC) I and II: pigments and proteins. In: Encyclopedia of biological chemistry. Elsevier, New York, 2004: 567-570 (doi: 10.1016/B0-12-443710-9/00490-7).
  • Nahakpam S. Chlorophyll stability: a better trait for grain yield in rice under drought. Indian Journal of Ecology, 2017, 44(special issue-4): 77-82.
  • Maglovski M., Gersi Z., Rybansky L., Bardacova M., Moravcikova J., Bujdos M., Dobrikova A., Apostolova E., Kraic J., Blehova A., Matusikova I. Effect of nutrition on wheat photosynthetic pigment responses to arsenic stress. Polish Journal of Environmental Studies, 2019, 28(3): 18211829 (doi: 10.15244/pjoes/89584).
  • Larcher W. Physiological plant ecology. Ecophysiology and stress physiology of functional groups. Springer-Verlag, Berlin, Heidelberg, New-York, 2003.
  • Головко Т.К., Далькэ И.В., Дымова О.В., Захожий И.Г., Табаленкова Г.Н. Пигментный комплекс растений природной флоры европейского Северо-Востока. Известия Коми научного центра УрО РАН, 2010, 1: 39-46.
  • Surai P., Fisinin V.I. Natural antioxidant in hens' embryogenesis and antistress defense in postnatal development (review). Sel'skokhozyaistvennaya Biologiya [Agricultural Biology], 2013, 2: 318 (doi: 10.15389/agrobiology.2013.2.3eng).
  • Остренко К.С., Галочкин В.А, Колоскова Е.М., Галочкина В.П. Влияние нового микро-нутриента —аскорбата лития на стрессоустойчивость и продуктивность свиноматок. Проблемы биологии продуктивных животных, 2017, 2: 74-86.
  • Войтехович М.А., Кучинская В.А, Новосельский И.Ю., Гриусевич П.В., Самохина В.В., Мацкевич В.С., Соколик А.И., Демидчук В.В. L-аскорбиновая кислота как антиоксидант и сигнально-регуляторный агент в клетках высших растений. Журнал Белорусского государственного университета. Биология, 2018, 2: 27-38.
  • Matsui T. Vitamin C nutrition in cattle. Asian-Australas. J. Anim. Sci., 2012, 25(5): 597-605 (doi: 10.5713/ajas.2012.r.01).
  • Зенькова Н.Н., Разумовский Н.П., Субботина И.А. Продуктивность, состав и кормовые достоинства галеги восточной. Ученые записки УО ВГАВМ, 2010, 46, 2(2): 122-127.
  • Кравченко И.В., Моисеева Е.А., Устинова М.В., Шепелева Л.Ф. Динамика накопления аскорбиновой кислоты в надземной фитомассе Galega orientalis Lam. Юг России: экология, развитие, 2021, 16(1): 36-44 (doi: 10.18470/1992-1098-2021-1-36-44).
  • Филатов В.И., Мельников В.Н., Лугинина Т.Ф., Слабженинова Н.В. Продуктивность козлятника восточного при применении нитрагина и физиологически активных соединений в условиях ЦРНЗ. Плодородие, 2010, 4: 36-38.
  • Ghasemzadeh A., Nasiri A., Jaafar H.Z., Baghdadi A., Ahmad I. Changes in phytochemical synthesis, chalcone synthase activity and pharmaceutical qualities of Sabah snake grass (Clinacanthus nutans L.) in relation to plant age. Molecules, 2014, 19(11): 17632-17648 (doi: 10. 3390/molecules191117632).
  • Кирсанова Н.В. Эколого-биологические особенности Eupatorium cannabinum L. в связи с интродукцией в подзоне южной тайги Западной Сибири. Автореф. канд. дис. Томск, 2012. Mutalib L. Effect of growth age period on biochemical composition of Plantago major plant. International Journal of Current Research and Review, 2015, 7(19): 6-10.
  • Eryashev A.P., Eryashev P.A. The influence of pesticides and Albite on the photosynthetic activity and seed yield of eastern galega (Galega orientalis). Journal of Pharmaceutical Sciences and Research, 2018, 10(12): 3422-3425.
  • Tian D., Wang F., Duan M., Cao L., Zhang Y., Yao X., Tang J, Coumarin analogues from the Citrus grandis (L.) osbeck and their hepatoprotective activity. Journal of Agricultural and Food Chemistry, 2019, 67(7): 1937-1947 (doi: 10.1021/acs.jafc.8b06489).
  • Yamini B., Poppenga R.H., Braselton W.E., Judge L.J. Dicoumarol (moldy sweet clover) toxicosis in a group of Holstein calves. Journal of Veterinary Diagnostic Investigation, 1995, 7: 420-422.
  • Smith B.N., Dilger R.N. Immunomodulatory potential of dietary soybean-derived isoflavones and saponins in pigs. Journal of Animal Science, 2018, 96(4): 1288-1304 (doi: 10.1093/jas/sky036).
  • Chaudhary S.K., Rokade J.J., Aderao G.N., Singh A., Gopi M., Mishra A., Raje K. Saponin in poultry and monogastric animals: a review. International Journal of Current Microbiology and Applied Sciences, 2018, 7(7): 3218-3225 (doi: 10.20546/ijcmas.2018.707.375).
  • Jensen T.L. Livestock foraging behavior in response to sequence and interactions among alkaloids, tannins and saponins. Utah State University, 2012.
  • Symanowicz B., Kalembasa S., Jaremko D., Niedbala M. Effect of nitrogen application and year on concentration of Cu, Zn, Ni, Cr, Pb and Cd in herbage of Galega orientalis Lam. Plant Soil Environ., 2015, 61(1): 11-16 (doi: 10.17221/558/2014-PSE).
  • Symanowicz, B., Kalembasa, S., Jaremko, D., Niedbala, M. Effect of nitrogen fertilization of Galega orientalis Lam. on the yield and content of K, Na, Ca and Mg in the plant and soil. Environmental Protection and Natural Resources, 2015, 26(2): 15-20 (doi: 10.1515/oszn-2015-0004).
  • Vinogradova Y. Bio-morphological characters of alien legume species, influencing their invasion in natural plant communities. American Journal of Plant Sciences, 2016, 7(16): 2390-2398 (doi: 10.4236/ajps.2016.716209).
Еще
Статья научная