Некоторые природные и синтетические соединения, блокирующие биосинтез афлатоксина В1 и меланина у Aspergillus flavus

Автор: Джавахия В.Г., Воинова Т.М., Поплетаева С.Б., Стацюк Н.В., Микитюк О.Д., Назарова Т.А., Щербакова Л.А.

Журнал: Сельскохозяйственная биология @agrobiology

Рубрика: Биологические основы кормопроизводства, кормовые добавки

Статья в выпуске: 4 т.51, 2016 года.

Бесплатный доступ

Контаминация сельскохозяйственной продукции микотоксинами различного происхождения - одна из серьезных проблем для мирового производства продуктов питания и кормов. Афлатоксин В1 (АФВ1) обладает гепатотоксичным, карциногенным и тератогенным действием, не разлагается в процессе переработки растительного сырья при приготовлении кормов и пищевых продуктов, поэтому относится к наиболее опасным микотоксинам. В связи с этим поиск веществ, подавляющих его биосинтез и тем самым предотвращающих накопление, остается актуальным. В настоящей работе представлены результаты исследования способности ряда природных и синтетических соединений блокировать у Aspergillus flavus (штамм AF11) образование АФВ1 и пигмента меланина - вторичных метаболитов поликетидной структуры, у которых имеются общие интермедиаты и совпадают начальные стадии биосинтеза. В качестве потенциальных ингибиторов биосинтеза поликетидных соединений использовали ловастатин и различные коммерческие препараты: (аминоэтил)тиофосфоновую кислоту, (аминометил)тиофосфоновую кислоту, алафосфалин, (1-аминоэтил)фосфоновую кислоту и N-гидроксипутресцин. Продуцентом ло-вастатина служил мутантный штамм Aspergillus terreus 45-50, полученный ранее из штамма A. terreus ATCC 20542. Чтобы выявить изменения в морфологии колоний, гриб A. flavus культивировали на твердой питательной среде. Концентрации исследуемых веществ при этом варьировали от 0,0001 до 0,1 % в зависимости от активности соединения. Для определения влияния исследуемых веществ на продукцию АФВ1 штамм A. flavus AF11 культивировали в течение 170 ч в жидкой питательной среде Пейна-Хеглера. Растворы тестируемых веществ добавляли до конечной концентрации от 0,001 до 0,1 % (коммерческие препараты) или от 0,0001 до 0,001 % (ловастатин). Эффективность ингибирования или стимуляции синтеза афлатоксина оценивали, сравнивая его содержание в культуральной жидкости в опыте и контроле (питательная среда без добавок тестируемых веществ). Также оценивали влияние ловастатина на накопление АФВ1 в зерне пшеницы, зараженном A. flavus AF11. Проведенный скрининг позволил разделить исследуемые вещества на три группы. Добавление в среду культивирования (аминоэтил)тиофосфоновой кислоты, (аминометил)тиофосфоновой кислоты и алафосфалина приводило к существенному снижению продукции АФВ1, однако не влияло на пигментацию колоний. N-гидроксипутресцин и (1-аминоэтил)фосфоновая кислота частично или полностью блокировали биосинтез меланина и одновременно значительно увеличивали продукцию АФВ1. Ловастатин полностью подавлял биосинтез АФВ1 и меланина даже в низких концентрациях (0,0005 %). Следовательно, вещества из первой и второй группы препятствовали образованию АФВ1 и меланина на этапах после разветвления путей биосинтеза этих вторичных метаболитов, в то время как ловастатин либо действовал на стадии, предшествующей разветвлению, либо одновременно подавлял некоторые этапы биосинтеза каждого из них после точки расхождения. В результате проведенного исследования впервые была выявлена способность ловастатина эффективно блокировать биосинтез АФВ1, а также подавлять рост и развитие токсигенного гриба A. flavus. Показано, что обработка зерна пшеницы ловастатином в дозах 0,25 и 0,50 мг/г перед заражением токсиногенным изолятом A. flavus приводила к снижению накопления АФВ1 соответственно в 4 и 20 раз. Обнаруженные свойства ловастатина в сочетании с его нетоксичностью и возможностью высокопродуктивного микробиологического синтеза делают перспективными дальнейшую разработку препарата на основе этого природного соединения, применение которого позволит предотвращать контаминацию АФВ1 фуражного зерна и других кормов для сельскохозяйственных животных.

Еще

Афлатоксин в1, контаминация зерна афлатоксином в1, меланины грибов, поликетиды, ингибиторы биосинтеза, статины, аналоги природных аминокислот

Короткий адрес: https://sciup.org/142213961

IDR: 142213961   |   DOI: 10.15389/agrobiology.2016.4.533rus

Список литературы Некоторые природные и синтетические соединения, блокирующие биосинтез афлатоксина В1 и меланина у Aspergillus flavus

  • Sun X., Sun C., Zhang X., Zhang H., Ji J., Liu Y., Tang L. Aflatoxin B1 decontamination by UV-mutated live and immobilized Aspergillus niger. Food Control, 2016, 61: 235-242 ( ) DOI: 10.1016/j.foodcont.2015.09.017
  • Shcherbakova L.A., Statsyuk N.V., Mikityuk O.D., Nazarova T.A., Dzhavakhiya V.G. Aflatoxin B1 degradation by metabolites of Phoma glomerata PG41 isolated from natural substrate colonized by aflatoxigenic Aspergillus flavus. Jundishapur Journal of Microbiology, 2015, 8(1): e24324 ( ) DOI: 10.5812/jjm.24324
  • McLean M., Watt M.P., Berjak P., Dutton M.F. Aflatoxin B1 -its effects on an in vitro plant system. Food Additives & Contaminants, 1995, 12: 435-443 ( ) DOI: 10.1080/02652039509374327
  • Hasan H.A. Phytotoxicity of pathogenic fungi and their mycotoxins to cereal seedling viability. Mycopathologia, 1999, 14: 149-155 ( ) DOI: 10.1023/A:1007164617175
  • Cotty P.J. Virulence and cultural characteristics of two Aspergillus flavus strains pathogenic on cotton. Phytopathology, 1989, 79: 808-814 ( ) DOI: 10.1094/Phyto-79-808
  • Crawford J.M., Townsend C.A. New insights into the formation of fungal aromatic polyketides. Nat. Rev. Microbiol., 2010, 8: 879-889 ( ) DOI: 10.1038/nrmicro2465
  • Belozerskaya T.A., Gesser N.N., Averyanov A.A. Melanin pigments of fungi. In: Fungal methabolites/J.-M. Merillon, K.G. Ramawat (eds.). Springer International Publishing, 2016: 1-29 ( ) DOI: 10.1007/978-3-319-19456-1_29-1
  • Pihet M., Vandeputte P., Tronchin G., Renier G., Saulnier P., Georgeault S., Mallet R., Chabasse D., Symoens F., Bouchara J.P. Melanin is an essential component for the integrity of the cell wall of Aspergillus fumigatus conidia. BMC Microbiol., 2009, 9: 177 ( ) DOI: 10.1186/1471-2180-9-177
  • Eisenman C., Casadevall А. Synthesis and assembly of fungal melanin. Appl. Microbiol. Biotechnol., 2012, 93: 931-940 ( ) DOI: 10.1007/s00253-011-3777-2
  • Pal A.K., Gajjar D.U., Vasavada A.R. DOPA and DHN pathway orchestrate melanin synthesis in Aspergillus species. Med. Mycol., 2014, 52: 10-18 ( ) DOI: 10.3109/13693786.2013.826879
  • Hamada T., Asanagi M., Satozawa T., Araki N., Banba S., Higashimura N., Akase T., Hirase K. Action mechanism of the novel rice blast fungicide tolprocarb distinct from that of conventional melanin biosynthesis inhibitors. J. Pestic. Sci., 2014, 39(3): 152-158 ( ) DOI: 10.1584/jpestics.D14-033
  • Takagaki M. Melanin biosynthesis inhibitors. In: Fungicide resistance in plant pathogens: principles and a guide to practical management/H. Ishii, D.W. Hollomon (eds.). Springer, 2015: 145-168 ( ) DOI: 10.1007/978-4-431-55642-8_11
  • Джавахия В.Г., Аверьянов А.А., Минаев В.И., Ермолинский Б.С., Воинова Т.М., Лапикова В.П., Петелина Г.Г., Вавилова Н.А. Структура и функции меланина клеточной стенки микромицета Pyricularia oryza Сav. - возбудителя пирикуляриоза риса. Журнал общей биологии, 1990, 51(4): 528-535.
  • Лапикова В.П., Джавахия В.Г. Ранние стадии развития Pyricularia oryzae Cav. на листьях риса. Микология и фитопатология, 1987, 21(4): 358-365.
  • Cary J.W., Harris-Coward P.Y., Ehrlich K.C., Di Mavungu J.D., Malysheva S.V., De Saeger S., Dowd P.F., Shantappa S., Martens S.L., Calvo A.M. Functional characterization of a veA-dependent polyketide synthase gene in Aspergillus flavus necessary for the synthesis of asparasone, a sclerotium-specific pigment. Fungal Genet. Biol., 2014, 64: 25-35 ( ) DOI: 10.1016/j.fgb.2014.01.001
  • Townsend C.A., Christensen S.B., Trautwein K. Hexanoate as a starter unit in polyketide biosynthesis. J. Am. Chem. Soc., 1984, 106: 3868-3869 ( ) DOI: 10.1021/ja00325a031
  • Butler M.J., Day A.W. Fungal melanins: a review. Can. J. Microbiol., 1998, 44: 1115-1136 ( ) DOI: 10.1139/w98-119
  • Хомутов Р.М., Джавахия В.Г., Хурс Е.Н., Осипова Т.И., Щербакова Л.А., Жемчужина Н.С., Микитюк О.Д., Назарова Т.А. Химическое регулирование биосинтеза микотоксинов. Доклады академии наук, 2011, 436(4): 559-562 ( ) DOI: 10.1134/S1607672911010078
  • Yu J., Ehrlich K.C. Aflatoxin biosynthetic pathway and pathway genes. In: Aflatoxins -biochemistry and molecular biology/R.G. Guevara-Gonzalez (ed.). InTech, Rijeka, 2011: 41-66 ( ) DOI: 10.5772/23034
  • Джавахия В.В., Петелина Г.Г. Влияние ловастатина на фитопатогенные грибы. Агро XXI, 2008, 4-6: 33-35.
  • Dzhavakhiya V.V., Voinova T.M. Optimization of fermentation conditions for high lovastatin producing mutant 45-50 of fungus Aspergillus terreus. In: Biotechnology and industry/G.E. Zaikov (ed.). NY, Nova Science Publisher Inc., 2004: 81-87.
  • Payne G.A., Hagler W.M. Effect of specific amino acids on growth and aflatoxin production by Aspergillius parasiticus and Aspergillius flavus in defined media. Appl. Environ. Microbiol., 1983, 46(4): 805-812.
  • Zhou W., Hu L.B., Zhao Y., Wang M.Y., Zhang H., Mo H.Z. Inhibition of fungal aflatoxin B1 biosynthesis by diverse botanically-derived polyphenols. Trop. J. Pharm. Res., 2015, 14(4): 605-609 ( ) DOI: 10.4314/tjpr.v14i4.7
  • Holmes R.A., Boston R.S., Gary A., Payne G.A. Diverse inhibitors of aflatoxin biosynthesis. Appl. Microbiol. Biotechnol., 2008, 78: 559-572 ( ) DOI: 10.1007/s00253-008-1362-0
  • Shaaban M.T., El-Sabbagh S.M.M., Alam A. Studies on an actinomycete producing a melanin pigment inhibiting aflatoxin B1 production by Aspergillus flavus. Life Sci. J., 2013, 10(1): 1437-1448 ( ) DOI: 10.7537/marslsj100113.214
  • Sakuda S., Prabowo D.F., Takagi K., Shiomi K., Mori M., Omura S., Nagasawa H. Inhibitory effects of respiration inhibitors on aflatoxin production. Toxins, 2014, 6: 1193-1200 ( ) DOI: 10.3390/toxins6041193
  • Wheeler М.Н., Bhatnagar D., Rojas M.G. Chlobenthiazone and tricyclazole inhibition of aflatoxin biosynthesis by Aspergillus flavus. Pestic. Biochem. Physiol., 1989, 35: 315-323 ( ) DOI: 10.1016/0048-3575(89)90092-8
  • Wolin M.J., Miller T.L. Control of rumen methanogenesis by inhibiting the growth and activity of methanogens with hydroxymethylglutaryl-SCoA inhibitors. International Congress Series, 2006, 1293: 131-137 ( ) DOI: 10.1016/j.ics.2006.01.031
  • Mori A.V., Mendonca C.X., Watanabe C. Effects of cholestyramine and lovastatin upon plasma lipids and egg yolk cholesterol levels of laying hens. Brazilian Journal of Veterinary Research and Animal Science, 2000, 37(1): 84-89 ( ) DOI: 10.1590/S1413-95962000000100015
  • Kim J.H., Hong S.T., Lee H.S., Kim H.J. Oral administration of pravastatin reduces egg cholesterol but not plasma cholesterol in laying hens. Poultry Sci., 2004, 83: 1539-1543 ( ) DOI: 10.1093/ps/83.9.1539
Еще
Статья научная