Обмен веществ и репродуктивная функция в послеродовой период у коров-первотелок при введении им экстракта плаценты

Автор: Митяшова О.С., Гусев И.В., Лебедева И.Ю.

Журнал: Сельскохозяйственная биология @agrobiology

Рубрика: Физиология и патофизиология репродукции

Статья в выпуске: 2 т.52, 2017 года.

Бесплатный доступ

Большинство репродуктивных нарушений у коров молочных пород связано с состоянием обмена веществ после отела. Одним из подходов к нормализации воспроизводительной функции служит использование биостимуляторов, которые оказывают модулирующее действие на иммунную, метаболическую и эндокринную системы. Целью представленной работы было изучение влияния экстракта плаценты крупного рогатого скота на метаболическую адаптацию и функционирование репродуктивной системы в послеродовой период у коров-первотелок. Мы впервые провели мониторинг показателей обмена веществ и стероидогенной активности яичников у коров-первотелок, обработанных экстрактом плаценты, в течение транзитного периода и через 2 мес после отела, а также оценили показатели воспроизводства. Сырьем для изготовления препарата служил послед, отделившийся в течение 4-6 ч после отела. Экстракт из плаценты выделяли в соответствии с методикой, описанной ранее (М.В. Вареников с соавт., 2010), с модификациями. Влияние экстракта оценивали на коровах-первотелках черно-пестрой породы (Bos taurus taurus) на базе ЗАО ПЗ «Барыбино» (Домодедовский р-н, Московская обл.) в 2015-2016 годах. За 7-14 сут до отела и на дату отела животным I группы (контроль, n = 8) вводили физиологический раствор, коровам II группы (опыт, n = 11) - 20 мл экстракта плаценты. Перед обработкой, на 3-и-5-е, 20-25-е и 50-60-е сут после отела у животных брали кровь для биохимического и иммуноферментного анализов. В пробах сыворотки крови измеряли концентрацию общего белка и его фракций, мочевины, билирубина, холестерина, кальция, фосфора, активность ферментов аспартатаминотрансферазы (АсАТ, ЕC 2.6.1.1) и аланинаминотрансферазы (АлАТ, ЕC 2.6.1.2), содержание эстрадиола-1β и прогестерона. Через 12 мес после отела, проанализировав данные зоотехнического и племенного учета, определяли показатели воспроизводства в обеих группах коров (доля стельных животных, сервис-период, индекс осеменения) и удой за 305 сут лактации. Повышение (p

Еще

Коровы-первотелки, экстракт плаценты, обмен веществ, овариальные стероидные гормоны, репродуктивная способность

Короткий адрес: https://sciup.org/142214031

IDR: 142214031   |   DOI: 10.15389/agrobiology.2017.2.323rus

Список литературы Обмен веществ и репродуктивная функция в послеродовой период у коров-первотелок при введении им экстракта плаценты

  • Chagas L.M., Bass J.J., Blache D., Burke C.R., Kay J.K., Lindsay D.R., Lucy M.C., Martin G.B., Meier S., Rhodes F.M., Roche J.R., Thatcher W.W., Webb R. Invited review: New perspectives on the roles of nutrition and metabolic priorities in the subfertility of high-producing dairy cows. J. Dairy Sci., 2007, 90(9): 4022-4032 ( ) DOI: 10.3168/jds.2006-852
  • Лягин Ф.Ф. Особенности воспроизводительных качеств высокопродуктивных коров. Зоотехния, 2003, 5: 25-27. Режим доступа: http://elibrary.ru/item.asp?id=9125091. Без даты.
  • Dobson H., Smith R.F., Royal M.D., Knight Ch., Sheldon I. The high producing dairy cow and its reproductive performance. Reprod. Domest. Anim., 2007, 42(2): 17-23 ( ) DOI: 10.1111/j.1439-0531.2007.00906.x
  • Brickell J.S., Wathes D.C. A descriptive study of the survival of Holstein-Friesian heifers through to third calving on English dairy farms. J. Dairy Sci., 2011, 94(4): 1831-1838 ( ) DOI: 10.3168/JDS.2010-3710
  • Wu J.J., Wathes D.C., Brickell J.S., Yang L.G., Cheng Z., Zhao H.Q., Xu Y.J., Zhang S.J. Reproductive performances and survival of Chinese Holstein dairy cows in central China. Anim. Prod. Sci., 2012, 52(1): 11-19 ( ) DOI: 10.1071/AN11146
  • Wathes D.C. Mechanisms linking metabolic status and disease with reproductive outcome in the dairy cow. Reprod. Domest. Anim., 2012, 47(4): 304-312 ( ) DOI: 10.1111/j.1439-0531.2012.02090.x
  • Wathes D.C., Clempson A.M., Pollott G.E. Associations between lipid metabolism and fertility in the dairy cow. Reprod. Fertil. Dev., 2012, 25: 48-61 ( ) DOI: 10.1071/RD12272
  • Van Knegsel A.T.M., van den Brand H., Dijkstra J., Tamminga S., Kemp B. Effect of dietary energy source on energy balance, production, metabolic disorders and reproduction in lactating dairy cattle. Reprod. Nutr. Dev., 2005, 45(6): 665-688 ( ) DOI: 10.1051/rnd:2005059
  • Лебедев В.А., Лебедева И.Ю., Кузьмина Т.И., Шапиев И.Ш. Роль метаболических гормонов в регуляции функции яичников у коров. Сельскохозяйственная биология, 2005, 2: 14-22.
  • Ettema J.F., Santos J.E. Impact of age at calving on lactation, reproduction, health, and income in first-parity Holsteins on commercial farms. J. Dairy Sci., 2004, 87: 2730-2742 ( ) DOI: 10.3168/jds.S0022-0302(04)73400-1
  • Xu Z.Z., Burton L.J., McDougall S., Jolly P.D. Treatment of noncyclic lactating dairy cows with progesterone and estradiol or with progesterone, GnRH, prostaglandin F2 alpha, and estradiol. J. Dairy Sci., 2000, 83(3): 464-470 ( ) DOI: 10.3168/jds.S0022-0302(00)74904-6
  • Bhoraniya H.L., Dhami A.J., Naikoo M., Parmar B.C., Sarvaiya N.P. Effect of estrus synchronization protocols on plasma progesterone profile and fertility in postpartum anestrous Kankrej cows. Trop. Anim. Health Prod., 2012, 44(6): 1191-1197 ( ) DOI: 10.1007/s11250-011-0057-1
  • Пальчиков М.Ю. Бионормализующее действие препаратов из плаценты человека при ранней стимуляции половой цикличности у коров. Канд. дис. Белгород, 2005.
  • Гизатуллин P.P. Гигиеническое обоснование коррекции естественной резистентности организма телят биологическим стимулятором «Биостим». Канд. дис. Уфа, 2001.
  • Лободин К.А., Нежданов А.Г., Бузлама В.С. Лигфол для коррекции воспроизводительной функции коров. Ветеринария, 2006, 3: 39-44. Режим доступа: http://elibrary.ru/item.asp?id=9242703. Без даты.
  • Blank M.S., Friesen H.G. Effects of placentophagy on serum prolactin and progesterone concentrations in rats after parturition or superovulation. J. Reprod. Fertil., 1980, 60(2): 273-278 ( ) DOI: 10.1530/jrf.0.0600273
  • Wu C.H., Chang G.Y., Chang W.C., Hsu C.T., Chen R.S. Wound healing effects of porcine placental extracts on rats with thermal injury. Br. J. Dermatol., 2003, 148(2): 236-245 ( ) DOI: 10.1046/j.1365-2133.2003.05164.x
  • Hong J.W., Lee W.J., Hahn S.B., Kim B.J., Lew D.H. The effect of human placenta extract in a wound healing model. Ann. Plast. Surg., 2010, 65(1): 96-100 ( ) DOI: 10.1097/SAP.0b013e3181b0bb67
  • Park S.Y., Phark S., Lee M., Lim J.Y., Sul D. Anti-oxidative and anti inflammatory activities of Placental extracts in benzo pyrene-exposed rats. Placenta, 2010, 31(10): 873-879 ( ) DOI: 10.1016/j.placenta.2010.07.010
  • Митяшова О.С. Стимулирующее действие экстракта плаценты коров на рост и развитие репродуктивных органов у самок лабораторных крыс. В сб.: Биология -наука XXI века. Пущино, 2015: 353-354. Режим доступа: http://www.psn.ru/biology21/Page354.pdf. Без даты.
  • Cotor G., Pop А., Ghita М. The effect of ovine placenta extract on mammogenesis, lactogenesis, and galactopoiesis in sheep. Turk. J. Vet. Anim. Sci., 2011, 35: 137-142.
  • Лободин К.А. Плацента активное начало -препарат для коррекции воспроизводительной функции коров. Ветеринария, 2006, 7: 38-42. Режим доступа: http://elibra-ry.ru/item.asp?id=9242726. Без даты.
  • Корниенко В.С. Лекарственный препарат бан. А.с. 2140275 (РФ) МКИ3 А61К35/12, А61К35/50. Филиал N 5 ГНЦ-Институт биофизики ФУ «Медбиоэкстрем» при МЗ России. ¹ 98110825/13. Заявл. 04.06.98. Опубл. 27.10.99.
  • Вареников М.В., Чомаев А.М., Артюх В.М., Прытков Ю.А., Лиэпа В.Л. Способ получения биостимулятора из плаценты коров. А.С. 2377999 (РФ) МКИ3 А61К35/50. Всероссийский государственный научно-исследовательский институт животноводства (ВИЖ). № 2007143944/13. Заявл. 29.11.07. Опубл. 10.01.10.
  • Лиэпа В.Л. Влияние применения Плацентина-А в сочетании с биологически активными веществами на сроки инволюции матки у коров. Автореф. канд. дис. Дубровицы, 2011.
  • Zebeli Q., Ghareeb K., Humer E., Metzler-Zebeli B.U., Besenfelder U. Nutrition, rumen health and inflammation in the transition period and their role on overall health and fertility in dairy cows. Res. Vet. Sci., 2015, 103: 126-136 ( ) DOI: 10.1016/j.rvsc.2015.09.020
  • Dhami A.J., Nakrani B.B., Hadiya K.K., Patel J.A., Shah R.G. Comparative efficacy of different estrus synchronization protocols on estrus induction response, fertility and plasma progesterone and biochemical profile in crossbred anestrus cows. Vet. World, 2015, 8(11): 1310-1316 ( ) DOI: 10.14202/vetworld.2015.1310-1316
  • Reist M., Erdin D.K., von Euw D., Tschümperlin K.M., Leuenberger H., Hammon H.M., Morel C., Philipona C., Zbinden Y., Künzi N., Blum J.W. Postpartum reproductive function: association with energy, metabolic and endocrine status in high yielding dairy cows. Theriogenology, 2003, 59(8): 1707-1723 ( ) DOI: 10.1016/S0093-691X(02)01238-4
  • Shin E.K., Jeong J.K., Choi I.S., Kang H.G., Hur T.Y., Jung Y.H., Kim I.H. Relationships among ketosis, serum metabolites, body condition, and reproductive outcomes in dairy cows. Theriogenology, 2015, 84: 252-260 ( ) DOI: 10.1016/j.theriogenology.2015.03.014
  • Hawkins D.E., Niswender K.D., Oss G.M., Moeller C.L., Odde K.G., Sawyer H.R., Niswender G.D. An increase in serum lipids increases luteal lipid content and alters the disappearance rate of progesterone in cows. J. Anim. Sci., 1995, 73(2): 541-545 ( ) DOI: 10.2527/1995.732541x
Еще
Статья научная