Оценка материнской изменчивости российских локальных пород овец на основе анализа полиморфизма гена цитохрома B

Автор: Кошкина О.А., Денискова Т.Е., Доцев А.В., Kunz E., Upadhyay M., Krebs S., Соловьева А.Д., Medugorac I., Зиновьева Н.А.

Журнал: Сельскохозяйственная биология @agrobiology

Рубрика: Структура генома и геномные технологии

Статья в выпуске: 6 т.56, 2021 года.

Бесплатный доступ

Исследование полиморфизма митохондриальной ДНК (мтДНК) - это один из эффективных современных подходов к оценке генетического разнообразия сельскохозяйственных животных. У овец ( Ovis aries ) секвенирование мтДНК служит наиболее эффективным подходом для определения гаплогрупп мтДНК. Несмотря на то, что за рубежом он широко применяется, системного и всестороннего исследования российских пород овец с его помощью до сих пор не проводили. В настоящей работе впервые установлена принадлежность овец 25 российских пород к гаплогруппам и показаны гаплотипические связи между грубошерстными, тонкорунными и полутонкорунными породами на основе анализа полиморфизма последовательностей митохондриального гена CytB . Дана характеристика материнской изменчивости локальных пород овец в сравнении с трансграничными. Нашей целью было изучение генетического разнообразия и определение гаплотипической изменчивости и гаплогрупповой принадлежности российских локальных пород овец на основе последовательностей гена СytB . Исследования 25 российских пород овец проводили в 2020-2021 годах. Образцы ткани (ушной выщип) были взяты из биоколлекции «Банк генетического материала домашних и диких видов животных и птицы» (зарегистрирован Минобрнауки РФ № 498808), созданной и поддерживаемой в ФГБНУ ФИЦ животноводства - ВИЖ им. академика Л.К. Эрнста. Итоговая выборка для исследования включала девять тонкорунных пород: забайкальскую ( n = 3), дагестанскую горную ( n = 4), грозненскую ( n = 5), кулундинскую ( n = 5), манычского мериноса ( n = 5), сальскую ( n =5), советского мериноса ( n = 3), ставропольскую ( n = 5) и волгоградскую ( n = 5); пять полутонкорунных пород: горноалтайскую ( n = 5), куйбышевскую ( n = 1), северокавказскую ( n = 5), русскую длинношерстную ( n = 3) и цигайскую ( n = 2); одиннадцать грубошерстных пород: романовскую ( n = 3), андийскую черную ( n = 5), буубей ( n = 5), каракульскую ( n = 3), карачаевскую ( n = 5), кучугуровскую ( n = 3), лезгинскую ( n = 5), тушинскую ( n = 5), тувинскую короткожирнохвостую ( n = 4), эдильбаевскую ( n = 5) и калмыцкую ( n = 5). Полные последовательности гена CytB изучаемых пород овец определяли с использованием технологии секвенирования следующего поколения (next generation sequencing, NGS). Для этого были амплифицированы три перекрывающихся фрагмента мтДНК (область перекрытия более 290 п.н.) длиной 6500, 5700 и 6700 п.н. Полученные продукты полимеразной цепной реакции (ПЦР) использовали для подготовки библиотек, которые затем секвенировали методом парных концевых прочтений по 300 п.н. на приборе MiSeq («Illumina, Inc.», США). Последовательность гена СytB была восстановлена из полной последовательности мтДНК после ее выравнивания, выполненного с использованием MUSCLE алгоритма в программном обеспечении MEGA 7.0.26. Все изучаемые породы характеризовались высоким гаплотипическим (HD = 0,400-1,000) и нуклеотидным разнообразием (p = 0,00058-0,00760). В общей сложности идентифицировали 82 гаплотипа, при этом тувинская порода овец была представлена только одним. Анализ результатов AMOVA показал, что генетическое разнообразие в основном определяло внутрипородные различия (90,55 %). Были выявлены четыре гаплогруппы овец, включая A, B, C и D, что объясняется широким ареалом исследуемых животных. Наиболее распространенными среди локальных российских пород овец оказались гаплогруппы В ( n = 64) и А ( n = 34), характерные для овец европейского и азиатского происхождения. Всего 7 животных было отнесено к гаплогруппе С, а гаплогруппа D оказалась представлена одним животным. Полученные результаты внесут важный вклад в более глубокое понимание процессов миграции и расселения домашних овец на территории Евразии.

Еще

Домашние овцы, митохондриальная днк, ген цитохрома b, гаплогруппы, гаплотипы

Короткий адрес: https://sciup.org/142231904

IDR: 142231904   |   DOI: 10.15389/agrobiology.2021.6.1134rus

Список литературы Оценка материнской изменчивости российских локальных пород овец на основе анализа полиморфизма гена цитохрома B

  • Chessa B., Pereira F., Arnaud F., Amorim A., Goyache F., Mainland I., Kao R.R., Pember-ton J.M., Beraldi D., Stear M.J., Alberti A., Pittau M., Iannuzzi L., Banabazi M.H., Kazwala R.R., Zhang Y.P., Arranz J.J., Ali B.A., Wang Z., Uzun M., Dione M.M., Olsaker I., Holm L.E., Saarma U., Ahmad S., Marzanov N., Eythorsdottir E., Holland M.J., Ajmone-Mar-san P., Bruford M.W., Kantanen J., Spencer T.E., Palmarini M. Revealing the history of sheep domestication using retrovirus integrations. Science, 2009, 324(5926): 532-536 (doi: 10.1126/sci-ence.1170587).
  • Zeder M.A. Domestication and early agriculture in the Mediterranean Basin: origins, diffusion, and impact. Proceedings of the National Academy of Sciences, 2008, 105(33): 11597-11604 (doi: 10.1073/pnas.0801317105).
  • Diamond J. Evolution, consequences and future of plant and animal domestication. Nature, 2002, 418(6898): 700-707 (doi: 10.1038/nature01019).
  • Sheriff O., Alemayehu K. Genetic diversity studies using microsatellite markers and their contri-bution in supporting sustainable sheep breeding programs: a review. Cogent Food & Agriculture, 2018, 4(1): 1459062 (doi: 10.1080/23311932.2018.1459062).
  • Zhong Y., Tang Z., Huang L., Wang D., Lu Z. Genetic diversity of Procambarus clarkii popula-tions based on mitochondrial DNA and microsatellite markers in different areas of Guangxi, China. Mitochondrial DNA. Part A, 2020, 31(2): 48-56 (doi: 10.1080/24701394.2020.1721484).
  • FAO. The state of food and agriculture: climate change, agriculture, and food security. Food and Agriculture Organization of the United Nations, Rome, 2016.
  • Wei C., Wang H., Liu G., Wu M., Cao J., Liu Z., Liu R., Zhao F., Zhang L., Lu J., Liu C., Du L. Genome-wide analysis reveals population structure and selection in Chinese indigenous sheep breeds. BMC Genomics, 2015, 16(1): 194 (doi: 10.1186/s12864-015-1384-9).
  • Wang H., Zhang L., Cao J., Wu M., Ma X., Liu Z., Liu R., Zhao F., Wei C., Du L. Genome-wide specific selection in three domestic sheep breeds. PLoS ONE, 2015, 10(6): e0128688. (doi: 10.1371/journal.pone.0128688).
  • Fariello M.-I., Servin B., Tosser-Klopp G., Rupp R., Moreno C., International Sheep Genomics Consortium, San Cristobal M., Boitard S. Selection signatures in worldwide sheep popula-tions. PLoS ONE, 2014, 9(8): e103813 (doi: 10.1371/journal.pone.0103813).
  • Денискова Т.Е., Доцев А.В., Форнара М.С., Сермягин А.А., Reyer H., Wimmers К., Brem G., Зиновьева Н.А. Геномная архитектура российской популяции зааненских коз в аспекте генофонда породы из пяти стран мира. Сельскохозяйственная биология, 2020, 55(2): 285-294 (doi: 10.15389/agrobiology.2020.2.285rus).
  • Костюнина О.В., Абдельманова А.С., Мартынова Е.У., Зиновьева Н.А. Поиск геномных областей, несущих летальные рецессивные варианты у свиней породы дюрок. Сельскохо-зяйственная биология, 2020, 55(2): 275-284 (doi: 10.15389/agrobiology.2020.2.275rus).
  • Сулимова Г.Е., Столповский Ю.А., Рузина М.Н., Захаров-Гезехус И.А. Мониторинг генофондов популяций животных в связи с задачами селекции и изучения филогении. В сб.: Биоразнообразие и динамика генофондов. М., 2008: 211-214.
  • Qiao G., Zhang H., Zhu S., Yuan C., Zhao H., Han M., Yue Y., Yang B. The complete mito-chondrial genome sequence and phylogenetic analysis of Alpine Merino sheep (Ovis aries). Mito-chondrial DNA. Part B, Resources, 2020, 5(1): 990-991 (doi: 10.1080/23802359.2020.1720536).
  • Doyle J.J., Gaut B.S. Evolution of genes and taxa: a primer. Plant Molecular Biology, 2000, 42(1): 1-23.
  • Knowlton N., Weigt L. New dates and new rates for divergence across the Isthmus of Panama. Proceedings of the Royal Society of London. Series B: Biological Sciences, 1998, 265: 2257-2263 (doi: 10.1098/rspb.1998.0568).
  • Cox A.J., Hebert P.D. Colonization, extinction, and phylogeographic patterning in a freshwater crustacean. Molecular Ecology, 2001, 10(2): 371-386 (doi: 10.1046/j.1365-294x.2001.01188.x).
  • Wares J.P., Cunningham C.W. Phylogeography and historical ecology of the North Atlantic in-tertidal. Evolution, 2001, 55(12): 2455-2469 (doi: 10.1111/j.0014-3820.2001.tb00760.x).
  • Guo J., Du L.-X., Ma Y.-H., Guan W.-J., Li H.-B., Zhao Q.-J., Li X., Rao S.-Q. A novel maternal lineage revealed in sheep (Ovis aries). Animal Genetics, 2005, 36(4): 331-336 (doi: 10.1111/j.1365-2052.2005.01310.x).
  • Wood N.J., Phua S.H. Variation in the control region sequence of the sheep mitochondrial genome. Animal Genetics, 1996, 27(1): 25-33 (doi: 10.1111/j.1365-2052.1996.tb01173.x).
  • Hiendleder S., Mainz K., Plante Y., Lewalski H. Analysis of mitochondrial DNA indicates that domestic sheep are derived from two different ancestral maternal sources: no evidence for contri-butions from urial and argali sheep. The Journal of Heredity, 1998, 89(2): 113-120 (doi: 10.1093/jhered/89.2.113).
  • Pedrosa S., Uzun M., Arranz J.J., Gutiérrez-Gil B., San Primitivo F., Bayón Y. Evidence of three maternal lineages in Near Eastern sheep supporting multiple domestication events. Proceedings of the Royal Society B: Biological Sciences, 2005, 272(1577): 2211-2217 (doi: 10.1098/rspb.2005.3204).
  • Pereira F., Davis S.J., Pereira L., McEvoy B., Bradley D.G., Amorim A. Genetic signatures of a Mediterranean influence in Iberian Peninsula sheep husbandry. Molecular Biology and Evolution, 2006, 23(7): 1420-1426 (doi: 10.1093/molbev/msl007).
  • Tapio M., Marzanov N., Ozerov M., Cinkulov M., Gonzarenko G., Kiselyova T., Murawski M., Viinalass H., Kantanen J. Sheep mitochondrial DNA variation in European, Caucasian, and Central Asian areas. Molecular Biology and Evolution, 2006, 23(9): 1776-1783 (doi: 10.1093/mol-bev/msl043).
  • Meadows J.R., Cemal I., Karaca O., Gootwine E., Kijas J.W. Five ovine mitochondrial lineages identified from sheep breeds of the near East. Genetics, 2007, 175(3): 1371-1379 (doi: 10.1534/ge-netics.106.068353).
  • Meadows J.R., Hiendleder S., Kijas J.W. Haplogroup relationships between domestic and wild sheep resolved using a mitogenome panel. Heredity, 2011, 106(4): 700-706 (doi: 10.1038/hdy.2010.122).
  • Meadows J.R., Li K., Kantanen J., Tapio M., Sipos W., Pardeshi V., Gupta V., Calvo J.H., Whan V., Norris B., Kijas J.W. Mitochondrial sequence reveals high levels of gene flow between breeds of domestic sheep from Asia and Europe. The Journal of Heredity, 2005, 96(5): 494-501 (doi: 10.1093/jhered/esi100).
  • Lv F.-H., Peng W.-F., Yang J., Zhao Y.-X., Li W.-R., Liu M.-J., Ma Y.-H., Zhao Q.-J., Yang G.-L., Wang F., Li J.-Q., Liu Y.-G., Shen Z.-Q., Zhao S.-G., Hehua E., Gorkhali N.A., Farhad Vahidi S.M., Muladno M., Naqvi A.N., Tabell J., Iso-Touru T., Bruford M.-W., Kan-tanen J., Han J.-L., Li M.-H. Mitogenomic meta-analysis identifies two phases of migration in the history of eastern Eurasian sheep. Molecular Biology and Evolution, 2015, 32(10): 2515-2533 (doi: 10.1093/molbev/msv139).
  • Pardeshi V.C., Kadoo N.Y., Sainani M.N., Meadows J.R., Kijas J.W., Gupta V.S. Mitochondrial haplotypes reveal a strong genetic structure for three Indian sheep breeds. Animal Genetics, 2007, 38(5): 460-466 (doi: 10.1111/j.1365-2052.2007.01636.x).
  • Zhao E., Yu Q., Zhang N., Kong D., Zhao Y. Mitochondrial DNA diversity and the origin of Chinese indigenous sheep. Tropical Animal Health and Production, 2013, 45(8): 1715-1722 (doi: 10.1007/s11250-013-0420-5).
  • Zeder M.A. Domestication and early agriculture in the Mediterranean Basin: Origins, diffusion, and impact. Proceedings of the National Academy of Sciences, 2008, 105(33): 11597-11604 (doi: 10.1073/pnas.0801317105).
  • Liu J., Lu Z., Yuan C., Wang F., Yang B. Phylogeography and phylogenetic evolution in Tibetan sheep based on MT-CYB sequences. Animals, 2020, 10(7): 117 (doi: 10.3390/ani10071177).
  • Ульянов А.Н., Куликова А.Я. Состояние и резервы породного генофонда овцеводства Рос-сии. Овцы, козы, шерстяное дело, 2012, 1: 4-11.
  • Абонеев В.В. Стратегия развития овцеводства в Российской Федерации. Достижения науки и техники в АПК, 2008, 10: 37-39.
  • Ерохин А.И., Карасев Е.А., Ерохин С.А. Состояние, динамка и тенденции в развитии овцеводства в мире и в России. Овцы, козы, шерстяное дело, 2019, 3: 3-6.
  • Абонеев В.В., Колосов Ю.А. О проблемах сохранения племенных ресурсов овцеводства России. Овцы, козы, шерстяное дело, 2020, 1: 43-46.
  • Селионова М.И Сохранение и рациональное использование генетических ресурсов овец и коз. Животноводство и кормопроизводство, 2019, 102(4): 272-276.
  • Lescheva M., Ivolga A. Current state and perspectives of sheep breeding development in Russian modern economic condition. Economics of Agriculture, 2015, 2(62): 467-480.
  • Дунин И.М., Сафина Г.Ф., Чернов В.В., Григорян Л.Н., Хататаев С.А., Хмелевская Г.Н., Степанова Н.Г., Павлов М.Б. Состояние овцеводства России и его племенных ресурсов. В сб.: Ежегодник по племенной работе в овцеводстве и козоводстве в хозяйствах российской федерации (2019 год). М., 2020: 3-14.
  • Эрнст Л.К., Дмитриев Н.Г., Паронян И.А. Генетические ресурсы сельскохозяйственных животных в России и сопредельных странах. СПб, 1994.
  • Edgar R.C. MUSCLE: multiple sequence alignment with high accuracy and high throughput. Nu-cleic Acids Research, 2004, 32(5): 1792-1797 (doi: 10.1093/nar/gkh340).
  • Kumar S., Stecher G., Tamura K. MEGA7: Molecular evolutionary genetics analysis version 7.0 for bigger datasets. Molecular Biology and Evolution, 2016, 33(7): 1870-1874 (doi: 10.1093/mol-bev/msw054).
  • Bandelt H.J., Forster P., Röhl A. Median-joining networks for inferring intraspecific phylogenies. Molecular Biology and Evolution, 1999, 16(1): 37-48 (doi: 10.1093/oxfordjournals.mol-bev.a026036).
  • Leigh J.W., Bryant D. Popart: Full-feature software for haplotype network construction. Methods in Ecology and Evolution, 2015, 6(9): 1110-1116 (doi: 10.1111/2041-210X.12410).
  • Lanfear R., Frandsen P.B., Wright A.M., Senfeld T., Calcott B. PartitionFinder 2: new methods for selecting partitioned models of evolution for molecular and morphological phylogenetic anal-yses. Molecular Biology and Evolution, 2017, 34(3): 772-773 (doi: 10.1093/molbev/msw260).
  • Akaike H. A new look at the statistical model identification. IEEE Trans Auto Control, 1974, 19(6): 716-723 (doi: 10.1109/TAC.1974.1100705).
  • Excoffier L., Lischer H.E. Arlequin suite ver 3.5: a new series of programs to perform population genetics analyses under Linux and Windows. Molecular Ecology Resources, 2010, 10(3): 564-567 (doi: 10.1111/j.1755-0998.2010.02847.x).
  • Ronquist F., Teslenko M., van der Mark P., Ayres D.L., Darling A., Höhna S., Larget B., Liu L., Suchard M.A., Huelsenbeck J.P. MrBayes 3.2: efficient Bayesian phylogenetic inference and model choice across a large model space. Systematic Biology, 2012, 61(3): 539-542 (doi: 10.1093/sysbio/sys029).
  • Molecular evolution, phylogenetics and epidemiology. Режим доступа: http://tree.bio.ed.ac.uk/soft-ware/figtree. Дата обращения: 30.07.2021.
  • Dotsev A.V., Kunz E., Shakhin A.V., Petrov S.N., Kostyunina O.V., Okhlopkov I.M., Denis-kova T.E., Barbato M., Bagirov V.A., Medvedev D.G., Krebs S., Brem G., Medugorac I., Zi-novieva N.A. The first complete mitochondrial genomes of snow sheep (Ovis nivicola) and thin-horn sheep (Ovis dalli) and their phylogenetic implications for the genus Ovis. Mitochondrial DNA Part B, 2019, 4(1): 1332-1333 (doi: 10.1080/23802359.2018.1535849).
  • Rozas J., Ferrer-Mata A., Sánchez-DelBarrio J.C., Guirao-Rico S., Librado P., Ramos-On-sins S.E., Sánchez-Gracia A. DnaSP 6: DNA sequence polymorphism analysis of large data sets Molecular Biology and Evolution, 2017, 34: 3299-3302 (doi: 10.1093/molbev/msx248).
  • Deniskova T.E., Abelmanova A.S., Dotsev A.V., Sambu-Khoo Ch.S., Reyer H., Selionova M.I., Fornara M.S., Wimmers K., Brem G., Zinovieva N.A. PSX-18 High-density genomic description of Russian native sheep breed of the Republic of Tyva. Journal of Animal Science, 2020, 98(4): 453-454 (doi: 10.1093/jas/skaa278.789).
  • Денискова Т.Е., Селионова М.И., Гладырь Е.А., Доцев А.В., Бобрышова Г.Т., Костю-нина О.В., Брем Г., Зиновьева Н.А. Изменчивость микросателлитов в породах овец, разводимых в России. Сельскохозяйственная биология, 2016, 51(6): 801-810 (doi: 10.15389/agrobiology.2016.6.801rus).
  • Kandoussi A., Boujenane I., Auger C., Serranito B., Germot A., Piro M., Maftah A., Badaoui B., Petit D. The origin of sheep settlement in Western Mediterranean. Scientific Reports, 2020, 10(1): 10225 (doi: 10.1038/s41598-020-67246-5).
  • Alonso R.A., Ulloa-Arvizu R., Gayosso-Vázquez A. Mitochondrial DNA sequence analysis of the Mexican Creole sheep (Ovis aries) reveals a narrow Iberian maternal origin. Mitochondrial DNA. Part A, 2017, 28(6): 793-800 (doi: 10.1080/24701394.2016.1192613).
  • Oliveira J.A., Egito A.A.D., Crispim B.D.A., Vargas Junior F.M., Seno L.O., Barufatti A. Im-portance of naturalized breeds as a base for the formation of exotic sheep (Ovis aries) breeds in tropical altitude regions. Genetics and Molecular Biology, 2020, 43(2): e20190054 (doi: 10.1590/1678-4685-GMB-2019-0054).
Еще
Статья научная