Оценка оригинального герметизирующего покрытия с антибактериальным эффектом для синтетических сосудистых протезов
Автор: Шаданов Алдар Андреевич, Журавлева И.Ю., Самойлова Л.М., Тимченко Т.П., Владимиров С.В., Карпова Е.В., Лучников Н.Е., Сирота Д.А., Едемский А.Г., Богачев-прокофьев А.В., Чернявский А.М.
Журнал: Патология кровообращения и кардиохирургия @journal-meshalkin
Рубрика: Экспериментальные статьи
Статья в выпуске: 1 т.27, 2023 года.
Бесплатный доступ
Актуальность. Инфицирование сосудистого протеза является серьезным осложнением в сердечно-сосудистой хирургии, характеризуется тяжелым течением и высокой смертностью. Несмотря на то что антибактериальные покрытия для сосудистых протезов широко распространены, в мире продолжаются работы по их улучшению. Цель. Разработка и экспериментальное изучение свойств герметизирующего покрытия с антимикробным эффектом для синтетических сосудистых протезов из дакрона. Методы. Использовали 2 типа сосудистых протезов: протез № 1 (полотняный ткацкий раппорт) с исходным уровнем водопроницаемости 78,8 ± 2,7 мл/см2/мин, протез № 2 (саржа 2/1 + атлас 6/4) - уровень водопроницаемости 549,8 ± 20,7 мл/см2/мин. Разработали оригинальную методику желатиновой пропитки, выполнили сканирующую электронную микроскопию, тесты на водопроницаемость и устойчивость к радиальному перегибу. Антибактериальную активность желатиновой пропитки с ванкомицином оценили диско-диффузионным методом на средах с Staphylococcus aureus ATCC 29213 и Enterococcus faecalis ATCC 29212 путем измерения зон задержки роста микроорганизмов после 24-часовой инкубации. Для этого использовали образцы, выкроенные из протезов с пропиткой, содержащей ванкомицин (опытная группа) и не содержащей ванкомицин (контрольная группа). Результаты. Желатиновое покрытие на образцах визуализируется в виде тонкой ровной пленки и обеспечивает нулевую водопроницаемость. Негативным эффектом является увеличение жесткости и, соответственно, радиуса перегиба. Введение ванкомицина в покрытие привело к значительной задержке роста в культурах микроорганизмов: средний диаметр зоны задержки роста в культуре Staphylococcus aureus составил 15,60 ± 0,65 мм, в культуре Enterococcus faecalis - 14,40 ± 0,66 мм. В протезах, не обработанных ванкомицином, не обнаружили зон задержки роста. Заключение. Обработка желатиновой пропиткой с раствором ванкомицина - простая профилактическая мера для предотвращения роста грамположительных бактерий на материалах сосудистых протезов.
Водопроницаемость, желатин, сосудистый протез
Короткий адрес: https://sciup.org/142237534
IDR: 142237534 | DOI: 10.21688/1681-3472-2023-1-38-46
Evaluation of the original sealant with antibacterial effect for synthetic vascular grafts
Background: Vascular graft infection is a severe cardiovascular complication with high mortality rates. Antibacterial vascular graft coatings are widely used and continue to be improved. Objective: To develop a sealant with antimicrobial effect for Dacron vascular grafts and experimentally test the coating properties. Methods: We used 2 types of vascular grafts: graft No. 1 (plain weave) with initial water permeability of 78.8 ± 2.7 mL/cm2/min and graft No. 2 (2/1 twill + 6/4 satin weave) with water permeability of 549.8 ± 20.7 mL/cm2/min. We developed an original gelatin impregnation technique, tested it using a scanning electron microscopy, and measured water permeability and kink radius. We evaluated the antibacterial activity of vancomycin and gelatin impregnation by the disk diffusion test using media with Staphylococcus aureus ATCC 29213 and Enterococcus faecalis ATCC 29212 and measured inhibition zones after 24-hour incubation. We used samples cut out of grafts with vancomycin-containing (experimental group) and no vancomycin-containing (control group) impregnation. Results: The gelatin coating of the samples is visualized as a thin even film and provides zero water permeability. On the negative side, it increased stiffness and the kink radius. Thanks to vancomycin added to the coating, bacterial growth significantly inhibits: the mean diameter of the growth inhibition zone for Staphylococcus aureus and Enterococcus faecalis was 15.60 ± 0.65 and 14.40 ± 0.66 mm, respectively. The grafts untreated with vancomycin showed no growth inhibition zones. Conclusion: Vascular graft treatment with gelatin impregnation and vancomycin solution is a simple measure to prevent the growth of gram-positive bacteria on vascular grafts.
Текст научной статьи Оценка оригинального герметизирующего покрытия с антибактериальным эффектом для синтетических сосудистых протезов
Е.В. Карпова,
Н.Е. Лучников,
Д.А. Сирота,
А.Г. Едемский,
А.В. Богачев-Прокофьев,
А.М. Чернявский,
Протезы из полиэтилентерефталата (дакрон, полиэстер) используются в хирургии сосудов среднего и большого диаметров более 60 лет и являются эффективными и долговечными [1]. Тканые сосудистые протезы имеют поры различных размеров, способствующие формированию неоинтимы на внутренней поверхности и наружной инкапсуляции соединительной тканью. С другой стороны, такие поры обусловливают и основной недостаток — высокую проницаемость для жидкостей, что может привести к значительной интраоперационной кровопотере через стенку протеза. В конце 50-х и начале 60-х гг. прошлого века предложили два способа преодоления указанного недостатка: предварительную обработку протеза цельной кровью пациента непосредственно перед имплантацией (преклоттинг) либо его пропитку биорезорбиру-емыми веществами на этапе изготовления.
Преклоттинг основан на формировании тромботических масс в порах сосудистого протеза. Пропитка сосудистого протеза биорезорбируемыми веществами предложена в 1960 г. [2]. Обычно использовали нецитотоксичные и нетромбогенные материалы белковой природы: коллаген или желатин, позже — альбумин [3–7]. После пропитки протез становится непроницаемым, а последующая резорбция герметизирующего субстрата способствует его биоинтеграции.
Методы преклоттинга и пропитки появились практически одновременно, однако преклоттинг в первое время считался более популярным из-за отсутствия готовых пропитанных протезов, которые стали коммерчески доступными лишь с 1980-х гг.
Бактериальная инвазия с последующим генерализованным инфекционным процессом — одно из наиболее тяжелых осложнений, сопровождается высоким уровнем летальности. Частота развития инфекций, по различным данным, составляет 1–6 %. В раннем послеоперационном периоде возбудителями в 60–70 % случаев являются грамположитель-ные бактерии (Staphylococcus aureus, Staphylococcus epidermidis) [8]. Раннее инфицирование инициирует бактериальная адгезия с последующим формированием бактериальной биопленки на его люминальной поверхности. Эта пленка обладает высокой устойчивостью к иммунной защите реципиента и проникновению антибиотиков, что является основным препятствием для лечения инфекций протеза [9; 10].
В связи с этим рекомендована дополнительная обработка протезов антибактериальными агентами, для чего использовали ионы серебра, триклозан и, конечно, антибиотики [11–13]. Наиболее предпочтительным был рифампицин [11; 14]. Его использовали как в составе пропитки, так и для замачивания протезов перед имплантацией. Однако уже доказана высокая цитотоксичность рифампицина в отношении всех типов клеток — эндотелиальных, гладкомышечных, фибробластов.
Для данного исследования выбрали ванкомицин, обладающий наиболее низкой цитотоксичностью [11].
Цель — разработка и экспериментальное изучение свойств герметизирующего покрытия с антимикробным эффектом для синтетических сосудистых протезов из дакрона.
Методы
-
1. Технология нанесения герметизирующего покрытия
Материалы. Использовали два типа тканых гофрированных сосудистых протезов (Республиканское инновационное унитарное предприятие «Научно-технологический парк БНТУ “Политехник”», Минск, Беларусь), различающихся ткацким раппортом:
-
1) полотняное переплетение — раппорт утка
и основы представлены как 2/2 (Ry/Ro = 2/2);
-
2) сложное переплетение — саржевое 2/1
в комбинации с атласным 6/4.
Реактивы:
-
• раствор для внутривенных инфузий «Гелофу-зин» 4 % (B. Braun SE, Мельзунген, Германия);
-
• желатин типа В из кожи крупного рогатого скота № G9391 (Sigma-Aldrich, Сент-Луис, США);
-
• изопропиловый спирт (АО «Вектон», Санкт-Петербург, Россия);
-
• глицерин 99–101 % (PanReac – AppliChem, ITW Reagents, Барселона, Испания);
-
• глутаровый альдегид 25 % (PanReac –
AppliChem, ITW Reagents, Барселона, Испания).
Приготовление раствора для герметизирующей пропитки. На первом этапе готовили 8%-й раствор желатина типа В из кожи крупного рогатого скота № G9391 (Sigma-Aldrich, Сент-Луис, США), заливая дистиллированной водой. Тщательно перемешивали при температуре окружающей среды (24–26 °C) в течение 10–15 мин, после чего помещали в термостат при 37 °C в течение 24 ч для набухания. Затем к раствору добавляли сукцинилирован-ный желатин «Гелофузин» 4 % для внутривенных инфузий (B. Braun SE, Мельзунген, Германия) в коли- честве, необходимом для получения 6%-го раствора желатина, используемого для пропитки.
Технология герметизирующей обработки сосудистых протезов. Отмывали образцы в 3%-м растворе перекиси водорода и подвергали низкотемпературной стерилизации в этиленоксиде (стерилизатор 3М Steri-Vac 8XL, ООО «Стерипро», Москва, Россия), после чего каждый образец фиксировали на специальные площадки для расправления гофр протеза, а затем загружали в контейнер, содержащий 750 мл раствора желатина.
Для деаэрации контейнер подключали к вакуумному насосу (750 мм рт. ст.) и выдерживали при низком вакууме в течение 30 мин. Для формирования гелеобразной желатиновой пленки протезы экспонировали 30 мин в герметизирующем растворе, после чего высушивали в течение 24 ч в асептических условиях ламинарной зоны (5 по классификации Международной организации по стандартизации (англ. International Organization for Standardization, ISO — ИСО) при температуре окружающей среды.
Высушенные образцы погружали для химической сшивки желатина на 8 ч в раствор глутарового альдегида 0,02 %, глицерина 15 % и изопропилового спирта 75 %, приготовленный на стерильной дистиллированной воде. После завершения сшивки протезы промывали пятикратно по 7 мин в 15%-м растворе глицерина на дистиллированной воде, а затем высушивали в асептических условиях при температуре окружающей среды.
Исследование проницаемости воды. Проницаемость оценивали по скорости протекания дистиллированной воды через стенку протеза. Испытания проводили при комнатной температуре в специально разработанном устройстве, сконструированном в соответствии с ГОСТ Р ИСО 7198-2013 (рис. 1).
Рис. 1. Устройство для испытания на водопроницаемость: стенд (A); фиксация образца в расправленном состоянии резиновым ободком (указано черной стрелкой) в апертуру 0,78 см2 (B)
Список литературы Оценка оригинального герметизирующего покрытия с антибактериальным эффектом для синтетических сосудистых протезов
- Chakfé N., Bizonne S.C., Beaufigeau M., Urban E., Cardon A., Doillon C., Le Magnen J.F., Durand B., Kretz J.G. Impregnated polyester arterial prostheses: performance and prospects. Ann Vasc Surg. 1999;13(5):509-523. PMID: 10466995. https:// doi.org/10.1007/s100169900291
- Halpert B., De Bakey M.E., Jordan Jr G.L., Henly W.S. The fate of homografts and prostheses of the human aorta. Surg Gynecol Obstet. 1960;111:659-674. PMID: 13710927.
- Humphries A.W., Hawk W.A., Cuthbertson A.M. Arterial prosthesis of collagen-impregnated Dacron tulle. Surgery. 1961;50:947-954. PMID: 14449985.
- Bascom J.U. Gelatin sealing to prevent blood loss from knitted arterial grafts. Surgery. 1961;50:504-512. PMID: 13687562.
- Prager M., Polterauer P., Böhmig H.J., Wagner O., Fügl A., Kretschmer G., Plohner M., Nanobashvili J., Huk I. Collagen versus gelatin-coated Dacron versus stretch polytetrafluoroethylene in abdominal aortic bifurcation graft surgery: Results of a seven-year prospective, randomized multicenter trial. Surgery. 2001;130(3):408-414. PMID: 11562661. https://doi.org/10.1067/msy.2001.115904
- Lacroix H., Boel K., Nevelsteen A., Suy R. Early inflammatory response to gelatin- and collagen-sealed Dacron prostheses. Ann Vasc Surg. 1995;9(2):152-154. PMID: 7786700. https://doi. org/10.1007/bf02139657
- Domurado D., Thomas D., Brown G. A new method for producing proteic coatings. JBiomedMater Res. 1975;9(1):109-110. PMID: 809444. https://doi.org/10.1002/jbm.820090110
- Wilson W.R., Bower T.C., Creager M.A., Amin-Hanjani S., O'Gara P.T., Lockhart P.B., Darouiche R.O., Ramlawi B., Derdeyn C.P., Bolger A.F., Levison M.E., Taubert K.A., Baltimore R.S., Baddour L.M.; American Heart Association Committee on Rheumatic Fever, Endocarditis, and Kawasaki Disease of the Council on Cardiovascular Disease in the Young; Council on Cardiovascular and Stroke Nursing; Council on Cardiovascular Radiology and Intervention; Council on Cardiovascular Surgery and Anesthesia; Council on Peripheral Vascular Disease; and Stroke Council. Vascular graft infections, mycotic aneurysms, and endovascular infections: a scientific statement from the American Heart Association. Circulation. 2016; 134(20):e412-e460. PMID: 27737955. https://doi. org/10.1161/cir.0000000000000457
- Hall-Stoodley L., Costerton J.W., Stoodley P. Bacterial biofilms: from the natural environment to infectious diseases. Nat Rev Microbiol. 2004;2(2):95-108. PMID: 15040259. https://doi. org/10.1038/nrmicro821
- Gandelman G., Frishman W.H., Wiese C., Green-Gastwirth V., Hong S., Aronow W.S., Horowitz H.W. Intravascular device infections: epidemiology, diagnosis, and management. Cardiol Rev. 2007;15(1 ):13-23. PMID: 17172879. https://doi. org/10.1097/01.crd.0000197966.53529.67
- Herten M., Idelevich E.A., Sielker S., Becker K., Scherzinger A.S., Osada N., Torsello G.B., Bisdas T. Vascular graft impregnation with antibiotics: the influence of high concentrations of rifampin, vancomycin, daptomycin, and bacteriophage endolysin hy-133 on viability of vascular cells. Med Sci Monit Basic Res. 2017;23:250-257. PMID: 28652563; PMCID: PMC5498120. https://doi.org/10.12659/msmbr.902879
- Berard X., Puges M., Pinaquy J.-B., Cazanave C., Stecken L., Bordenave L., Pereyre S., M'Zali F. In vitro evidence of improved antimicrobial efficacy of silver and triclosan containing vascular grafts compared with rifampicin soaked grafts. Eur J Vasc Endovasc Surg. 2019;57(3):424-432. PMID: 30301647. https://doi.org/10.1016/i.eivs.2018.08.053
- Szatapata K., Osinska-Jaroszuk M., Kapral-Piotrowska J., Pawlikowska-Pawl^ga B., topucki R., Mroczka R., Jarosz-Wilkotazka A. Serine protease inhibitors — new molecules for modification of polymeric biomaterials. Biomolecules. 2020;10(1):82. PMID: 31947983; PMCID: PMC7023003. https:// doi.org/10.3390/biom10010082
- Lew W., Moore W. Antibiotic-impregnated grafts for aortic reconstruction. Semin Vasc Surg. 2011 ;24(4):211-219. PMID: 22230676. https://doi.org/10.1053/i. semvascsurg.2011.10.015
- Saw M.M., Chandler B., Ho K.M. Benefits and risks of using gelatin solution as a plasma expander for perioperative and critically ill patients: A meta-analysis. Anaesth Intensive Care. 2012;40(1):17-32. PMID: 22313061. https://doi. org/10.1177/0310057x1204000104
- Журавлева И.Ю., Ляшенко М.М., Шаданов А.А., Сирота Д.А., Чернявский А.М. Quo vadimus? Фундаментальные проблемы разработки гибридных протезов грудной аорты. Ангиология и сосудистая хирургия. 2021;27(4):103-112. https:// doi.org/10.33529/ANGI02021412 Zhuravleva I.Yu, Lyashenko M.M., Shadanov A.A., Sirota D.A., Chernyavskiy A.M. Quo vadimus? Fundamental problems of developing hybrid prostheses of thoracic aorta. Angiologiia i Sosudistaia Khirurgiia = Angiology and Vascular Surgery. 2021;27(4):103-112. (In Russ.) https://doi.org/10.33529/ ANGI02021412
- Gristina A.G. Biomaterial-centered infection: microbial adhesion versus tissue integration. Science. 1987;237(4822):1588-1595. PMID: 3629258. https://doi. org/10.1126/science.3629258
- Schmitt D.D., Bandyk D.F., Pequet A.J., Towne J.B. Bacterial adherence to vascular prostheses. A determinant of graft infectivity. J Vasc Surg. 1986;3(5):732-740. PMID: 2939263.
- Moore W.S., Chvapil M., Seiffert G., Keown K. Development of an infection-resistant vascular prosthesis. Arch Surg. 1981 ;116(11):1403-1407. PMID: 6458258. https://doi. org/10.1001/archsurg.1981.01380230027004
- Zilberman M., Elsner J.J. Antibiotic-eluting medical devices for various applications. J Control Release. 2008;130(3):202-215. PMID: 18687500. https://doi.org/10.1016/i. ¡conrel.2008.05.020
- Chervu A., Moore W.S., Gelabert H.A., Colburn M.D., Chvapil M. Prevention of graft infection by use of prostheses bonded with a rifampin/collagen release system. J Vasc Surg. 1991 ;14(4):521-525. PMID: 1833564. https://doi. org/10.1016/0741-5214(91)90246-Q
- Galdbart J.O., Branger C., Andreassian B., Lambert-Zechovsky N., Kitzis M. Elution of six antibiotics bonded to polyethylene vascular grafts sealed with three proteins. J Surg Res. 1996;66(2):174-178. PMID: 9024831. https://doi. org/10.1006/jsre.1996.0391
- Goeau-Brissonniere O., Leport C., Bacourt F., Lebrault C., Comte R., Pechere J.C. Prevention of vascular graft infection by rifampin bonding to a gelatin-sealed Dacron graft. Ann Vasc Surg. 1991;5(5):408-412. PMID: 1835641. https://doi. org/10.1007/bf02133043
- Morishima M., Marui A., Yanagi S., Nomura T., Nakajima N., Hyon S.-H., Ikeda T., Sakata R. Sustained release of vancomycin from a new biodegradable glue to prevent methicillin-resistant Staphylococcus aureus graft infection. Interact Cardiovasc Thorac Surg. 2010;11 (1):52-55. PMID: 20360210. https://doi.org/10.1510/icvts.2010.232447
- Blanchemain N., Laurent T., Chai F., Neut C., Haulon S., Krump-konvalinkova V., Morcellet M., Martel B., Kirkpatrick C.J., Hildebrand H.F. Polyester vascular prostheses coated with a cyclodextrin polymer and activated with antibiotics: cytotoxicity and microbiological evaluation. Acta Biomater. 2008;4(6):1725-1733. PMID: 18676187. https://doi. org/10.1016/j.actbio.2008.07.001