Оценка отдаленных результатов однократной интраоперационной электронейростимуляции после аутологичной пластики резекционного дефекта большеберцовой порции седалищного нерва взрослых крыс

Автор: Щудло Н.А., Варсегова Т.Н., Ступина Т.А.

Журнал: Гений ортопедии @geniy-ortopedii

Рубрика: Оригинальные статьи

Статья в выпуске: 3 т.30, 2024 года.

Бесплатный доступ

Введение. Данные мировой литературы свидетельствуют об эффективности однократной интраоперационной электростимуляции (ИЭС) проксимального отрезка повреждённого нерва для стимуляции его регенерации, но данные о её влиянии на отдалённые результаты аутопластики резекционных дефектов отсутствуют.Цель работы - оценка отдалённых результатов однократной ИЭС после аутологичной пластики дефекта большеберцовой порции седалищного нерва крыс.Материалы и методы. После аутологичной пластики резекционного дефекта большеберцовой порции седалищного нерва 30 крыс линии Wistar мужского пола распределены на серию 1 (нестимулированный контроль, n = 16) и серию 2 (однократная ИЭС в течение 40 мин., n = 14). Через 4 и 6 мес. после операции проведена оценка статического седалищного функционального индекса (СФИ) и морфометрия эпоксидных поперечных полутонких срезов большеберцового нерва на уровне средней трети голени. Для сравнения с нормой использовали соответствующие данные от 7 интактных крыс.Результаты. Количество животных с отличными результатами восстановления СФИ составило 12,5 % в серии 1 и 50 % в серии 2 (p = 0,05). Численная плотность регенерировавших миелинизированных волокон (МВ) превышала норму: в серии 1 - на 63 % (p function show_abstract() { $('#abstract1').hide(); $('#abstract2').show(); $('#abstract_expand').hide(); }

Еще

Крысы, седалищный нерв, аутопластика, интраоперационная электростимуляция (иэс), седалищный функциональный индекс, гистоморфометрия

Короткий адрес: https://sciup.org/142241868

IDR: 142241868   |   DOI: 10.18019/1028-4427-2024-30-3-417-426

Список литературы Оценка отдаленных результатов однократной интраоперационной электронейростимуляции после аутологичной пластики резекционного дефекта большеберцовой порции седалищного нерва взрослых крыс

  • Huckhagel T, Nüchtern J, Regelsberger J, et al. Nerve injury in severe trauma with upper extremity involvement: evaluation of49,382 patients from the TraumaRegister DGU® between 2002 and 2015. Scand J Trauma Resusc EmergMed. 2018;26(1):76. doi: 10.1186/s13049-018-0546-6
  • Huckhagel T, Nüchtern J, Regelsberger J, et al. Nerve trauma of the lower extremity: evaluation of 60,422 leg injured patients from the TraumaRegister DGU® between 2002 and 2015. Scand J Trauma Resusc Emerg Med. 2018;26(1):40. doi: 10.1186/s13049-018-0502-5
  • Литвиненко И.В., Одинак М.М., Живолупов С.А. и др. Клинико-инструментальные характеристики травматических поражений периферических нервов конечностей. Вестник Российской Военно-медицинской академии. 2018;20(3):50-56. doi: 10.17816/brmma12231
  • Ferguson TA, Son YJ. Extrinsic and intrinsic determinants of nerve regeneration. J Tissue Eng. 2011;2(1):2041731411418392. doi: 10.1177/2041731411418392
  • Grinsell D, Keating CP. Peripheral nerve reconstruction after injury: a review of clinical and experimental therapies. Biomed Res Int. 2014;2014:698256. doi: 10.1155/2014/698256
  • Raginov IS, Chelyshev YA. Post-traumatic survival of sensory neurons of different subpopulations. Neurosci Behav Physiol. 2005;35(1):17-20. doi: 10.1023/b:neab.0000049647.19397.30
  • Gordon T. Peripheral Nerve Regeneration and Muscle Reinnervation. Int J Mol Sci. 2020;21(22):8652. doi: 10.3390/ ijms21228652
  • Lamoureux PL, O'Toole MR, Heidemann SR, Miller KE. Slowing of axonal regeneration is correlated with increased axonal viscosity during aging. BMC Neurosci. 2010;11:140. doi: 10.1186/1471-2202-11-140
  • Lemke A, Penzenstadler C, Ferguson J, et al. A novel experimental rat model of peripheral nerve scarring that reliably mimics post-surgical complications and recurring adhesions. Dis Model Mech. 2017;10(8):1015-1025. doi: 10.1242/ dmm.028852
  • Wang ML, Rivlin M, Graham JG, Beredjiklian PK. Peripheral nerve injury, scarring, and recovery. Connect Tissue Res. 2019;60(1):3-9. doi: 10.1080/03008207.2018.1489381
  • Mu L, Chen J, Li J, et al. Immunohistochemical Detection of Motor Endplates in the Long-Term Denervated Muscle. JReconstrMicrosurg. 2018;34(5):348-358. doi: 10.1055/s-0038-1627463
  • Borisov AB, Huang SK, Carlson BM. Remodeling of the vascular bed and progressive loss of capillaries in denervated skeletal muscle. AnatRec. 2000;258(3):292-304. doi: 10.1002/(SICI)1097-0185(20000301)258:3<292::AID-AR9-3.0.C0;2-N
  • ElAbd R, Alabdulkarim A, AlSabah S, et al. Role of Electrical Stimulation in Peripheral Nerve Regeneration: A Systematic Review. Plast Reconstr Surg Glob Open. 2022;10(3):e4115. doi: 10.1097/G0X.0000000000004115
  • Худяев А.Т., Мартель И.И., Самылов В.В. и др. Малоинвазивные методы лечения повреждений периферических нервов. Гений ортопедии. 2012;(1):85-88.
  • Бажанов С.П., Шувалов С.Д., Бахарев Р.М. и др. Сравнительный анализ ближайших результатов хирургического лечения пациентов с закрытыми тракционны-ми повреждениями плечевого сплетения. Гений ортопедии. 2022;28(5):631-635. doi: 10.18019/1028-4427-2022-28-5-631-635. EDN: RIGWJV.
  • Wong JN, Olson JL, Morhart MJ, Chan KM. Electrical stimulation enhances sensory recovery: a randomized controlled trial. Ann Neurol. 2015;77(6):996-1006. doi: 10.1002/ana.24397
  • McLean NA, Verge VM. Dynamic impact of brief electrical nerve stimulation on the neural immune axis-polarization of macrophages toward a pro-repair phenotype in demyelinated peripheral nerve. Glia. 2016;64(9):1546-1561. doi: 10.1002/glia.23021
  • Shapira Y, Sammons V, Forden J, et al. Brief Electrical Stimulation Promotes Nerve Regeneration Following Experimental In-Continuity Nerve Injury. Neurosurgery. 2019;85(1):156-163. doi: 10.1093/neuros/nyy221
  • Roh J, Schellhardt L, Keane GC, et al. Short-Duration, Pulsatile, Electrical Stimulation Therapy Accelerates Axon Regeneration and Recovery following Tibial Nerve Injury and Repair in Rats. Plast Reconstr Surg. 2022;149(4):681e-690e. doi: 10.1097/PRS.0000000000008924
  • Sayanagi J, Acevedo-Cintrón JA, Pan D, et al. Brief Electrical Stimulation Accelerates Axon Regeneration and Promotes Recovery Following Nerve Transection and Repair in Mice. J Bone Joint Surg Am. 2021;103(20):e80. doi: 10.2106/ JBJS.20.01965
  • Raslan A, Salem MAM, Al-Hussaini A, et al. Brief Electrical Stimulation Improves Functional Recovery After Femoral But Not After Facial Nerve Injury in Rats. AnatRec (Hoboken). 2019;302(8):1304-1313. doi: 10.1002/ar.24127
  • Zuo KJ, Shafa G, Antonyshyn K, et al. A single session of brief electrical stimulation enhances axon regeneration through nerve autografts. Exp Neurol. 2020;323:113074. doi: 10.1016/j.expneurol.2019.113074
  • Koh GP, Fouad C, Lanzinger W, Willits RK. Effect of Intraoperative Electrical Stimulation on Recovery after Rat Sciatic Nerve Isograft Repair. NeurotraumaRep. 2020;1(1):181-191. doi: 10.1089/neur.2020.0049
  • van Neerven SG, Bozkurt A, O'Dey DM, et al. Retrograde tracing and toe spreading after experimental autologous nerve transplantation and crush injury of the sciatic nerve: a descriptive methodological study. J Brachial Plex Peripher Nerve Inj. 2012 A;7(1):5. doi: 10.1186/1749-7221-7-5
  • Navarro X, Vivó M, Valero-Cabré A. Neural plasticity after peripheral nerve injury and regeneration. Prog Neurobiol. 2007;82(4):163-201. doi: 10.1016/j.pneurobio.2007.06.005
  • Oliveira EF, Mazzer N, Barbieri CH, Selli M. Correlation between functional index and morphometry to evaluate recovery of the rat sciatic nerve following crush injury: experimental study. J Reconstr Microsurg. 2001;17(1):69-75. doi: 10.1055/s-2001-12691
  • Martins RS, Siqueira MG, da Silva CF, Plese JP. Correlation between parameters of electrophysiological, histomorphometric and sciatic functional index evaluations after rat sciatic nerve repair. Arq Neuropsiquiatr. 2006;64(3B):750-756. doi: 10.1590/s0004-282x2006000500010
  • Regeneration of Neural Tissues. In: Stocum DL. Regenerative Biology and Medicine (Second Edition). San Diego: Academic Press Publ.; 2012:67-97.
  • Muratori L, Ronchi G, Raimondo S, et al. Can regenerated nerve fibers return to normal size? A long-term post-traumatic study of the rat median nerve crush injury model. Microsurgery. 2012;32(5):383-387. doi: 10.1002/micr.21969
  • Ikeda M, Oka Y. The relationship between nerve conduction velocity and fiber morphology during peripheral nerve regeneration. BrainBehav. 2012;2(4):382-390. doi: 10.1002/brb3.61
  • Caillaud M, Richard L, Vallat JM, et al. Peripheral nerve regeneration and intraneural revascularization. Neural Regen Res. 2019;14(1):24-33. doi: 10.4103/1673-5374.243699
  • Kuffler DP, Foy C. Restoration ofNeurological Function FollowingPeripheral Nerve Trauma. Int JMol Sci. 2020;21(5):1808. doi: 10.3390/ijms21051808
  • Ghezzi AC, Cambri LT, Botezelli JD, et al. Metabolic syndrome markers in wistar rats of different ages. DiabetolMetab Syndr. 2012;4(1):16. doi: 10.1186/1758-5996-4-16
Еще
Статья научная