Оценка роли актинобактерий в активности глубоководных эндемичных видов амфипод, принадлежащих к роду Ommatogammarus
Автор: Протасов Е.С., Аксенов-грибанов Д.В., Войцеховская И.В., Тимофеев М.А.
Журнал: Журнал стресс-физиологии и биохимии @jspb
Статья в выпуске: 4 т.12, 2016 года.
Бесплатный доступ
Целью настоящего исследования было выявление ассоциаций между штаммами актинобактерий и глубоководными эндемическими амфиподами озера Байкал. Во время исследования сорок два штамма актинобактерий были выделены из амфиподов, принадлежащих к роду Ommatogammarus (O. albinus и O. flavus), которые были пойманы с глубины 80-200 м. Анализ части гена 16S рРНК показал, что полученные штаммы, принадлежащие к родам Streptomyces, Micromonospora и Pseudonocardia. Результаты исследования показывают, что актинобактерии, которые продуцируют противомикробные соединения, обитают в организме амфиподов из рода Ommatogammarus. Предполагается, что актинобактерии могут влиять на метаболизм глубоководных амфиподсосудов. Кроме того, актинобактерии, полученные из эндемичных амфипод озера Байкал, имеют потенциальные фармацевтические применения в качестве источника антибиотиков. Они также расширяют наше понимание взаимосвязи между микроорганизмами и эндемическими амфиподами.
Короткий адрес: https://sciup.org/14324001
IDR: 14324001
Текст научной статьи Оценка роли актинобактерий в активности глубоководных эндемичных видов амфипод, принадлежащих к роду Ommatogammarus
Термин «симбиоз» с момента своего возникновения в 1879 году изменил свое значение, однако не утратил актуальности. Основоположник термина немецкий ботаник Антуан де Бари в своей работе «Die Erscheinung der Symbiose» описывал симбиоз, как сожительство видов в течение длительного времени, противопоставляя «симбиоз» понятиям «паразитизм» и «комменсализм» (Bonfante and Genre , 2010). Однако позже под симбиозом стали понимать любые виды сожительств. Таким образом, «симбиоз» стал более общим термином, включающим в себя разные по характеру взаимоотношения организмов друг с другом.
Одни из наиболее хорошо изученных симбиозов между беспозвоночными и микроорганизмами являются ассоциации губок и бактерий (Taylor et al ., 2007). Несмотря на то, что большинство исследований проведено на морских губках, некоторые из них также затрагивают тему пресноводных беспозвоночных и уникальных экосистем, как новых источников полезных штаммов актинобактерий и антибиотиков (Costa et al. , 2013; Duncan et al. , 2015; Axenov-Gribanov et al. , 2015).
Одной из экосистем, уникальной по своим характеристикам - древней и мало изученной в аспекте актинобактериального разнообразия, является озеро Байкал и его обитатели. Озеро Байкал, объект мирового наследия ЮНЕСКО, расположено в Восточной Сибири. Это одно из самых древних озер планеты (около 25-30 млн. лет) и крупнейшее озеро по объему пресной воды. Озеро населено более чем 2500 видами животных при уровне эндемизма — 80% (Timoshkin et al. , 2001). Вся водная толща озера насыщена кислородом и характеризуется узким диапазоном температурных флуктуаций.
Данные факторы создают особые условия для каждого организма, обитающего в озере. В таких постоянных условиях беспозвоночные эволюционировали в течение последних миллионов лет. Одной из таких групп являются амфиподы ( Amphipoda, Crustacea ).
Амфиподы – неотъемлемая часть экосистемы озера Байкал. Байкальские амфиподы составляют 45,3% от мировой пресноводной фауны амфипод и представлены 276 видами и 78 подвидами со 100% эндемичностью (Takhteev et al. , 2015). Они населяют все экологические ниши озера от зоны литорали до абиссали. Особый интерес при этом представляют глубоководные амфиподы, которые, являясь падальщиками, играют важную роль в системе самоочистки озера.
Целью настоящего исследования являлось выявление ассоциаций между культивируемыми штаммами актинобактерий и глубоководными эндемичными амфиподами озера Байкал.
MATERIALS AND METHODS
Для настоящего исследования два вида амфипод рода Ommatogammarus - O. albinus и O. flavus - были выловлены с различных глубин в южной части озера Байкал возле поселка Большие Коты (51.9053° N, 105.0753° E). Представители вида O. albinus были выловлены с глубин 80 и 200 м, а вида O. flavus - с глубин 80, 100 и 200 м. Каждый образец включал от 3 до 5 амфипод. С каждой глубины отобрано по 5 образцов. Амфиподы были пойманы с применением глубоководных ловушек. Поднятые образцы амфипод были отмыты в воде, спирте и зафиксированы (гомогенизированы в 20% растворе глицерина), в соответствии с Axenov-Gribanov et al . (2015).
Культивируемые штаммы актинобактерий выделены на твердых питательных средах. Шесть питательных сред (MS, ISP, крахмало-аммиачный агар, среда Гаузе №1, среда Ваксмана, среда Чапека), содержащих в своем составе антибиотики циклогексимид (50 мг/мл) и фосфомицин (100 мг/мл), были использованы для выделения чистых культур актинобактерий (Kieser et al. , 2000). Аликвоты образцов были предварительно прогреты в течение 5 минут при температуре 50 °С для активации прорастания спор и подавления роста вегетативных клеток других бактерий. Культуры актинобактерий отобраны по морфологическим признакам и получены посредством инкубации микробиологических посевов гомогенатов амфипод в течение 30 дней при температуре 28 °С.
Идентификацию штаммов проводили посредством амплификации и секвенирования гена 16S рРНК с праймерами: 8F (AGA GTT TGA TYM TGG CTC AG), 1510R (TAC GGY TAC CTT GTT ACG ACT T), ACT235F (CGC GGC CTA TCA GCT TGT TG) и ACT878R (CCG TAC TCC CCA GGC GGG G). Полученные нуклеотидные последовательности были собраны и депонированы в GenBank (NCBI).
Для изучения продукции биологически активных метаболитов и их экстракции, выделенные из амфипод штаммы культивировали на трех жидких питательных средах, в т.ч. NL-19, SG, ISP2. Штаммы культивировали при температуре 28 °С в течение 4 дней на шейкере при 180 rpm. Культуральная жидкость и биомасса были разделены центрифугированием при 3000 g в течение 5 мин. Вторичные метаболиты экстрагированы этилацетатом из культуральной жидкости. Для биомассы использовали смесь ацетона и метанола в соотношении 1:1. Полученные экстракты были сконцентрированы с помощью роторного испарителя IKA RV–8 (IKA, Germany) при 40 °С , а сухой остаток был растворен в 500 мкл метанола (Sigma, St. Louis, USA) (Sarker et al., 2000). Полученные экстракты были использованы для антибиотических диффузионных тестов против Bacillus subtilis ATCC 6633, Pseudomonas putida KT2440 и Saccharomyces cerevisiae BY4742.
RESULTS
В ходе исследования выделено 42 штамма актинобактерий. Из амфипод вида O. albinus выделено 13 штаммов актинобактерий. Из них 11 штаммов выделены из амфипод, собранных с глубины 80 м, и по одному штамму выделено из рачков, поднятых с глубин 100 и 200 м.
Из O. flavus , выловленных с разных глубин, выделено 29 штаммов. Из них 24 штамма было выделено из амфипод с глубины 200 м, а с глубин 80 и 100 м было выделено четыре и один штамм, соответственно.
Филогенетический анализ участка гена 16S рРНК выявил что 40 из 42 актинобактериальных штаммов принадлежат к роду Streptomyces . Два штамма принадлежат к родам Micromonospora и Pseudonocardia, соответственно (Таблица 1). Оба этих штамма были выделены из O. albinus с глубины 80 м. Полученные данные указывают на разнообразие актинобактерий, ассоциированных с глубоководными амфиподами рода Ommatogammarus .
Из 42 штаммов, выделенных из байкальских эндемичных глубоководных амфипод, только четыре штамма (Streptomyces sp. IB2015P61-1, Streptomyces sp. IB2015P113-15, Streptomyces sp. IB2015P114-1, Streptomyces sp. IB2015P122-1) не проявили антимикробной активности против хотя бы одной тест-культуры.
Остальные
выделенные
штаммы
так и грибов. Число активных выделенных штаммов представлено в таблице 2.
актинобактерий подавляли рост как бактерий,
Table 1. Штаммы актинобактерий, выделенные из глубоководных амфипод рода Ommatogammarus
№ |
Штамм |
Источник выделения |
Глубина, м |
ID GenBank |
1 |
Streptomyces sp. IB 2015P60-1 |
O. ablinus |
80 |
KX539267 |
2 |
Streptomyces sp. IB 2015P60-1HS |
O. ablinus |
80 |
KX539268 |
3 |
Streptomyces sp. IB 2015P60-2 |
O. ablinus |
80 |
KX539269 |
4 |
Streptomyces sp. IB 2015P60-2HS |
O. ablinus |
80 |
KX539270 |
5 |
Streptomyces sp. IB 2015P60-3 |
O. ablinus |
80 |
KX539271 |
6 |
Micromonospora sp. IB 2015P61-1 |
O. ablinus |
80 |
KX539272 |
7 |
Streptomyces sp. IB 2015P61-3 |
O. ablinus |
80 |
KX539273 |
8 |
Pseudonocardia sp. IB 2015P62-1HS |
O. ablinus |
80 |
KX531081 |
9 |
Streptomyces sp. IB 2015P63-1HS |
O. ablinus |
80 |
KX531082 |
10 |
Streptomyces sp. IB 2015P64-1 |
O. ablinus |
80 |
KX531083 |
11 |
Streptomyces sp. IB 2015P64-2 |
O. ablinus |
80 |
KX531084 |
12 |
Streptomyces sp. IB 2015P65-1 |
O. flavus |
80 |
KX531085 |
13 |
Streptomyces sp. IB 2015P66-2 |
O. flavus |
80 |
KX531086 |
14 |
Streptomyces sp. IB 2015P67-2 |
O. flavus |
80 |
KX531087 |
15 |
Streptomyces sp. IB 2015P69-1 |
O. flavus |
80 |
KX531088 |
16 |
Streptomyces sp. IB 2015P102-1 |
O. flavus |
100 |
KX531089 |
17 |
Streptomyces sp. IB 2015P104-1 |
O. albinus |
100 |
KX531090 |
18 |
Streptomyces sp. IB 2015P113-1 |
O. flavus |
200 |
KX539274 |
19 |
Streptomyces sp. IB 2015P113-2 |
O. flavus |
200 |
KX539275 |
20 |
Streptomyces sp. IB 2015P113-3 |
O. flavus |
200 |
KX539276 |
21 |
Streptomyces sp. IB 2015P113-4 |
O. flavus |
200 |
KX539277 |
22 |
Streptomyces sp. IB 2015P113-5 |
O. flavus |
200 |
KX539278 |
23 |
Streptomyces sp. IB 2015P113-6 |
O. flavus |
200 |
KX539279 |
24 |
Streptomyces sp. IB 2015P113-7 |
O. flavus |
200 |
KX539280 |
25 |
Streptomyces sp. IB 2015P113-8 |
O. flavus |
200 |
KX539281 |
26 |
Streptomyces sp. IB 2015P113-9 |
O. flavus |
200 |
KX539282 |
27 |
Streptomyces sp. IB 2015P113-10 |
O. flavus |
200 |
KX539283 |
28 |
Streptomyces sp. IB 2015P113-11 |
O. flavus |
200 |
KX539284 |
29 |
Streptomyces sp. IB 2015P113-12 |
O. flavus |
200 |
KX539285 |
30 |
Streptomyces sp. IB 2015P113-13 |
O. flavus |
200 |
KX539286 |
31 |
Streptomyces sp. IB 2015P113-14 |
O. flavus |
200 |
KX539287 |
32 |
Streptomyces sp. IB 2015P113-15 |
O. flavus |
200 |
KX539288 |
33 |
Streptomyces sp. IB 2015P113-16 |
O. flavus |
200 |
KX539289 |
34 |
Streptomyces sp. IB 2015P114-1 |
O. flavus |
200 |
KX539290 |
35 |
Streptomyces sp. IB 2015P114-2 |
O. flavus |
200 |
KX539291 |
36 |
Streptomyces sp. IB 2015P117-1 |
O. flavus |
200 |
KX539292 |
37 |
Streptomyces sp. IB 2015P118-1 |
O. flavus |
200 |
KX539293 |
38 |
Streptomyces sp. IB 2015P119-1 |
O. flavus |
200 |
KX539294 |
39 |
Streptomyces sp. IB 2015P119-2 |
O. flavus |
200 |
KX539295 |
40 |
Streptomyces sp. IB 2015P119-3 |
O. flavus |
200 |
KX539296 |
41 |
Streptomyces sp. IB 2015P119-5 |
O. flavus |
200 |
KX539297 |
42 |
Streptomyces sp. IB 2015P122-1 |
O. ablinus |
200 |
KX539298 |
Table 2. Антибиотическая активность штаммов актинобактерий, выделенных из амфипод рода Ommatogammarus в диапазоне глубин 80 – 200 м
Число выделенных штаммов на образец |
80 м |
100 м |
200 м |
Число выделенных штаммов |
15 |
2 |
25 |
Выделено из O. albinus |
11 |
1 |
1 |
Число активных штаммов, в т.ч. |
10 |
1 |
0 |
Активны против бактерий |
5 |
1 |
0 |
Активны против грибов |
9 |
1 |
0 |
Число неактивных штаммов |
1 |
0 |
1 |
Выделено из O. flavus |
4 |
1 |
24 |
Число активных штаммов, в т.ч. |
4 |
1 |
21 |
Активны против бактерий |
4 |
1 |
16 |
Активны против грибов |
4 |
1 |
15 |
Число неактивных штаммов |
0 |
0 |
3 |
DISCUSSION
Как показывают результаты настоящего исследования, из представителей глубоководных эндемичных амфипод озера Байкал выделено 42 штамма актинобактерий. Анализ числа штаммов актинобактерий, выделенных из амфипод, принадлежащих к роду Ommatogammarus, выловленных в диапазоне глубин 80 – 200 м, показывает, что между числом выделенных культур, глубиной, с которой выловлены амфиподы, и самим источником выделения, каких-либо корреляций не наблюдается. В то же время, обнаружены видоспецифические особенности. Так, число культивируемых штаммов актинобактерий, обнаруженных в O. albinus снижается в градиенте глубин от 80 (число штаммов 11) до 200 м (число штаммов 1). В случае O. flavus, число штаммов, напротив, возрастало с глубиной. Это может быть связано с экологией изучаемых видов амфипод, в частности, с их высоким уровнем активности и способности амфипод к активным движениям и миграциям по градиенту глубин (Timoshkin et al., 2001). Упомянутые миграции обусловлены сезонными факторами и/или пищевым поведением.
По результатам полученных материалов обнаружена слабая корреляция между активностью штаммов и глубиной вылова амфипод. Выявлено, что число активных штаммов, выделенных из амфипод, обитающих на глубине 80 м, выше, чем число активных штаммов, выделенных из амфипод, собранных на глубине 200 м. Так, с глубины 80 м проявили антибиотическую активность 93% штаммов, против 88% штаммов, собранных с глубины 200 м.
Данные особенности могут быть обусловлены уменьшением или снижением резистентных способностей бактерий, обитающих в более стабильных условиях озера. Подобное снижение резистентных способностей было обнаружено у некоторых антарктических эукариотических организмов и некоторых термочувствительных гидрозой, которые потеряли способность к синтезу белков теплового шока (Hofmann, 2005; Terza La et al., 2007) при эволюции в стабильных условиях.
Таким образом, с одной стороны - вопрос о том - является ли снижение стресс-ответа и механизмов защиты против бактериальных патогенов результатом эволюции в условиях высокой стабильности, остаётся открытым и требует дальнейшего исследования. С другой стороны известно, что биоразнообразие организмов прибрежной зоны выше, чем разнообразие видов, обитающих в абиссали. Обитание бактерий в области малых глубин связано с высокой вероятностью встречи актинобактерий с известными патогенами и продуктами человеческой жизнедеятельности. В то же время, обитание бактерий вдали от уреза вода и на больших глубинах может повлечь за собой уменьшение числа патогенов, встречаемых в наземных экосистемах, и снижению числа активных штаммов. Следовательно, выделение штаммов актинобактерий с больших глубин и отдалённых от берега областей должно привести к обнаружению специфической (узко направленной) активности бактерий против патогенов животных и специфическим механизмам действия антибиотиков.
Среди животных, населяющих озеро Байкал, наиболее интенсивно изучено микробное сообщество губок. Ранние исследования губок, принадлежащих к родам Swartschewskia, Baicalospongia, и Lubomirskia с помощью классических методов показали, что актинобактерии из родов Streptomyces и Micromonospora являются постоянным компонентом бактериального сообщества. Исследования, проведенные Парфеновой В.В. и др. (2008) показали, что род Micromonospora доминирует среди культивируемых актинобактерий во всех изученных губках из озера Байкал (Parfenova et al., 2008). Несмотря на то, что к настоящему времени проведено множество исследований культивируемых и некультивируемых штаммов актинобактерий, выделенных из воды, осадков, и губок, материалы настоящего исследования являются первым результатом, описывающим разнообразие культивируемых актинобактерий в глубоководных амфиподах озера Байкал. Также настоящее исследование является первым сообщением о выделении актинобактерий, принадлежащих к родам Micromonospora и Pseudonocardia, из байкальских эндемичных амфипод. Ранее из амфипод рода Brandtia sp. выделено 10 штаммов актинобактерий, принадлежащих к родам Aeromicrobium sp., Nocardia sp., Streptomyces sp., а из амфипод вида Pallasea cancellous был выделен один штамм -представитель Nocardia sp. (Axenov-Gribanov et al., 2015).
Известно, что микроорганизмы, ассоциированные с амфиподами, могут разлагать сложные субстраты, например, целлюлозу и хитин (Anderson et al., 2012). Так, амфиподы могут получать дополнительное питание от ассоциированной с ними микрофлоры. Ввиду низкого уровня органического вещества в воде озере Байкал, данное свойство актинобактерий может играть существенную роль в питании амфипод. Также ранее показано, что бактериальная биомасса, образующаяся в детритовых пищевых цепях, является частью энергетического обмена арктических амфипод (Atlas and Busdosh, 1982). Исследованиями Barlocher (1982) показано, что грибные ферменты расщепляют структурные углеводы в кишечнике амфипод Gammarus fossarum (Barlocher, 1982). Кроме того, существует доказательство того, что отдельные амфиподы обладают постоянной и транзиторной микрофлорой, а некоторые глубоководные морские амфиподы из зоны абиссали обладают постоянной микрофлорой, участвующей в питании организма-хозяина (Deming et al., 1981).
Таким образом, результаты данного исследования показывают, что в организмах амфипод рода Ommatogammarus обитают актинобактерии, которые продуцируют соединения с антимикробной активностью. Предполагается, что последние могут оказывать влияние на метаболизм глубоководных амфипод-падальщиков. Кроме того, актинобактерии, выделенные из байкальских эндемичных амфипод, обладают высоким фармацевтическим потенциалом в качестве источников антибиотиков и биологически активных соединений и расширяют понимание взаимоотношений между микроорганизмами и эндемичными амфиподами.
ACKNOWLEDGEMENTS
Исследование проведено при частичной финансовой поддержке Министерства образования и науки Российской Федерации, в т.ч. проектов Госзадания (№6.382.2014/K, 6.734.2016 DAAD, 6.696.2016 DAAD), гранта РНФ (№ 14-14-00400), РФФИ (№ 14-04-00501, 16-34-00686), грантом Иркутского государственного университета для молодых ученых и немецкой службой академических обменов.
Список литературы Оценка роли актинобактерий в активности глубоководных эндемичных видов амфипод, принадлежащих к роду Ommatogammarus
- Anderson I., Abt B., Lykidis A., Klenk H.P., Kyrpides N. Ivanova N. (2012) Genomics of aerobic cellulose utilization systems in actinobacteria. PloS One, 7:e39331
- Atlas R., Busdosh M. (1982) Bacterial populations associated with the Arctic amphipod Boeckosimus affinis. Canadian Journal of Microbiology, 28, 92-99
- Axenov-Gribanov D., Rebets Y., Tokovenko B., Voytsekhovskaya I., Timofeyev M., Luzhetskyy A. (2015) The isolation and characterization of actinobacteria from dominant benthic macroinvertebrates endemic to Lake Baikal. Folia Microbiologica, 61(2):159-168
- Barlocher F (1982) The contribution of fungal enzymes to the digestion of leaves by Gammarus fossarum Koch (Amphipoda). Oecologia, 52, 5-8
- Barlocher F. (1981) Fungi on the food and in the faeces of Gammarus pulex. Transactions of the British Mycological Society, 76,160-165
- Bonfante P., Genre A. (2010) Mechanisms underlying beneficial plant-fungus interactions in mycorrhizal symbiosis. Nature communications, 1, 48
- Costa R., Keller-Costa T., Gomes N.C., da Rocha U.N., van Overbeek L., van Elsas J.D. (2013) Evidence for selective bacterial community structuring in the freshwater sponge Ephydatia fluviatilis. Microbial ecology, 65(1), 232-244
- Deming J., Tabor P., Colwell R. (1981) Barophilic growth of bacteria from intestinal tracts of deep-sea invertebrates. Microbial Ecology, 7(1), 85-94
- Duncan K.R., Crüsemann M., Lechner A., Sarkar A., Li J., Ziemert N., Wang M., Bandeira N., Moore B., Dorrestein P., Jensen P. (2015) Molecular Networking and Pattern-Based Genome Mining Improves Discovery of Biosynthetic Gene Clusters and their Products from Salinispora Species. Chemical Biology, 22, 460-471
- Kieser B, Buttner M, Charter K, Hopwood В (2000) Practical streptomyces genetics. John Innes Foundation, Norwich
- Parfenova V.V., Terkina I.A., Kostornova T.Y., Nikulina I.G., Chernikh V.I., Maksimova E.A. (2008) Microbial community of freshwater sponges in Lake Baikal. Biological Bulletin, 35, 374-379
- Takhteev V.V., Berezina N.A., Sidorov D.A. (2015) Checklist of the Amphipoda (Crustacea) from continental waters of Russia, with data on alien species. Arthropoda Selecta, 24, 335-370
- Taylor M.W., Radax R., Steger D., Wagner M. (2007) Sponge-associated microorganisms: evolution, ecology, and biotechnological potential. Microbiology and molecular biology reviews, 71(2), 295-347
- Timoshkin O.A., Sitnikova T.Y., Rusinek O.T., Pronin N.M., Proviz V.I., Mel'nik N.G., Kamaltynov R.M., Mazepova G.F., Adov F.V., Anohin B.A., Arov I.V., Baldanova D.R., Biserov V.I., Bondarenko N.A., Burdukovskaja T.G., Grajger M.Dzh., Danilov S.N., Dzjuba E.V., Dubeshko L.N., Dugarov Zh.N., Dudichev A.L., Evstigneeva T.D., Efremova S.M., Zhil'cova L.A., Kavakatsu M., Korgina E.M., Korobkova N.V., Krickaja U.A., Kutikova L.A., Ljamkin V.F., Natjaganova A.V., Naumova T.V., Nekrasov A.V., Novikova O.A., Obolkina L.A., Okuneva G.L., Podtjazhkina M.M., Pomazkova G.I., Popov V.V., Pronina S.V., Rozhkova N.A., Sanzhieva S.D., Semernoj V.P., Sideleva V.G., Slugina Z.V.,Starobogatov Ja., Stepan'janc S.D., Tanichev A.I., Tuzovskij P.V., Hamnueva T.R.,. Calolihin S.Ja, Sheveleva N.G., Shibanova I.V., Shirokaja A.A.,Shoshinin A.V. (2001) Index of animal species inhabiting Lake Baikal and its catchment area, Nowosibirsk: Nauka