Определение остаточного количества антибиотиков в продуктах животного происхождения

Автор: Чаплыгина О.С., Просеков А.Ю., Белова Д.Д.

Журнал: Вестник Воронежского государственного университета инженерных технологий @vestnik-vsuet

Рубрика: Пищевая биотехнология

Статья в выпуске: 1 (91), 2022 года.

Бесплатный доступ

Антибиотики широко используются для профилактики и лечения инфекционных заболеваний в медицине и ветеринарии, а также в качестве стимуляторов роста в животноводстве. Присутствие остаточных следов антибиотиков в животноводческой продукции, а далее и в пищевых продуктах, полученных на ее основе, представляет опасность как для человека, так и для окружающей среды в целом. Нерациональное использования антибиотиков в сельском хозяйстве стимулирует появление антибиотикорезистентных бактерий, способных вызывать инфекционные заболевания у человека и животных, не поддающиеся лечению современными лекарственными препаратами. В связи с потенциальным риском для здоровья человека во многих странах регламентированы максимально допустимые пределы содержания остаточных следов антибиотиков. Поэтому актуальной задачей остается разработка новых высокочувствительных, точных, простых и экономически выгодных методов их определения. Данный обзор направлен на анализ последних работ в области идентификации остаточных следов антибиотиков в пищевых продуктах.

Еще

Антибиотики, экстракция, животноводство, продукты питания, хроматография, антибиотикорезистентность

Короткий адрес: https://sciup.org/140293750

IDR: 140293750

Список литературы Определение остаточного количества антибиотиков в продуктах животного происхождения

  • Manyi-Loh C., Mamphweli S., Meyer E., Okoh A. Open Access Review Antibiotic Use in Agriculture and Its Consequential Resistance in Environmental Sources: Potential Public Health Implications // Molecules. 2018. V. 23. № 4. doi: 10,3390/molecules23040795
  • Bacanli M., Basaran N. Importance of antibiotic residues in animal food // Food and Chemical Toxicology. 2019. V. 125. P. 462-466. doi: 10,1016/j.fct.2019.01,033.
  • Baynes R.E., Dedonder K., Kissell L. Health concerns and management of select veterinary drug // Food and Chemical Toxicology. 2016. V. 88. P. 112-122. doi: 10,1016/j.fct.2015.12.020,
  • Галяутдинова Г.Г., Маланьев А.В., Мухамметшина А.Г. Балымова М.В. и др. Индикация антибиотика цинкбацитрацина в кормах методом ВЭЖХ // Ученые записки Казанской государственной академии ветеринарной медицины им. Н.Э. Баумана. 2020. Т. 242. (2). С. 36-39. doi: 10,31588/2413-4201-1883-242-2-36-40
  • Шульга Н.Н., Шульга И.С., Плавшак Л.П. Антибиотики в животноводстве пути решения проблемы // Тенденции развития науки и образования. 2018. № 35-4. С. 52-55. doi: 10,18411/lj-28-02-2018-68
  • Mehl A., Schmidt L.J., Schmidt L. High-throughput planar solid-phase extraction coupled to orbitrap highresolution mass spectrometry via the autoTLC-MS interface for screening of 66 multi-class antibiotic residues in food of ammal origin // Food Chemistry. 2021. V. 351. P. 129211. doi: 10,1016/j.foodchem.2021,129211
  • Bacanli M., Ba^aran N. Importance of antibiotic residues in animal food // Food and Chemical Toxicology. 2019. V. 2019. P 462-466. doi: 10,1016/j.fct.2019.01,033
  • Галяутдинова Г.Г., Босяков В.И., Хайруллин Д.Д., Егоров В.И. Хроматографические методы определения антибиотика цинкбацитрацина // Ученые записки Казанской государственной академии ветеринарной медицины им. Н.Э. Баумана. 2018. Т. 236. № 4. С. 67-72. doi: 10,31588/2413-4201-1883-236-4-67-72
  • Potekhin A.V., Rusaleyev V.S. Monitoring of antibiotic resistance of Acinobacillus pleuropneumoniae isolated in the Russian Federation in 2012-2014 // Veterinary Science Today. 2016. № 1. P. 24-29.
  • Шульга Н.Н., Шульга И.С., Плавшак Л.П. Антибиотики против человека // БИО. 2019. Т. 7 (226). С. 6-12.
  • Jalili R., Khataee A. Application of molecularly imprinted polymers and dual-emission carbon dots hybrid for ratiometric determination of chloramphenicol in milk // Food and Chemical Toxicology. 2020, V. 146. doi: 10,1016/j.fct.2020,111806
  • Vuran B., Ulusoy H.I., Sarp G., Yilmaz E. Determination of chloramphenicol and tetracycline residues in milk samples by means of nanofiber coated magnetic particles prior to high-performance liquid chromatography-diode array detection // Talanta. 2021. V. 230. doi: 10,1016/j.talanta.2021,122307
  • Wen J., Wu F., Cao Y., He J. et al. Determination of chloramphenicol in propolis and propolis-derived dietary supplements by high performance liquid chromatography-tandem mass spectrometry // Chinese Journal of Chromatography. 2018. V. 36. (12). P. 1284-1289. doi: 10,3724/SP.J.1123.2018.08012
  • Wen L., Liu L., Wang X. et al. Spherical mesoporous covalent organic framework as a solid-phase extraction adsorbent for the ultrasensitive determination of sulfonamides in food and water samples by liquid chromatography-tandem mass spectrometry // Journal of Chromatography A. 2020. V. 1625. P. 461275. doi: 10,1016/j.chroma.2020,461275
  • Moudgil P., Bedi J.S., Aulakh R.S., Wang M. - L. et al. Antibiotic residues and mycotoxins in raw milk in Punjab (India): A rising concern for food safety // Journal of Food Science and Technology. 2019. V. 56 (11). P. 5146-5151. doi: 10,1016/j.chroma.2020,461275
  • de Freitas A., de Magalhaes B., Minho L., Leao D. FTIR spectroscopy with chemometrics for determination of tylosin residues in milk // Journal of the Science of Food and Agriculture. 2021. V. 101. № 5. P. 1854-1860. doi: 10,1002/jsfa.10799
  • Hendrickson O.D., Zvereva E.A., Zherdev A.V. Godjevargova Т. et al. Development of a double immunochromatographic test system for simultaneous determination of lincomycin and tylosin antibiotics in foodstuffs // Food Chemistry. 2020. V. 318. P. 126510. doi: 10,1016/j.foodchem.2020,126510
  • Gomes Marques de Freitas A., Almir Cavalcante Minho L., Elizabeth Alves de Magalhaes B. et al. Infrared spectroscopy combined with random forest to determine tylosin residues in powdered milk // Food Chemistry. 2021. V. 365. P. 130477. doi: 10,1016/j.foodchem.2021,130477
  • Sereshti H., Karami F., Nouri N., Farahani A. Electrochemically controlled solid phase microextraction based on a conductive polyaniline-graphene oxide nanocomposite for extraction of tetracyclines in milk and water // Journal of the Science of Food and Agriculture. 2021. V. 101. № 7. P. 2304-2311. doi: 10,1002/jsfa.10851
  • Pang Y.-H., Lv Z.-Y., Sun J.-C. Collaborative compounding of metal-organic frameworks for dispersive solidphase extraction HPLC-MS/MS determination of tetracyclines in honey // Food Chemistry. 2021. V. 355. P. 129411. doi: 10,1016/j.foodchem.2021,129411,
  • Hong C., Zhang X., Ye S., Yang H. et al. Aptamer-Pendant DNA Tetrahedron Nanostructure Probe for Ultrasensitive Detection of Tetracycline by Coupling Target-Triggered Rolling Circle Amplification // ACS Applied Materials and Interfaces. 2021, V. 13. (17). P. 19695-19700. doi: 10,1021/acsami.1c02612
  • Kumar A., Panda A.K., Sharma N. Determination of antibiotic residues in bovine milk by HPLC-DAD and assessment of human health risks in Northwestern Himalayan region, India // Journal of Food Science and Technology. 2021. P. 1-10. doi: 10,1007/s 13197-021-04988-8
  • Teglia C.M., Guinez M., Culzoni M.J. Cerutti S. Determination of residual enrofloxacin in eggs due to long-term administration to laying hens. Analysis of the consumer exposure assessment to egg derivatives // Food Chemistry. 2021. V. 351. P. 129279. doi: 10,1016/j.foodchem.2021,129279.
  • Ikkere L.E., Perkons I., Pugajeva I., Gruzauskas R. et al. Direct injection Fourier transform ion cyclotron resonance mass spectrometric method for high throughput quantification of quinolones in poultry // Journal of Pharmaceutical and Biomedical Analysis. 2020, V. 188. P. 113389. doi: 10,1016/j.jpba.2020,113389
  • Yu Y., Liu Y., Wang W., Jia Y. et al Highly sensitive determination of aminoglycoside residues in food by sheathless CE-ESI-MS/MS // Analytical Methods. 2019. V. 11. № 39. P. 5064-5069. doi: 10,1039/c9ay01728c.
  • Kim, Y.R., Kang H.-S. Multi-residue determination of twenty aminoglycoside antibiotics in various food matrices by dispersive solid phase extraction and liquid chromatography-tandem mass spectrometry // Food Control. 2021. V. 130. P. 108374. doi: 10,1016/j.foodcont.2021,108374
  • Ecija-Arenas A., Kirchner E. - M., Hirsch T. Development of an aptamer-based SPR-biosensor for the determination of kanamycin residues in foods // Analytica Chimica Acta. 2021. V. 1169. № 1. P. 338631. doi: 10,1016/j.aca.2021,338631
  • Bladek T., Szymanek-Bany I., Posyniak A. Determination of polypeptide antibiotic residues in food of animal origin by ultra-high-performance liquid chromatography-tandem mass spectrometry // Molecules. 2020. V. 25. № 14. P. 3261. doi: 10,3390/molecules25143261,
  • Ahmed M. Ahmed L.-L., Shen C., Yang Y. et all. Colistin and its role in the Era of antibiotic resistance: an extended review (2000-2019) // Emerging Microbes & Infections. 2020. V. 9. № 1. doi: 10,1080/22221751,2020,1754133
  • Binhashim N.H., Alvi1orcid S.N., Hammami M.M. LC-MS/MS Method for Determination of Colistin in Human Plasma: Validation and Stability Studies // International Journal of Analytical Mass Spectrometry and Chromatography. 2021. V. 9. № 1. doi: 10,4236/ijamsc.2021,91001
  • Li Y., Jin G., Liu L. et al. A portable fluorescent microsphere-based lateral flow immunosensor for the simultaneous detection of colistin and bacitracin in milk // Analyst. 2020. V. 145. (24). P. 7884-7892. doi: 10,1039/d0an01463j
  • Kumar H., Kumar D., Nepovimova E. Determination of colistin b in chicken muscle and egg using ultra-highperformance liquid chromatography-tandem mass spectrometry // International Journal of Environmental Research and Public Health. 2021. V. 18. № 5. P. 2651. doi: 10,3390/ijerph18052651
  • Zhang L., Shi L., He Q., Li Y. A rapid multiclass method for antibiotic residues in goat dairy products by UPLC-quadrupole/electrostatic field orbitrap high-resolution mass spectrometry // Journal of Analytical Science and Technology. 2021. V. 12. № 1. P. 14. doi: 10,1186/s40543-021-00268-4
  • Liu B., Xie J., Zhao Z. Simultaneous determination of 11 prohibited and restricted veterinary drugs and their metabolites in animal-derived foods by ultra performance liquid chromatographytandem mass spectrometry coupled with solid phase extraction // Chinese Journal of Chromatography (Se Pu). 2021. V. 39. № 4. P. 406-414. doi: 10,3724/SP.J. 1123.2020,05012
Еще
Статья научная