Определение потенциала генетической изменчивости Triticum aestivum L., индуцированной с помощью химического мутагена фосфемида
Автор: Боме Н.А., Салех С., Утебаев М.У., Королев К.П., Вайсфельд Л.И.
Журнал: Сельскохозяйственная биология @agrobiology
Рубрика: Генетическая изменчивость
Статья в выпуске: 1 т.59, 2024 года.
Бесплатный доступ
Климатические изменения и растущий спрос на продукты питания делают необходимым поиск эффективных методов улучшения сельскохозяйственных растений. Из имеющихся селекционно-генетических инструментов, позволяющих создавать исходный материал с хозяйственно ценными признаками, перспективно применение индуцированного (искусственного) мутагенеза. В настоящей работе впервые установлен биологический потенциал химического мутагена фосфемида на яровой мягкой пшенице. Выявлено, что обработка семян водным раствором мутагена в оптимальных концентрациях эффективна для увеличения генетической изменчивости и отбора селекционно ценных форм. Нашей целью было увеличение генетического разнообразия яровой мягкой пшеницы ( Triticum aestivum L.) с использованием химического мутагена фосфемида, а также определение биологического потенциала мутантных образцов (М5, М6) по изменчивости различных категорий признаков в условиях Северного Зауралья. В качестве объектов исследования использовали 29 образцов яровой мягкой пшеницы, отобранных из мутантных популяций двух сортов Cara и Скэнт 3, гибрида (Cara × Скэнт 3), а также три контрольных сорта - Тюменская 25, Тюменская 29, Новосибирская 31. Мутантные образцы были получены с помощью химического мутагена фосфемида после обработки семян водным раствором в концентрациях 0,002 и 0,01 % в течение 3 ч. Идентификацию мутаций и проверку их стабильности провели во втором (М2) и третьем (М3) поколениях. В статье приведены результаты исследования мутантов пятого (М5) и шестого (М6) поколений в контрастных метеорологических условиях вегетационных периодов 2021-2022 годов. Посев, наблюдения, учеты, описание морфологических признаков и биологических свойств растений проводили на экспериментальном участке биостанции Тюменского государственного университета «Озеро Кучак» (Тюменская обл., Нижнетавдинский р-н). Электрофорез глиадинов был выполнен на зерновках урожая 2021 года (М5). На основе электрофоретического анализа зерна исходных и мутантных образцов составлены генетические формулы глиадина, определена частота аллелей глиадинкодирующих локусов ( Gli ) и показано, что применение химического мутагена фосфемида позволяет увеличить генетическое разнообразие яровой мягкой пшеницы. В полевых испытаниях выявлены значительные различия между генотипами по ряду количественных признаков (высота растений, линейные размеры и площадь флагового листа, число продуктивных колосьев на 1 м2, длина колоса, число и масса зерен в колосе). Основываясь на результатах корреляционного анализа, установлено, что сила связи между урожайностью и другими признаками зависит от метеорологических условий сезона вегетации. Под воздействием водного и теплового стресса увеличивалась зависимость зерновой продуктивности от числа растений ( r = 0,71, p 2, сохранившихся к уборке, высоты растений ( r = 0,82, p 0,05), числа зерен в колосе ( r = 0,73, p 2, у стандартных сортов 355,0-424,5 г/м2. Таким образом, потенциал адаптации яровой мягкой пшеницы в экстремальных условиях Северного Зауралья может быть увеличен за счет использования генетической изменчивости мутантных популяций. Доказан биологический эффект химического мутагена фосфемида для индуцирования полезных мутаций T. aestivum . Для увеличения генетического разнообразия эффективно комплексное использование мутационной и рекомбинационной изменчивости.
Triticum aestivum, яровая мягкая пшеница, генотип, мутантные формы, глиадинкодирующие локусы, стресс, устойчивость, количественные признаки, корреляция
Короткий адрес: https://sciup.org/142241617
IDR: 142241617 | DOI: 10.15389/agrobiology.2024.1.92rus
Список литературы Определение потенциала генетической изменчивости Triticum aestivum L., индуцированной с помощью химического мутагена фосфемида
- Eastwood R.J., Tambam B.B., Aboagye L.M., Akparov Z.I., Aladele S.E., Allen R., Amri A., Anglin N.L., Araya R., Arrieta-Espinoza G., et al. Adapting agriculture to climate change: a synopsis of coordinated national crop wild relative seed collecting programs across five conti-nents. Plants, 2022, 11(14): 1840 (doi: 10.3390/plants11141840).
- Mutant variety database. Режим доступа: https://nucleus.iaea.org/sites/mvd/SitePages/Home.aspx. Без даты.
- Genetic resources in plants — their exploitation and conservation /O.H. Frankel, E. Bennett, in associations with R.D. Brock, A.H. Bunting, J.R. Harlan, E. Schreiner. Oxford and Edinburgh, 1970.
- Barrett B.A., Kidwell K.K., Fox P. Comparison of AFLP and pedigree-based genetic diversity assessment methods using wheat cultivars from the Pacific Northwest. Crop Science, 1998, 38(5): 1271-1278 (doi: 10.2135/cropsci1998.0011183X003800050026x).
- Van Beuningen L.T., Busch R.H. Genetic diversity among North American spring wheat cultivars: III. Cluster analysis based on quantitative morphological traits. Crop Science, 1997, 37(3): 981-988 (doi: 10.2135/cropsci1997.0011183X003700030046x).
- Smith J.S.C. Genetic variability within U.S hybrid maize: multivariate analysis of isozyme data. Crop Science, 1984, 24(6): 1041-1046 (doi: 10.2135/cropsci1984.0011183X002400060009x).
- Моргун В.В., Катеринчук А.М., Чугункова Т.В. Использование новых стереоизомеров нитрозоалкилмочевины в селекции озимой пшеницы. Известия Самарского научного центра Российской академии наук, 2013, 15(3/5): 1666-1669.
- Ренгартен Г.А. Использование химического мутагенеза в селекции растений в Pоссии и за рубежом. Вестник Курской государственной сельскохозяйственной академии, 2022, 4: 42-46.
- Metakovsky E.V. Gliadin allele identification in common wheat. 1. Methodological aspects of the analysis of gliadin pattern by one-dimensional polyacrylamide — gel electrophoresis. Journal of Genetics and Breeding, 1991, 45(4): 317-324.
- Metakovsky E.V., Novoselskaya A.Yu. Gliadin allele identification in common wheat. II. Cata-logue of gliadin alleles in common wheat. Journal of Genetics and Breeding, 1991, 45(4): 325-344.
- McIntosh R.A., Yamazaki Y., Dubcovsky J., Rogers W.J., Morris C.F., Somers D.J., Appels R., Devos K.M. Catalogue of gene symbols for wheat, 2008. Режим доступа: http://wheat.pw.us-da.gov/GG2/Triticum/wgc/2008/. Без даты.
- Доспехов Б.А. Методика полевого опыта (с основами статистической обработки результатов исследований). М., 2014.
- Градчанинова О.Д., Филатенко А.А., Руденко М.И. Методические указания по изучению мировой коллекции пшеницы. Л., 1987.
- Miralles D.J., Slafer G.A. A simple model for nondestructive estimates of leaf area in wheat. Cereal Research Communications, 1991, 4: 439-444.
- Лакин Г.Ф. Биометрия. М., 1990.
- Вайсфельд Л.И. Динамика перестроек хромосом при действии химического мутагена фос-фемида. Мат. Межд. науч. конф. «Селекційно-генетична наука і освіта (Парієві читання)». Умань, 2021: 40-43.
- Вайсфельд Л.И., Боме Н.А., Татаринов Ф.А. Новый подход к цитогенетической оценке химического мутагена. Мат. Межд. науч.-практ. конф. «Селекция и генетика: инновации и перспективы». Горки, 2022: 173-180.
- Созинов А.А., Метаковский А.А., Поморцев Е.В. Проблемы использования блоков компонентов проламина в качестве генетических маркеров у пшеницы и ячменя. Сельскохозяйственная биология, 1989, 1: 3-12.
- Novoselskaya-Dragovich A.Y., Krupnov V.A., Saifulin R.A., Pukhalskiy V.A. Dynamics of genetic variation at gliadin-coding loci in Saratov cultivars of common wheat Triticum aestivum L. over eight decades of scientific breeding. Russian Journal of Genetics, 2003, 39(10): 1130-1137 (doi: 10.1023/A:1026170709964).
- Nikolaev A.A., Pukhal'sky V.A., Upelniek V.P. Genetic diversity of local spring bread wheats (Triticum aestivum L.) of West and East Siberia in gliadin genes. Russian Journal of Genetics, 2009, 45(2): 189-197 (doi: 10.1134/S1022795409020094).
- Utebayev M., Dashkevich S., Bome N., Bulatova K., Shavrukov Y.Genetic diversity of gliadin alleles in bread wheat (Triticum aestivum L.) from Northern Kazakhstan. PeerJ, 2019, 7: e7082. (doi: 10.7717/peerj.7082).
- Singh N.K., Shepherd K.W., McIntosh R.A. Linkage mapping of genes for resistance to leaf, steam and stripe rust and ω-secalins on the short arm of rye chromosome 1R. Theoretical and Applied Genetics, 1990, 80: 609-616 (doi: 10.1007/BF00224219).
- Mcintosh R.A., Yamazaki Y., Dubcovsky J., Rogers J., Morris C., Appels R., Xia X.C. Catalogue of gene symbols for wheat (12th International wheat genetics symposium). Yokohama, Japan, USDA, 2013.
- Yildirim M., Koç M., Akıncı K., Barutçular K. Variations in morphological and physiological features in wheat diallelic crosses under timely and late planting conditions. Field Crop Research, 2013, 140: 9-17 (doi: 10.1016/j.fcr.2012.10.001).
- Hasan M.A., Ahmed J.U., Bahadur M.M., Haque M.M., Sikder S. Effect of late planting heat stress on membrane thermostability, proline content and heat susceptibility index of different wheat cultivars. Journal of the National Science Foundation Sri Lanka, 2007, 35: 109-117 (doi: 10.4038/jnsfsr.v35i2.3675).
- Kiliç H., Yağbasanlar T. The effect of drought stress on grain yield, yield components and some quality traits of durum wheat (Triticum turgidum) cultivars. Notulae Botanicae Horti Agrobotanici Cluj-Napoca, 2010, 38(1): 164-170.
- Bijanzadeh E., Emam Y. Effect of defoliation and drought stress on yield components and chlo-rophyll content of wheat. Pakistan Journal Biological Sciences, 2010, 13(14): 699-705 (doi: 10.3923/pjbs.2010.699.705).
- Manivannan P., Jaleel C.A., Sankar B., Kishorekumar A., Somasundaram R., Lakshmanan G.A., Panneerselvam R. Growth, biochemical modifications and proline metabolism in Helianthus an-nuus L. as induced by drought stress. Colloids and Surfaces B: Biointerfaces, 2007, 59(2): 141-149 (doi: 10.1016/j.colsurfb.2007.05.002).
- Schonfeld M.A., Johnson R.C., Carver B.F., Mornhinweg D.W. Water relations in winter wheat as drought resistance indicators. Crop Scienсe, 1988, 28(3): 526-531 (doi: 10.2135/crop-sci1988.0011183X002800030021x).
- Nagai T., Makino A. Differences between rice and wheat in temperature responses of photosyn-thesis and plant growth. Plant and Cell Physiology, 2009, 50(4): 744-755 (doi: 10.1093/pcp/pcp029).
- Wardlaw I.F., Dawson I.A., Munibi P., Fewster R. The tolerance of wheat to high temperatures during reproductive growth. I. Survey procedures and general response patterns. Australian Journal of Agricultural Research, 1989, 40(1): 1-13 (doi: 10.1071/AR9890001).
- Bhullar S.S., Jenner C.F. Differential responses to high temperatures of starch and nitrogen ac-cumulation in the grain of four cultivars of wheat. Australian Journal of Plant Physiology, 1985, 12(4): 363-375 (doi: 10.1071/PP9850363).
- Sofi P.A., Ara A., Gull M., Rehman K. Canopy temperature depression as an effective physiological trait for drought screening. In: Drought-detection and solutions /G. Ondrasek (ed.). IntechOpen, 2019: 77-92 (doi: 10.5772/intechopen.85966).
- Sohail M., Hussain I., Qamar M., Tanveer S.K., Abbas S.H., Ali Z., Imtiaz M. Evaluation of spring wheat genotypes for climatic adaptability using canopy temperature as physiological indicator. Paki-stan Journal Biological Sciences, 2020, 33(1): 89-96 (doi: 10.17582/journal.pjar/2020/33.1.89.96).
- Боме Н.А., Вайсфельд Л.И., Бабаев Е.В., Боме А.Я., Колоколова Н.Н. Агробиологические признаки яровой мягкой пшеницы (Triticum aestivum L.) при обработке семян химическим мутагеном фосфемидом. Сельскохозяйственная биология, 2017, 52(3): 570-579 (doi: 10.15389/agrobiology.2017.3.570rus).
- Вайсфельд Л.И., Боме Н.А. Теоретические аспекты химических мутагенов и фенотипических активаторов роста растений, разработанные И.А. Рапопортом (обзор литературных источников). Биосфера, 2022, 14(3): 245-253 (doi: 10.24855/biosfera.v14i3.689).