Оптическая спектроскопия в диагностике раннего остеоартрита (обзор литературы)
Автор: Гончарук Ю.Р., Липина М.М., Лычагин А.В., Тимашев П.С., Вязанкин И.А., Азаркин К.М.
Журнал: Кафедра травматологии и ортопедии @jkto
Рубрика: Обзор литературы
Статья в выпуске: 3 (49), 2022 года.
Бесплатный доступ
На сегодняшний день в медицине активно ведется разработка новых методов клинической, в том числе интраоперационной, диагностики. Существующие на данный момент техники визуализации помогают выявить морфологические особенности, но не предоставляют информацию о клеточном составе и биохимическом состоянии ткани. Тем не менее для решения широкого пула клинических задач необходимо развитие новых методов и разработка приборов, позволяющих быстро и надежно проводить биохимическую диагностику интраартикулярных структур, в частности остеоартрита. Клиническая потребность в аналитических методах, позволяющих выполнять такого рода задачи, обусловлена субъективностью существующих методов диагностики интраартикулярных повреждений.Целью данного обзора является предоставление информации о существующих методах диагностики и определения раннего остеоартрита. Выводы: Оптические методы позволяют проводить анализ биохимического состояния интраартикулярных тканей и дают качественные и воспроизводимые результаты, а также имеют потенциал в использовании артроскопической диагностики. Cпектроскопия диффузного отражения является новым экономически эффективным методом визуализации, который может помочь в ранней диагностике остеоартрита, мониторинге прогрессирования повреждения комплекса хрящ-субхондральная кость и, таким образом, в принятии своевременного и персонифицированного решения относительно тактики лечения.Изменения биохимического состава и морфологические нарушения в суставном хряще, субхондральной кости, а также менисках и связках коленного сустава при прогрессировании ОА нуждаются в дальнейшем систематическом изучении.
Хрящ, остеоартрит, оптическая спектроскопия, спектроскопия диффузного отражения, интраартикулярные повреждения
Короткий адрес: https://sciup.org/142237443
IDR: 142237443 | DOI: 10.17238/2226-2016-2022-3-77-89
Текст обзорной статьи Оптическая спектроскопия в диагностике раннего остеоартрита (обзор литературы)
Conflict of interests: the authors declare no conflict of interest
Funding: the study had no sponsorship
Остеоартрит (ОА) – это заболевание опорно-двигательного аппарата, приводящее к инвалидизации и значительному ухудшению качества жизни пациента.
В данном обзоре мы более подробно рассмотрим ранние стадии остеоартрита, которые характеризуются нарушением суставного гомеостаза с биомеханическими и биохимическими изменениями. Объективная диагностика раннего ОА проблематична из-за отсутствия постоянных клинических симптомов, характерных для поздних стадий заболевания, и классических рентгенологических признаков, таких как сужение суставной щели и остеофиты.
В настоящее время остается актуальным поиск новых, более объективных, методов интраоперационной диагностики. Ни один из применяемых в практике методов не позволяет производить объективную оценку биохимических свойств хряща в реальном времени и обнаруживать мелкие дефекты, незаметные глазу хирурга. Современные методы визуализации позволяют лишь делать выводы о морфологическом состоянии тканей. С такой необходимостью мы сталкиваемся при диагностике широкого спектра нозологий, в частности остеоартрита.
На сегодняшний день остается неясным, возможно ли достоверно диагностировать и идентифицировать ранний ОА и своевременно замедлить или предотвратить структурное заболевание у лиц с ранними симптомами.
Целью данного обзора является предоставление информации о существующих методах диагностики и определения раннего остеоартрита.
В работе проанализированны результаты исследований зарубежных авторов, внесенных в электронную библиографи- ческую базу Medline в период с 1977 по 2021 год, с применением поисковой системы PubMed.
ХРЯЩ
Суставной хрящ (СХ) представляет собой тонкий слой соединительной ткани с вязкоупругими характеристиками. Основными функциями хряща являются обеспечение скольжения суставных поверхностей и равномерное распределение нагрузок на подлежащую субхондральную кость [1,2]. Суставной хрящ состоит из внеклеточного матрикса (ВКМ), хондроцитов и интерстициальной жидкости. Около 20% внеклеточного матрикса приходится на сухое вещество, которое представлено коллагеном, протеогликанами (в значительной степени аггреканом) и гликопротеинами. До 80% влажного веса суставного хряща составляет вода [3]. Протеогликаны обычно представляют собой скопления, образованные высокими концентрациями отрицательно заряженных сульфатированных гликозаминогликанов (сГАГ).
Как показывают исследования, при начальных дегенеративных изменениях СХ содержание сГАГ меняется раньше, чем структура коллагена, что может стать маркером при диагностике [4,5].
Молекулярный состав и структура ткани определяют функции всего хряща: жесткость и эластичность зависит от типа коллагена, упругость при сжатии ткани определяется ее гидратацией. Изменение молекулярного состава хряща, как правило, свидетельствует о его деструкции и развитии патологии [4]. И может встречаться как у людей старшей возрастной группы, так и у лиц молодого возраста.
Изменение функциональных характеристик ткани является предиктором возникновения заболевания. Ранние стадии остеоартрита характеризуются потерей протеогликанов, дезорганизацией коллагена и повышением количества воды, что приводит к размягчению хряща, повышенной пролиферации и гипертрофии хондроцитов, и последующей гибели клеток [6]. При дальнейшем прогрессирования ОА разрушается организация хондронов и в суставном хряще формируются вертикальные трещины. На терминальных стадиях ОА хрящевой матрикс разрушается и обнажается субхондральная кость, что приводит к деформации [3,7]. Своевременное детектирование изменений, происходящих при ОА на молекулярном уровне, позволит предупредить дальнейшую деструкцию хряща.
СУБХОНДРАЛЬНАЯ КОСТЬ
Несмотря на то, что было опубликовано множество работ о различии в механических параметрах интактного и патологически измененного суставного хряща, о морфологии и механических свойствах субхондральной кости нам известно немногое. Субхондральная пластинка — это зона, которая отделяет суставной хрящ от костного мозга и обычно состоит из двух слоев: кальцифицированной области суставного хряща и слоя пластинчатой кости. Определения «субхондральная костная пластинка» или «субхондральная зона» используются для обозначения костной пластинки, которая лежит глубоко в кальцифицированной зоне суставного хряща. Линия, отделяющая кальцинированную зону от субхондральной костной пластинки, называется «цементной линией». Субхондральная костная пластинка различается по толщине в зависимости от конфигурации сустава. Формирующиеся в субхондральной костной пластинке костные трабекулы, называются поддерживающими. Таким образом, субхондральную зону кости образуют субартикулярное губчатое вещество и субхондральная костная пластинка [8].
Строение субхондральной кости
В зависимости от функции конкретных зон субхондральной кости варьирует её морфология, а именно контур линии «tidemark» и цементной линии, количество перфораций в субхондральной костной пластинке, ее толщина, плотность и биохимический состав. Такие различия в структуре и механических свойствах были показаны на примере зон, несущих и не несущих нагрузку [9].
Субхондральная костная пластинка состоит из двух минерализованных слоев, отделяющих суставной хрящ от костного мозга. В зоне соприкосновения пластины с хрящом имеется зона более плотного минерализованного хряща, которая определяется как линия tidemark. Эта линия является рентгенологически более плотной и окрашивается многими гистологическими красителями [10, 11]. Микроскопически линия tidemark является сложной трехмерной структурой и имеет отчетливый трехслойный рисунок. Благодаря этой полоске кальцифицированного хряща создаётся плавный переход между двумя морфологически разными зонами хряща. Суставной некальцинированный хрящ состоит преимущественно из коллагеновых волокон II типа, которые пересекают линию tidemark и переходят в волокна кальцинированного хряща. Эта линия изменяется при различных микротравмах и сдвигается в сторону некальцинированного хряща, что, вероятно, имеет значимые биомеханические функции. Кальцинированный хрящ находится на разном расстоянии от цементной линии к полости костного мозга, где происходит ремоделирование и заменяется пластинчатой костью, похожей на поддерживающие трабекулы. Эти трабекулы имеют преимущественно перпендикулярное направление к суставной поверхности и пересекаются под прямым углом при помощи более тонких трабекул [12].
На разрезе под прямым углом к суставной поверхности видно, что губчатая кость состоит из пластин, которые соединяются вместе, а между пластинами находятся многочисленные промежуточные пространства. В субхондральной области эти пространства напоминают соты, так как имеют примерно одинаковую длину и ширину. Такую картину можно увидеть лишь в местах на несколько миллиметров глубже суставной поверхности. По мере углубления в кость промежуточные пространства значительно увеличиваются, образуя субарти-кулярное губчатое вещество.
Гиалиновый суставной хрящ в основном состоит из коллагена II типа, который составляет более 50% сухой массы хряща, тогда как кальцинированный хрящ содержит в составе коллаген X типа, а замыкательная пластина кортикального слоя - коллаген I типа. Благодаря микроскопии вертикальных срезов мы можем увидеть, что субхондральная пластинка под костно-хрящевым соединением состоит из параллельно идущих коллагеновых фибрилл, которые продолжаются в пластинки костных трабекул [13]. Следует сказать, что коллагеновые волокна не всегда имеют непрерывный ход. Например, между кальцинированным хрящом и кортикальной замыкательной пластинкой нет коллагеновых волокон, из чего следует, что костно-хрящевое соединение является «слабым местом». Наоборот, линия “tidemark” перпендикулярно пересекается коллагеновыми фибриллами, что обеспечивает усиление контакта между кальцинированным и субхондральным хрящами [11].
Тот факт, что хрящевая ткань вплетается в нижележащую субхондральную кость, позволяет преобразовывать воздействующую силу во время сжатия и растяжения. Интактный хрящ выдерживает примерно 2,5–5-кратную пиковую деформацию при нагрузке. Субхондральная зона кости также способствует распределению нагрузок: нормальная субхондральная зона кости может ослабить около 30% нагрузок на суставы, и лишь 1–3% ослабляется хрящевой тканью [12].
Васкуляризация субхондральной костной пластинки
В субхондральной костной пластинке находится большое количество кровеносных сосудов и нервов. Субхондральная пластинка на всей своей глубине пронизана полыми пространствами, которые обеспечивают прямую связь между некальци-фицированным хрящом и полостью костномозгового канала. Данные пространства могут быть классифицированны исходя из их формы [14]. В тех местах, где субхондральная пластинка представлена тонкой полоской, эти пространства расширяются и образуют ампулы. В зонах с большей толщиной субхондральной пластинки мы можем увидеть, что пространства представляют собой каналы, образующие древовидную сеть. Иногда они включают более толстые субхондральные опорные трабекулы. В областях, где нагрузка является наибольшей, такие опорные трабекулы выражены в наибольшей степени [12].
Исходя из большего количества отверстий в зонах повышенной нагрузки, можно предположить, что хрящ и подлежащая кость имеют богатое кровоснабжение [15]. Через эти каналы кровеносные сосуды могут напрямую достигать вышележащего суставного хряща. Работы многих авторов показали, что плотность сосудов на 15–25% выше в нагружаемых областях [16]. Авторы также отметили, что васкуляризация и ремоделирование в субхондральной зоне кости изменяется не только в зависимости от нагрузки, но и от уровня механического стресса.
Там, где имеют место субхондральные каналы [17], питательные вещества могут достигать базальной зоны хряща (в частности, кальцифицированной зоны) так же легко, как происходит диффузия между поверхностью хряща и синовиальной жидкостью [10], но там, где они отсутствуют, хрящ полностью зависит от синовиальной жидкости, как от единственного источника питания [18].
Толщина и минеральная плотность субхондральной костной пластинки
Обычно толщина субхондральной пластинки неоднородна даже в пределах одного сустава и зависит от морфологии конкретно взятого сустава. Хрящ, покрывающий суставную поверхность выпуклой формы, более тонкий и однородный, чем в вогнутой части сустава, где центральная часть обычно представлена более толстой и неоднородной субхондральной пластинкой [14,19].
Более высокая минеральная плотность субхондральной пластинки закономерно характерна для более нагружаемых участков сустава. Таким образом, значения минеральной плотности в субхондральной пластинке сустава концентрически уменьшаются к периферии [9].
Соотношение толщины хряща: конгруэнтность сустава
Ни для кого не секрет, что толщина хряща в разных суставах неодинакова. В среднем толщина хряща в коленных, тазобе- дренных и голеностопных суставах составляет 2,2 (1,7–2,6); 1,6 (1,4–2,0) и 1,2 мм (1,0–1,6) соответственно. Более толстый слой хряща способствует лучшей амортизации, тем самым уменьшая нагрузку на единицу площади, и именно поэтому суставной хрящ оказывается более толстым в областях с низкой конгруэнтностью по сравнению с более тонким хрящом в областях с высокой конгруэнтностью. [12].
Размягчение и увеличение толщины хряща чаще происходит из-за увеличения его гидратации [20]. После восстановления целостности субхондральной костной пластинки костномозговой отёк исчезает, однако в некоторых случаях остаются локальные дефекты. Лишняя вода, содержавшаяся в хрящевой ткани, может быть постепенно вытеснена в субартикулярную кость. Таким образом, можно объяснить образование субхондральных костных кист [21].
ВЗАИМОДЕЙСТВИЕ «СУБХОНДРАЛЬНАЯ КОСТЬ-СУСТАВНОЙ ХРЯЩ»
Субхондральная кость (СК) и суставной хрящ образуют единую, взаимодействующую между собой, функциональную единицу. Изменения биохимического состава или морфологической структуры в каждой из них могут влиять друг на друга [22].
Исследования показали, что целостность СХ при остеоартрите тесно связана с состоянием субхондральной кости [23]. По данным различных авторов, дегенерации СХ предшествует изменение степени минерализации субхондральной пластинки, однако на ранней стадии остеоартрита патологические изменения в субхондральной пластинке отсутствуют [24, 25]. Несмотря на это, имеющиеся результаты не сопоставимы между собой из-за различия образцов, условий и методов проведения исследования.
Минерализация субхондральной кости играет немаловажную роль в патогенезе ОА. По всей видимости, имеется зависимость между содержанием сГАГ в суставном хряще и микроструктурой субхондральной пластинки и трабекулярной кости при прогрессировании ОА. Основным индикатором, отражающим изменения содержания сГАГ в хряще, можно использовать минерально-матриксное соотношение субхондральной кости. Рамановская спектроскопия – инвазивный метод, который позволяет измерять это соотношение; для неинвазивного измерения необходимо учитывать результаты таких методов инструментальной диагностики, как рентгенография и/или МРТ, и сравнивать их с результатами рамановской спектроскопии [10].
ОСТЕОАРТРИТ
Ключевыми клиническими задачами в области ортопедии являются своевременная диагностика, профилактика и лечение патологий суставов. Остеоартрит (ОА) – это заболевание опорно- двигательного аппарата, приводящее к дегенерации хряща в синовиальных суставах (чаще в коленных, тазобедренных, суставах пальцев рук). Остеоартрит является одной из самых частых причин инвалидности среди пожилого населения, от которой страдают 250 миллионов человек во всем мире [3]. Только в Соединенных Штатах Америки ОА ежегодно поражает 1 миллион пациентов, оказывая значительную экономическую нагрузку на здравоохранение [1]. Во всём мире 9,6% мужчин и 18% женщин старше 60 лет имеют симптомы ОА, причем около 80% из них предъявляют жалобы на ограничение подвижности повреждённых суставов и выраженный болевой синдром.
Научные исследования показывают, что ОА – это заболевание, которое поражает все ткани сустава, включая связки, синовиальную оболочку, хрящ и субхондральную кость [26]. Зачастую, конкретную причину развития ОА определить не удаётся. Исключением является посттравматический остеоартрит (ПТОА), который возникает в результате травмы. Полученное травматическое повреждение сустава, ассоциированное с нарушением его биомеханики, значительно увеличивает риск возникновения ПТОА. В этих случаях важна ранняя диагностика, поскольку успешное вмешательство на ранних стадиях заболевания может значительно отсрочить прогрессирование заболевания [27].
РАННИЙ ОСТЕОАРТРИТ
На ранних стадиях заболевания изменение структуры и свойств хряща происходит на молекулярном уровне и характеризуется дезорганизацией и разрушением коллагеновых волокон в поверхностном и среднем слоях, потерей протеогликанов и гибелью хондроцитов. Такие изменения не вызывают видимых повреждений, которые способны выявить современные клинические методы визуализации, для их детектирования необходима разработка новых диагностических решений. Другой важной диагностической проблемой является необходимость анализа механических свойств хряща. Несмотря на то, что макроскопические повреждения хряща возможно определить с помощью современных клинических методов визуализации, охарактеризовать изменения хряща возможно лишь при помощи артроскопии. Простота и удобство такой оценки безусловно является преимуществом, но нужно иметь в виду, что артроскопия характеризуется высокой субъективностью, связанной с оценкой только поверхностных характеристик. При артроскопии зондирование поверхности хряща проводится артроскопическим крючком, который позволяет обнаружить размягчение хряща лишь вокруг его локальных дефектов. Таким образом, значительная часть поверхностных трещин и поражений может остаться незамеченной хирургом во время процедуры. В то же время анализ механических свойств хряща, определяющих его состояние, имеет критическое значение при диагностике, выборе лечения и принятии решения о хирургическом вмешательстве [28].
Выявление факторов риска раннего ОА имеет огромное значение для начала адекватного и своевременного консервативного лечения, и предотвращения прогрессирования заболевания до уровней, при которых реконструктивная хирургия становится единственным выходом [29].
Повреждения связок коленного сустава могут вызвать его нестабильность и, как следствие, привести к развитию ранних дегенеративных изменений. Однако даже после успешной реконструкции передней крестообразной связки (ПКС) сохраняется повышенный риск развития ОА. Уже через 1 год после реконструкции ПКС ранние признаки пателлофеморального и тибиофеморального ОА могут наблюдаться на МРТ у некоторых пациентов; выявлена прямая корреляция с менискэктомиями и избыточной массой тела [30]. Повреждения менисков, если их лечить с помощью частичной менискэктомии, снижают амортизационную функцию сустава, обнажают прилегающий суставной хрящ плато большеберцовой кости и мыщелка бедренной кости и увеличивают сжимающие и сдвигающие нагрузки на хрящ[31]. Осевое смещение нижней конечности приводит к увеличению нагрузки на медиальный (варусное смещение) или латеральный (вальгусное смещение) отделы сустава. Аналогично, любая дополнительная нагрузка на сустав (из-за избыточной массы тела или повышенной физической активности) представляет собой повышенный риск развития раннего ОА. Индекс массы тела (ИМТ) >30 определяет в три раза больший риск развития ОА по сравнению с нормальным весом, как при повышенной нагрузке на суставы, так и при метаболических изменениях с более высокими провоспали-тельными факторами. И наоборот, потеря веса снижает риск развития ОА коленного сустава и улучшает его функцию [29]. Кроме того, умеренные физические нагрузки являются фактором профилактики [32].
Существуют общепринятые критерии ранней диагностики ОА, такие как боль в коленном суставе, рентгенологиечские изменения степени 0, I или II по классификации Келлгре-на-Лоуренса и по крайней мере, один из двух следующих структурных критериев – артроскопические признаки поражения хряща; результаты МРТ, демонстрирующие дегенерацию суставного хряща и/или мениска, и/или субхондральные повреждения костного мозга. Ранее предполагалось, что для диагностики раннего ОА боль должна присутствовать продолжительностью более 10 дней как минимум в двух эпизодах за последний год [33]. Пациенты с ранним ОА в основном описывают непостоянную диффузную боль в суставах, сопровождающуюся небольшим отеком после чрезмерной нагрузки (например, занятий спортом), легкой крепитацией и/или болью при нагрузке. Боль облегчается отдыхом или такими видами деятельности, как езда на велосипеде с низким сопротивлением [34]. Боль при подъеме по лестнице часто является одним из ранних симптомов. Положение на коленях или приседание связано с повышенным ощущением боли во время или после спортивных упражнений [35].
Также можно предположить дополнительную нагрузку на субхондральную кость, приводящую к соответствующей боли при нагрузке, но до сих пор не было опубликовано никаких исследований [31].
ГИСТОПАТОЛОГИЧЕСКОЕ ОПРЕДЕЛЕНИЕ РАННЕГО ОСТЕОАРТРИТА
Ранние проявления ОА включают разрушение внеклеточного матрикса хондроцитов, связанное с патологической активацией поверхностных рецепторов клеток. Синтез белков поверхностной зоны (например, лубрицина) изменяется, что приводит к повышению силы трения суставных поверхностей [36] [29]. Снижение содержания сГАГ в хряще является предиктором возникновения раннего остеоартрита [25]. Для изучения патогенеза и ранней его диагностики следует уделять больше внимания оценке минерализации субхондральной кости в дополнение к ее микроструктуре [37].
Содержание протеогликанов на поверхности также снижается, а поверхностные части коллагеновой сети типа 2 разрушаются и вскоре обнажаются. Поверхностные хондроциты изменяют свою архитектонику и образуют кластеры. Несмотря на то, что потеря протеогликанов может быть обратимой, изменения в структуре коллагеновой сети являются необратимыми, поскольку поврежденная коллагеновая сеть не способна к восстанолению. Небольшие фрагменты коллагена высвобождаются, активируя провоспалительные цепочки внутри хряща и вызывая воспаление синовиальной оболочки. Такое хроническое воспаление часто присутствует в течение длительного времени, что еще больше способствует раннему повреждению хряща. Также повышается катаболическая активность [38], что приводит к биохимическим изменениям в составе внеклеточного матрикса (ВКМ), вызывая изменение его способности аккумулировать воду при снижении механической прочности, приводя к более выраженным деформациям хряща под воздействием нагрузки [39]. Поверхностная структура постепенно утрачивается, появляются трещины и хрящ истончается [29].
ДИАГНОСТИКА ОСТЕОАРТРИТА
Для определения степени повреждения хряща или стадии заболевания, существует большое количество классификаций и шкал, применяемых в оценке патологии хряща. В 1957 году Келлгреном и Лоуренсом была предложена классификация рентгенологического определения ОА. В 1961 году была предложена оценка макроскопического состояния хряща, которая предусмотривает 4 степени поражения суставного хряща [40].
Широкое применение в клинической практике получила классификация дефектов хряща, также основанная на артроскопической оценке его состояния, предложенная Международным обществом восстановления хряща (ICRS) в 2000 году [41]. Она предусматривает 5 степеней повреждения. В 1987 году Yulish
B.S. и соавторы разработали классификацию, основанную на данных магнитно-резонансной томографии, и выделили 4 степени поражения [42]. В 2004 г. была разработана классификация оценки восстановления хрящевой ткани, также основанная на результатах магнитно-резонансной томографии (МРТ) [43].
УЗИ является менее пригодным для оценки состояния хряща, так как чувствительность УЗИ в выявлении деградации хряща составила около 10% [44], как и рентгенография, которая позволяет выявить свободные костно-хрящевые фрагменты и сужение суставной щели, что является лишь косвенным признаком ОА и требует ряда дополнительных исследований для уточнения причин [45].
В диагностике патологии суставного хряща повсеместно используется магнитно-резонансная томография (МРТ). Стандартное МР-исследование суставного хряща коленного сустава включает в себя Т2 и PD быстрые спин-эхо (FSE) последовательности с использованием программ жироподавления. Методика Т2-картирования показывает изменения архитектоники коллагена, его биомеханическую целостность и содержание воды в суставном хряще [46]. Нужно понимать, что оценка состояния хряща в значительной степени будет зависеть от интерпретации изображения, и использование такого протокола оказывается недостаточным для оценки начальных изменений хрящевого матрикса, особенно на ранних этапах, связанных с биохимической трансформацией хряща [46]. Кроме того, существует ряд ограничений метода МРТ, среди которых низкое пространственное разрешение, высокая стоимость, продолжительность обследования и ограниченная доступность [48].
Возможности клинической диагностики ОА на сегодняшний день не ограничены ультразвуковым исследованием (УЗИ), рентгенографией и магнитно-резонансной томографией (МРТ) [49].
Золотым стандартом диагностики интраартикулярной патологии коленного сустава остается диагностическая артроскопия [50]. Однако, артроскопия основана на субъективной визуальной и тактильной оценке, в то время как начальные проявления деградации суставного хряща включают в себя изменение структуры и концентрации его ключевых компонентов – протеогликанов, межклеточной жидкости, коллагена. Раннее выявление изменений на молекулярном уровне является одним из основных критериев своевременной диагностики раннего остеоартрита.
Ни один из перечисленных методов не позволяет производить объективную оценку биохимических свойств хряща, а также не позволяет обнаружить мелкие дефекты, незаметные глазу хирурга. Ограничения клинических методов диагностики, используемых на данный момент для оценки состояния суставных хрящей, ускоряют разработку новых методов и подходов малоинвазивной оценки состояния суставного хряща.
Стоит отметить, что в настоящее время существуют трудности с своевременной терапией ОА вследствие того, что используемые в клинической практике методы диагностики не позволяют обнаружить ранние проявления ОА [51].
Надежными и объективными являются методы, способные оценивать параметры тканей на молекулярном уровне, особенно когда речь идёт о раннем ОА.
Актуальными и востребованными подходами для решения таких задач являются методы лазерной и оптической спектроскопии, позволяющие производить анализ биохимических параметров тканей в реальном времени. Среди таких методов обращают на себя внимание оптическая когерентная томография (ОКТ) [28], спектроскопия диффузного отражения и фотоакустическая спектроскопия [52,53].
Оптическая когерентная томография (ОКТ) — это метод визуализации, основанный на измерении отражения и обратного рассеяния ближнего инфракрасного света от тканей, на сегодняшний день широко используемый в сердечно-сосудистой хирургии и офтальмологии. Преимуществом этого метода является способность визуализировать поперечное сечение трехмерных объектов с разрешением, сравнимым с разрешением микроскопии с низким увеличением [54]. Экспериментально было показано, что ОКТ коррелирует с Т2-картированием МРТ и с прогрессирующей дегенерацией хряща. Также было обнаружено, что ОКТ улучшает качество артроскопии за счет визуализации с высоким разрешением как подповерхностных, так и поверхностных аномалий, предоставляя хирургу данные в реальном времени. В клинико-диагностическом исследовании Chu et al. сравнили ОКТ и T2- картирование МРТ мощностью 3 Tесла с артроскопией в качестве клинического стандарта у 30 человек, перенесших артроскопию по поводу дегенеративных разрывов мениска. [28,55].
СПЕКТРОСКОПИЯ
Инфракрасная (ИК) спектроскопия является одним из наиболее эффективных спектроскопических методов диагностики интраартикулярных повреждений. Среди основных методов оптической спектроскопии самыми точными методами регистрации спектров биологических тканей являются диффузное отражение (ДО) и фотоакустическая спектроскопия (ФАС). Как многие другие биологические ткани, суставной хрящ содержит связи C-H, O-H, N-H и S-H, которые отвечают за поглощение или рассеяние света в ткани в инфракрасном спектральном диапазоне [56]. Таким образом, данные оптические методы позволяют получить информацию о патологических изменениях поврежденных тканей при ОА на молекулярном уровне.
Ближняя инфракрасная спектроскопия
Ближняя инфракрасная (БИК) спектроскопия — это метод колебательной спектроскопии в спектральном диапазоне 800–2500 нм [57], который дает сложные пики поглощения, являющиеся результатом обертонов основных пиков поглощения в инфракрасном спектральном диапазоне (2500–20000 нм) [58]. Поглощение в БИК спектральном диапазоне происходит из-за обертонов и комбинаций валентных и деформационных колебаний связей O-H, C-H, N-H и S-H [59], которые являются основными молекулярными связями в живых тканях человека. Пики в БИК-спектроскопии имеют тенденцию быть широкими и перекрываться; таким образом, этот метод неспецифичен и основан на хемометрике и многомерном анализе для извлечения скрытой/латентной информации из спектров тканей.
Благодаря способности БИК-спектроскопии оценивать ключевые химические, физические и функциональные свойства биологических материалов, метод был принят для оценки изменений функциональных, биохимических и структурных свойств суставного хряща [60].
Фотоакустическая спектроскопия
Фотоакустическая спектроскопия (ФАС) имеет большую глубину проникновения и может поддерживать высокое разрешение во всем поле зрения [61]. ФА-сигнал, генерируемый менее поврежденной хрящевой тканью, имеет более высокое отношение сигнал/шум и выглядит как гладкая и непрерывная поверхность. Представленный метод смог количественно идентифицировать различные стадии ОА в соответствии с гистологическими оценками. Ограничением является то, что ФА-спектральные данные здорового человеческого хряща не были получены из-за практической недоступности таких образцов, таким образом метод не был стандартизован и не может применяться в клинической практике.
На ФА-изображениях субхондральная кость видна в определенном спектральном диапазоне, что также позволяет отслеживать изменения ее состава. Следовательно, будущее исследование ФАС-визуализации субхондральной кости может быть полезным и улучшить понимание патогенеза ОА. Более того, поскольку ФА-визуализация очень чувствительна к эндогенному контрасту, такому как гемоглобин, липиды и коллаген [62], она может потенциально использоваться для визуализации кровоснабжения, фиброзного капсульного слоя, трансплантатов мениска и крестообразной связки сустава. Cпектральные ФА изменения связаны с различной степенью повреждения хряща, что было подтверждено гистологически [63].
Обнаружение потенциального расслоения хряща
Деламинация хряща определяется как лоскут или дефект хряща с резкими краями и имеет большое клиническое значение. Образцы хряща с расслоением представляют собой уникальную спектральную ФА картину, которую можно использовать для различия дегенерации от расслоения хряща – интенсивность ФА сигналов в очаге расслоения обычно намного ниже. Точная предоперационная идентификация расслоившегося хряща имеет важное значение и влияет на дальнейший план лечения [63].
Характеристика целостности суставного хряща: количественная оценка травматических и дегенеративных повреждений
В дополнение к определению микро- и макроскопических свойств суставного хряща с помощью БИК-спектроскопии, был также предложен и применен метод количественной оценки повреждения хряща, как потенциальное средство оценки в режиме реального времени в ходе интраартикулярных оперативных вмешательств. В настоящее время повреждения хряща оцениваются артроскопически в соответствии с системой оценки ICRS [64], которая основана на относительной глубине повреждения. Однако было показано, что этот метод плохо воспроизводим [50] из-за субъективности оперирующего врача. Таким образом, БИК-спектроскопия была предложена в качестве потенциального метода объективной оценки дефекта хряща [52].
Водно-амидное соотношение
Водно-амидное соотношение представляет собой отношение величины пиков поглощения полосы амид-вода (первые обертоны комбинации OH и CH) к амидной полосе (второй обертон CH) и количественно определяет содержание воды в хрящах. Параметр основан на понимании того, что дегенерация приводит к увеличению содержания воды в хрящах. Самый низкий показатель соотношения определяется в нормальном хряще, самый высокий – в случае выраженного ОА. Этот параметр был использован Spahn et al. для различения дефектов хряща 1 и 2 степени в суставах человека [50, 52,57].
Спектроскопия диффузного отражения
Для применения в условиях операционной активно развивается метод спектроскопии диффузного отражения (СДО). Для реализации метода СДО обычно используют источник белого света, затем диффузно-отраженный свет регистрируется спектрометром, что позволяет производить анализ оптического поглощения и рассеивающих свойств образца, в том числе в ближней инфракрасной (ИК) области. В биологических тканях наиболее заметны линии поглощения гемоглобина, меланина и воды – в зависимости от интересующего спектрального диапазона, они могут быть характерны для определенных типов тканей [65]. Например, определяя коэффициент поглощения тканей, был определен объем крови и уровень оксигенации внутри кровеносных сосудов ex vivo [66]. С другой стороны, параметры рассеяния ткани могут быть связаны с микроструктурой образца [67]. Хорошо известно, что спектральный наклон коэффициента рассеяния коррелирует со средним размером основных рассеивателей [67], и было показано, что распределение размеров рассеивателей, а также толщина суставного хряща коленного сустава человека [68] может быть также определена с помощью метода СДО. С использованием данного метода была проведена диагностика содержания жира и нервных клеток, а также обнаружена дисплазия in vivo [69].
Предварительные данные, полученные с использованием данного метода, также показали различие между хрящом и костью [65]. Более того, были реализованы первые разработки применения методов машинного обучения для анализа спектров СДО с целью автоматического определения типа ткани при операции [70]. Сигнал отраженного света галогенной лампы от образцов хряща, субхондральной кости, мениска и губчатого вещества кости детектировался с использованием оптоволоконного спектрометра с минимальным разрешением 2,0 нм и Si CCD камеры. В результате проделанной работы было показано, что данный метод позволяет добиться точности классификации более 99%. Чувствительность метода СДО к различным типам ткани составляет: хрящ 99,7%, субхондральная кость 99,2% и губчатое вещество 100%. Более широкий диапазон длин волн с разрешением по длине волны более 8 нм позволяет добиться максимальной точности классификации. Для достижения точности классификации более 50% требовалось соотношение сигнал/шум более 10:1. Диапазон длин волн 800-900 нм позволяет добиться наибольшей точности дифференцировки.
Современные хирургические технологии в ортопедии полагаются на субъективную оценку хирургов, которые визуально дифференцируют ткани. Технология СДО относительно проста, рентабельна и обеспечивает бесконтактный подход к дифференциации тканей. Были предприняты попытки диагностики измерения молекулярной структуры эксплантов суставного хряща и субхондральной кости человека с использованием установки, позволяющей одновременное детектирование с использованием метода СДО и рамановской спектроскопии [74]. Ее использование в качестве диагностического инструмента уже показано при исследовании ткани мочевого пузыря, где спектры упругого рассеяния были получены с использованием фиброоптического зонда, встроенного в урологический цистоскоп, а также типов ткани мозга, где определение оптических свойств в ближнем инфракрасном диапазоне производилось путем измерения пространственно разрешенного диффузного отражения [71], ткани груди, где использовалась спектроскопия упругого рассеяния, опосредованная фиброоптическими зондами, ткани шейки матки, ткани толстой кишки и пищевода, а также ткани яичников, поджелудочной железы и кожи [69,72,73].
Тем не менее, на данный момент существует нехватка работ, посвященных применению техники СДО для исследования состояния ткани хряща при ОА in vivo . С помощью данного метода можно не только осуществлять навигацию и дифференцирование ткани, что значительно дополнит разрабатываемую в данной работе уникальную научную установку, но также получить ряд важных параметров патологического состояния хряща, таких как измерение концентрации воды на разной глубине в образце, позволяющую определить глубину поражения, которую не исследовали до настоящего времени.
Содержание воды является важным диагностическим параметром, и данный метод уже был успешно применен для оценки увлажненности кожи [75] и был также успешно использован для определения раковой ткани в случае онкологии груди [76]. В то же время при воспалительных процессах в хрящевой ткани, обычно наблюдается увеличение содержания воды в среднем от 60–85% до более 90%. Вследствие чего особый интерес представляет сравнение содержания воды в хряще с его вязкоупругими свойствами и анализ выявления нарушения гомеостаза ткани по данным характеристикам. При анализе спектров субхондральной кости был сделан вывод об увеличении минерализованных компонентов в суставах, пораженных ОА.
Извлечение и анализ эффективной спектральной информации может помочь отличить суставы, пораженные ОА, от здоровых, тем самым повышая вероятность ранней диагностики ОА.
Так в работе с использованием метода спектроскопии диффузного рассеяния (ДРС) было реализовано количественное описание и характеризация, а также детектирование биомо-лекулярных изменений тканей. Была разработана уникальная научная установка, являющаяся мобильной и позволяющая по набору маркеров производить экспресс диагностику состояния ткани хряща ex vivo [77]. Конструкция специально разработанного приемо-передающего зонда, предполагающая совмещение с индентором, позволила реализовать одновременное картирование и разработку классификаторов взаимосвязи индикаторов молекулярных характеристик и механических свойств эксплантов. В дальнейшем планируется применение данной установки в условиях операционной.
ВЫВОДЫ
Во время артроскопических операций важную роль играют методы оценки состояния хряща. Существующие в настоящее время технологии опираются на субъективные способы детектирования патологических изменений только хрящевой ткани, тогда как огромное значение имеет оценка молекулярной структуры и комплекса «суставной хрящ-субхондральная кость» в целом.
Разработка и оптимизация метода интраоперационной оптической спектроскопии значительно повысит точность диагностической артроскопии, благодаря совмещению оптического и оптоакустического подходов.
Проанализировав существующие научные работы по применению оптической спектроскопии, все еще остается ряд нерешённых вопросов, на которые следует ответить прежде, чем этот метод сможет стать рутинным как для клинической, так и для лабораторной диагностики поражений суставного хряща.
Дальнейшее изучение ОКТ и связанных с ней новейших технологий оценки суставного хряща поможет в ранней диагностике ОА, необходимой для применения стратегий лечения на ранних стадиях заболевания, позволяющих отсрочить или предупредить начало остеоартрита.
Проведенные исследования демонстрируют потенциал визуализации СДО как многообещающего инструмента для объективного и точного обнаружения повреждения хряща. В скором времени, спектроскопия диффузного отражения может стать новым альтернативным, экономически эффективным методом визуализации, который может помочь в ранней диагностике остеоартрита, мониторинге прогрессирования повреждения хряща и в выборе персонифицированной тактики лечения.
Изменения биохимического состава и морфологические нарушения в суставном хряще и субхондральной кости при прогрессировании ОА нуждаются в дальнейшем систематическом изучении.
Список литературы Оптическая спектроскопия в диагностике раннего остеоартрита (обзор литературы)
- Makovicka JL, Patel KA, Hassebrock JD, Hartigan DE, Wong M, Chhabra A. Arthroscopic Evaluation of Knee Cartilage Using Optical Reflection Spectroscopy. Arthrosc Tech. 2019;8(4):e399-e405. Published 2019 Mar 25. https://doi.org/10.1016/j.eats.2018.11.019
- Huber, Monika, Siegfried Trattnig, and Felix Lintner. “Anatomy, biochemistry, and physiology of articular cartilage.” Investigative radiology 35.10 (2000): 573-580. https://doi.org/10.1097/00004424-200010000-00003
- Virtanen, Vesa & Nippolainen, Ervin & Shaikh, Rubina & Afara, Isaac & Töyräs, Juha & Solheim, Johanne & Tafintseva, Valeria & Zimmermann, Boris & Kohler, Achim & Saarakkala, Simo & Rieppo, Lassi. (2021). Infrared Fiber-Optic Spectroscopy Detects Bovine Articular Cartilage Degeneration. CARTILAGE. 194760352199322. https://doi.org/10.1177/1947603521993221
- Pearle AD, Warren RF, Rodeo SA (2005) Basic science of articular cartilage and osteoarthritis. Clin Sports Med 24(1):1–12. https://doi.org/10.1016/j.csm.2004.08.007
- van Tiel J, Siebelt M, Reijman M, Bos P, Waarsing J, Zuurmond A-M, Nasserinejad K, van Osch G, Verhaar J, Krestin G (2016) Quantitative in vivo CT arthrography of the human osteoarthritic knee to estimate cartilage sulphated glycosaminoglycan content: correlation with ex-vivo reference standards. Osteoarthr Cartil 24(6):1012–1020. https://doi.org/10.1016/j.joca.2016.01.137
- Armstrong CG, Mow VC. Variations in the intrinsic mechanical properties of human articular cartilage with age, degeneration, and water content. J Bone Joint Surg Am. 1982;64(1):88-94.
- Arakawa K, Takahata K, Enomoto S, et al. The difference in joint instability affects the onset of cartilage degeneration or subchondral bone changes [published online ahead of print, 2021 Dec 11]. Osteoarthritis Cartilage. 2021;S1063-4584(21)01001-3. https://doi.org/10.1016/j.joca.2021.12.002
- Duncan H, Jundt J, Riddle JM, Pitchford W, Christopherson T. The tibial subchondral plate. A scanning electron microscopic study. J Bone Joint Surg Am. 1987;69(8):1212-1220.
- Muller-Gerbl M, Dalstra M, Ding M, Linsenmeier U, Putz R, Hvid I (1998) Distribution of strength and mineralization in the subchondral bone plate of human tibial heads. J Biomech 31(Suppl 1):123 Proceedings of the 11th conference of the european society of biomechanics. ISSN:0021-9290
- Stewart H.L., Kawcak C.E. The importance of subchondral bone in the pathophysiology of osteoarthritis. Front Vet Sci. 2018; 5: 1-9. https://doi.org/10.3389/fvets.2018.00178
- Lyons TJ, Stoddart RW, McClure SF, McClure J (2005) The tidemark of the chondro-osseous junction of the normal human knee joint. J Mol Histol 36:207–215. https://doi.org/10.1007/s10735-005-3283-x
- Madry H, van Dijk CN, Mueller-Gerbl M. The basic science of the subchondral bone. Knee Surg Sports Traumatol Arthrosc. 2010;18(4):419-433. https://doi.org/10.1007/s00167-010-1054-z
- Inoue H (1981) Alterations in the collagen framework of osteoarthritic cartilage and subchondral bone. Int Orthop 5:47– 52. https://doi.org/10.1007/BF00286099
- Milz S, Putz R (1994) Quantitative morphology of the subchondral plate of the tibial plateau. J Anat 185(Pt 1):103–110
- Berry JL, Thaeler-Oberdoerster DA, Greenwald AS (1986) Subchondral pathways to the superior surface of the human talus. Foot Ankle 7:2–9. https://doi.org/10.1177/107110078600700103
- Lane LB, Villacin A, Bullough PG (1977) The vascularity and remodeling of subchondral bone and calcified cartilage in adult human femoral and humeral heads. An age- and stress-related phenomenon. J Bone Joint Surg Br 59:272–278. https://doi.org/10.1302/0301-620X.59B3.893504
- Hwang J, Bae WC, Shieu W, Lewis CW, Bugbee WD, Sah RL (2008) Increased hydraulic conductance of human articular cartilage and subchondral bone plate with progression of osteoarthritis. Arthritis Rheum 58:3831–3842. https://doi.org/10.1002/art.24069
- Arkill KP, Winlove CP (2008) Solute transport in the deep and calcified zones of articular cartilage. Osteoarthr Cartil 16:708– 714. https://doi.org/10.1016/j.joca.2007.10.001
- Dewire P, Simkin PA (1996) Subchondral plate thickness reflects tensile stress in the primate acetabulum. J Orthop Res 14:838–841. https://doi.org/10.1002/jor.1100140524
- Newberry WN, Mackenzie CD, Haut RC (1998) Blunt impact causes changes in bone and cartilage in a regularly exercised animal model. J Orthop Res 16:348–354. https://doi.org/10.1002/jor.1100160311
- van Dijk CN, Reilingh ML, Zengerink M, van Bergen CJG (2010) The natural history of osteochondral lesions in the ankle. JAAOS Instr Course Lect 59
- Radin EL, Rose RM (1986) Role of subchondral bone in the initiation and progression of cartilage damage. Clin Orthop Relat R 213:34–40
- Lories RJ, Luyten FP (2011) The bone–cartilage unit in osteoarthritis. Nat Rev Rheumatol 7(1):43. https://doi.org/10.1038/nrrheum.2010.197
- Yamada K, Healey R, Amiel D, Lotz M, Coutts R (2002) Subchondral bone of the human knee joint in aging and osteoarthritis. Osteoarthr Cartil 10(5):360–369. https://doi.org/10.1053/joca.2002.0525
- van der Harst MR, Brama PA, van de Lest CH, Kiers GH, DeGroot J, van Weeren PR (2004) An integral biochemical analysis of the main constituents of articular cartilage, subchondral and trabecular bone. Osteoarthr Cartil 12(9):752–761. https://doi.org/10.1016/j.joca.2004.05.004
- Roos EM, Arden NK. Strategies for the prevention of knee osteoarthritis. Nat Rev Rheumatol. 2016;12(2):92101. https://doi.org/10.1038/nrrheum.2015.135
- Sarin J.K. et al. Machine learning augmented near-infrared spectroscopy: In vivo follow-up of cartilage defects. Osteoarthritis and Cartilage. 29 (2021): 423e432. https://doi.org/10.1016/j.joca.2020.12.007
- Chu C.R., Williams A., Tolliver D., Kwoh C.K., Bruno S., Irrgang J.J. Clinical Optical Coherence Tomography of Early Articular Cartilage Degeneration in Patients With Degenerative Meniscal Tears. Arthritis Rheum. 2010;62:1412–1420. https://doi.org/10.1002/art.27378
- Madry, H., Kon, E., Condello, V. et al. Early osteoarthritis of the knee. Knee Surg Sports Traumatol Arthrosc 24, 1753–1762 (2016). https://doi.org/10.1007/s00167-016-4068-3
- Culvenor AG, Collins NJ, Guermazi A, et al. Early knee osteoarthritis is evident one year following anterior cruciate ligament reconstruction: a magnetic resonance imaging evaluation. Arthritis Rheumatol. 2015;67(4):946-955. https://doi.org/10.1002/art.39005
- Madry, H., Luyten, F.P. & Facchini, A. Biological aspects of early osteoarthritis. Knee Surg Sports Traumatol Arthrosc 20, 407–422 (2012). https://doi.org/10.1007/s00167-011-1705-8
- Batsis JA, Germain CM, Vásquez E, Zbehlik AJ, Bartels SJ. Physical Activity Predicts Higher Physical Function in Older Adults: The Osteoarthritis Initiative. J Phys Act Health. 2016;13(1):6-16. https://doi.org/10.1123/jpah.2014-0531
- Luyten FP, Denti M, Filardo G, Kon E, Engebretsen L. Definition and classification of early osteoarthritis of the knee. Knee Surg Sports Traumatol Arthrosc. 2012;20(3):401-406. https://doi.org/10.1007/s00167-011-1743-2
- Bijlsma JW, Berenbaum F, Lafeber FP. Osteoarthritis: an update with relevance for clinical practice. Lancet. 2011;377(9783):2115-2126. https://doi.org/10.1016/S0140-6736(11)60243-2
- Felson DT, Hodgson R (2014) Identifying and treating preclinical and early osteoarthritis. Rheum Dis Clin N Am 40(4):699–710 https://doi.org/10.1016/j.rdc.2014.07.012
- Ritter SY, Collins J, Krastins B, et al. Mass spectrometry assays of plasma biomarkers to predict radiographic progression of knee osteoarthritis. Arthritis Res Ther. 2014;16(5):456. Published 2014 Oct 7. https://doi.org/10.1186/s13075-014-0456-6
- Ren P, Niu H, Cen H, Jia S, Gong H, Fan Y. Biochemical and Morphological Abnormalities of Subchondral Bone and Their Association with Cartilage Degeneration in Spontaneous Osteoarthritis. Calcif Tissue Int. 2021;109(2):179-189. https://doi.org/10.1007/s00223-021-00834
- Scanzello CR, Goldring SR. The role of synovitis in osteoarthritis pathogenesis. Bone. 2012;51(2):249-257. https://doi.org/10.1016/j.bone.2012.02.012
- Ryd L, Brittberg M, Eriksson K, et al. Pre-Osteoarthritis: Definition and Diagnosis of an Elusive Clinical Entity. Cartilage. 2015;6(3):156-165. https://doi.org/10.1177/1947603515586048
- Outerbridge H.K . Osteochondral defects in the knee. A treatment using lateral patella autografts. / H.K.Outerbridge, R.E.Outerbridge, D.E.Smith // Clin. Orthop. Relat. Res. – 2000. –Vol.377. – P.145-151.
- ICRS Cartilage Injury Evaluation Package //Materials of ICRS. Standards Workshop at Schloss Munchenwieler, Switzerland. 2000.
- Yulish BS, Montanez J, Goodfellow DB, Bryan PJ, Mulopulos GP, Modic MT. Chondromalacia patellae: assessment with MR imaging. Radiology. 1987;164(3):763-766. https://doi.org/10.1148/radiology.164.3.3615877
- Marlovits S. Magnetic resonance observation of cartilage repair tissue (MOCART) for the evaluation of autologous chondrocyte transplantation: Determination of interobserver variability and correlation to clinical outcome after 2 years. / S.Marlovits, P.Singer, P.Zeller // Eur. J. Radiol. – 2006. – Vol.57(1). – P.16-23. https://doi.org/10.1016/j.ejrad.2005.08.007
- Saarakkala S., Toyras J., Hirvonen J., Laasanen M.S., Lappalainen R., Jurvelin J.S. Ultrasonic quantitation of superficial degradation of articular cartilage. Ultrasound Med. Biol. 2004;30:783–792. https://doi.org/10.1016/j.ultrasmedbio.2004.03.005
- Saleem M., Farid M.S., Saleem S., Khan M.H. X-ray image analysis for automated knee osteoarthritis detection. Signal. Image Video Process. 2020;14:1079–1087. https://doi.org/10.1007/s11760-020-01645-z
- Nasnikova I.Yu., Morozov S.P., Filisteev P.A. MAGNETIC RESONANCE IMAGING: METHODS FOR QUANTITATIVE ASSESSMENT OF THE STATE OF THE ARTicular Cartilage IN PATIENTS WITH OSTEOARTHRITIS RUSSIAN ELECTRONIC JOURNAL OF RADIOLOGY Volume 1 No. 3 2011. Page 75 . (In Russian)
- David-Vaudey E, Ghosh S, Ries M, Majumdar S. T2 relaxation time measurements in osteoarthritis. Magnetic Resonance Imaging. 2004;22(5):673–682 https://doi.org/10.1016/j.mri.2004.01.071
- Amin, Shreyasee, et al. The relationship between cartilage loss on magnetic resonance imaging and radiographic progression in men and women with knee osteoarthritis. Arthritis & Rheumatism: Official Journal of the American College of Rheumatology 52.10 (2005): 3152-3159. https://doi.org/10.1002/art.21296
- Zhang X.M., Tong H.Y., Zhang J., Xu J.Y., Xia S.Y. Diagnostic Value of 3.0T MRI in Cartilage Injury Grading of Knee Osteoarthritis. J. Med. Imaging Health Inform. 2020;10:2979–2984. https://doi.org/10.1166/jmihi.2020.3247
- Spahn G, Klinger HM, Hofmann GO. How valid is the arthroscopic diagnosis of cartilage lesions? Results of an opinion survey among highly experienced arthroscopic surgeons. Arch Orthop Trauma Surg 2009;129:1117-1121. https://doi.org/10.1007/s00402-009-0868-y
- Friemert B., Oberlander Y., Schwarz W.et al. Diagnosis of chondral lesions of the knee joint: can MRI replace arthroscopy? a prospective study // Knee Surgery, Sports Traumatology, Arthroscopy. 2004. Т. 12. № 1. С. 58-64. https://doi.org/10.1007/s00167-003-0393-4
- Olumegbon, Ismail Adewale, Adekunle Oloyede, and Isaac Oluwaseun Afara. Near-infrared (NIR) spectroscopic evaluation of articular cartilage: A review of current and future trends. Applied Spectroscopy Reviews 52.6 (2017): 541-559. https://doi.org/10.1080/05704928.2016.1250010
- Ma D.Y., Zhao Y., Shang L.W., Zhu Y.K., Fu J.J., Lu Y.F., Yin J.H. Research Progress of Raman Spectroscopy Application for Articular Cartilage and Osteoarthritis. Spectrosc. Spect. Anal. 2020;40:2029–2034. https://doi.org/10.3964/j.issn.1000-0593(2020)07-2029-06
- Niemelä, T., Virén, T., Liukkonen, J. et al. Application of optical coherence tomography enhances reproducibility of arthroscopic evaluation of equine joints. Acta Vet Scand 56, 3 (2014). https://doi.org/10.1186/1751-0147-56-3
- O’Malley MJ, Chu CR. Arthroscopic optical coherence tomography in diagnosis of early arthritis. Minim Invasive Surg. 2011;2011:671308. https://doi.org/10.1155/2011/671308 Epub 2011 Apr 3. PMID: 22091362; PMCID: PMC3197177.
- Hofmann, Gunther O., et al. Detection and evaluation of initial cartilage pathology in man: A comparison between MRT, arthroscopy and near-infrared spectroscopy (NIR) in their relation to initial knee pain. Pathophysiology 17.1 (2010): 1-8. https://doi.org/10.1016/j.pathophys.2009.04.001
- Spahn G, Plettenberg H, Nagel H, Kahl E, Klinger HM, Mückley T, et al. Evaluation of cartilage defects with near-infrared spectroscopy (NIR): an ex vivo study. Med Eng Phys. 2008;30(3):285–92. https://doi. org/10.1016/j.medengphy.2007.04.009
- Lu L, Cai J, Frost RL. Near infrared spectroscopy of stearic acid adsorbed on montmorillonite. Spectrochim Acta A Mol Biomol Spectrosc. 2010;75(3):960–3. https://doi.org/10.1016/j.saa.2009.12.001
- Afara I, Prasadam I, Crawford R, Xiao Y, Oloyede A. Non-destructive evaluation of articular cartilage defects using near-infrared (NIR) spectroscopy in osteoarthritic rat models and its direct relation to Mankin score. Osteoarthritis Cartilage. 2012;20(11):1367–73. https://doi.org/10.1016/j.joca.2012.07.007
- Samuel D, Park B, Sohn M, Wicker L. Visible-near-infrared spectroscopy to predict water-holding capacity in normal and pale broiler breast meat. Poult Sci. Oxford University Press; 2011;90(4):914–21. https://doi.org/10.3382/ps.2010-01116
- Lihong V.W., Song H. Photoacoustic tomography: in vivo imaging from organelles to organs. Science. 2012; 335: 1458-1462 https://doi.org/10.1126/science.1216210
- Shrestha B., Deluna F., Anastasio M.A., Yong Ye J., Brey E.M. Photoacoustic imaging in tissue engineering and regenerative medicine. Tissue Eng B Rev. 2020; 26: 79-102. https://doi.org/10.1089/ten.TEB.2019.0296
- Wu, M. et al. Spectroscopic photoacoustic imaging of cartilage damage. Osteoarthritis and Cartilage, 2021. Volume 29, Issue 7, 1071 – 1080 https://doi.org/10.1016/j.joca.2021.04.001
- Brittberg M, Winalski CS, Curl W, Recht M, Potter H, Brittberg M, et al. Evaluation of cartilage injuries and repair. J Bone Joint Surg Am. The American Orthopedic Association; 2003:58–69. https://doi.org/10.2106/00004623-200300002-00008
- Gunaratne, Rajitha, et al. Human joint tissue identification by employing diffuse reflectance and auto-fluorescence spectroscopy, in combination with machine learning. The European Conference on Lasers and Electro-Optics. Optical Society of America, 2017. https://doi.org/10.1109/CLEOE-EQEC.2017.8087742
- Ewerlöf, Maria, Marcus Larsson, and E. Göran Salerud. Spatial and temporal skin blood volume and saturation estimation using a multispectral snapshot imaging camera. Imaging, Manipulation, and Analysis of Biomolecules, Cells, and Tissues XV. Vol. 10068. International Society for Optics and Photonics, 2017. https://doi.org/10.1117/12.2251928
- Zonios, George, Julie Bykowski, and Nikiforos Kollias. Skin melanin, hemoglobin, and light scattering properties can be quantitatively assessed in vivo using diffuse reflectance spectroscopy. Journal of Investigative Dermatology 117.6 (2001): 1452-1457. https://doi.org/10.1046/j.0022-202x.2001.01577.x
- Johansson, Anders, et al. A spectroscopic approach to imaging and quantification of cartilage lesions in human knee joints. Physics in Medicine & Biology 56.6 (2011): 1865. https://doi.org/10.1088/0031-9155/56/6/021
- Wallace, Michael B., et al. Endoscopic detection of dysplasia in patients with Barrett’s esophagus using light-scattering spectroscopy. Gastroenterology 119.3 (2000): 677-682. https://doi.org/10.1053/gast.2000.16511
- Gunaratne, Rajitha, et al. Machine learning classification of human joint tissue from diffuse reflectance spectroscopy data. Biomedical optics express 10.8 (2019): 3889-3898. https://doi.org/10.1364/BOE.10.003889
- Yaroslavsky, A. N., et al. Optical properties of selected native and coagulated human brain tissues in vitro in the visible and near infrared spectral range. Physics in Medicine & Biology 47.12 (2002): 2059-73. https://doi.org/10.1088/0031-9155/47/12/305
- Wilson, Robert H., et al. Optical spectroscopy detects histological hallmarks of pancreatic cancer. Optics express 17.20 (2009): 17502-17516. https://doi.org/10.1364/OE.17.017502
- Salomatina, Elena Vladimirovna, et al. Optical properties of normal and cancerous human skin in the visible and near-infrared spectral range. Journal of biomedical optics 11.6 (2006): 064026. https://doi.org/10.1117/1.2398928
- Kreiß, Lucas, et al. Diffuse reflectance spectroscopy and raman spectroscopy for label-free molecular characterization and automated detection of human cartilage and subchondral bone. Sensors and Actuators B: Chemical 301 (2019): 127121. https://doi.org/10.1016/j.snb.2019.127121
- Egawa, Mariko, et al. Extended range near-infrared imaging of water and oil in facial skin. Applied spectroscopy 65.8 (2011): 924-930. https://doi.org/10.1366/11-06251
- Tromberg, Bruce J., et al. Assessing the future of diffuse optical imaging technologies for breast cancer management. Medical physics 35.6Part1 (2008): 2443-2451 https://doi.org/10.1118/1.2919078
- Nataliya R. Rovnyagina,Gleb S. Budylin,Pavel V. Dyakonov,Yuri M. Efremov,Marina M. Lipina,Yuliya R. Goncharuk et al. Grading cartilage damage with diffuse reflectance spectroscopy: optical markers and mechanical properties. Journal of BiophotonicsAccepted Articles e202200149 https://doi.org/10.1002/jbio.202200149