Оптимизация протокола интрамиокардиальной трансплантации с использованием люминесценции кардиальных мезенхимальных клеток, маркированных экспрессией люциферазы

Автор: Милевская Е.А., Немудрый А.А., Чепелева Елена Васильевна, Малахова А.А., Павлова С.В., Докучаева А.А., Сергеевичев Д.С., Закиян С.М.

Журнал: Патология кровообращения и кардиохирургия @journal-meshalkin

Рубрика: Экспериментальные статьи

Статья в выпуске: 4-2 т.19, 2015 года.

Бесплатный доступ

Использование кардиальных мезенхимальных клеток - перспективное направление в терапии ишемических поражений миокарда. Успех клеточной терапии зависит от эффективности способа доставки целевых клеток и их приживления в пораженной зоне. Применение биолюминесценции для мониторинга хоуминга трансплантированных клеток позволяет наблюдать их в динамике нами одном животном. Показана линейная зависимость активности люциферазы от количества клеток, что позволит проводить количественную оценку эффективности трансплантации и приживления люминесценции культуры кардиальных мезенхимальных клеток в зависимости от активности люциферазы в клетках. Проведено сравнение различных способов интрамиокардиальной трансплантации клеток и показано, что инъекция клеток в составе фибринового геля способствует более эффективному закреплению клеток в месте трансплантации.

Еще

Кардиальные мезенхимальные клетки, кардиальные стволовые клетки, фибриновый гель, инфаркт миокарда, биолюминесценция

Короткий адрес: https://sciup.org/142140719

IDR: 142140719

Список литературы Оптимизация протокола интрамиокардиальной трансплантации с использованием люминесценции кардиальных мезенхимальных клеток, маркированных экспрессией люциферазы

  • Leri A., Anversa P. Stem cells and myocardial regeneration: cooperation wins over competition//Circulation. 2013. Vol. 127. № 2. P. 165-8.
  • Чернявский А.М., Бондарь В.И., Бочарова А.В., Субботин Д.В., Сергеевичев Д.С., Новрузов Р.Б., Караськов А.М. Регенерация перирубцовой зоны миокарда при комбинированной реваскуляризации (лазер плюс клетки) на модели хронической ишемической болезни сердца//Патология кровообращения и кардиохирургия. 2009. № 3. С. 83-86.
  • Close D.M., Xu T., Sayler G.S., Ripp S. In vivo bioluminescent imaging (BLI): noninvasive visualization and interrogation of biological processes in living animals//Sensors (Basel). 2011. Vol. 11. № 1. P. 180-206.
  • Чепелева Е.В., Павлова С.В., Малахова А.А., Милевская Е.А., Русакова Я.Л., Подхватилина Н.А., Сергеевичев Д.С., Покушалов Е.А., Караськов А.М., Сухих Г.Т., Закиян С.М. Терапия хронического кардиосклероза у крыс линии WAG культурами кардиоваскулярных клеток, обогащенными стволовыми клетками сердца//КТБМ. 2015. № 3. С. 191-200.
  • Manthorpe M., Cornefert-Jensen F., Hartikka J., Felgner J., Rundell A., Margalith M., Dwarki V. Gene therapy by intramuscular injection of plasmid DNA: studies on firefly luciferase gene expression in mice//Hum. Gene Ther. 1993. Vol. 4. № 4. P. 419-31.
  • Cheng K., Shen D., Smith J., Galang G., Sun B., Zhang J., Marbán E. Transplantation of platelet gel spiked with cardiospherederived cells boosts structural and functional benefits relative to gel transplantation alone in rats with myocardial infarction//Biomaterials. 2012. Vol. 33. № 10. P. 2872-9.
  • Keyaerts M., Verschueren J., Bos T.J., Lea O., Peleman C., Breckpot K., Van Hove C., Caveliers V., Bossuyt A., Lahoutte. T. Dynamic bioluminescence imaging for quantitative tumour burden assessment using IV or IP administration of D-luciferin: effect on intensity, time kinetics and repeatability of photon emission//Eur. J. Nucl. Med. Mol. Imaging. 2008. Vol. 35. № 5. P. 999-1007.
  • Inoue Y., Kiryu S., Watanabe M., Tojo A., Ohtomo K. Timing of imaging after d-luciferin injection affects the longitudinal assessment of tumor growth using in vivo bioluminescence imaging//Int. J. Biomed. Imaging. 2010. Vol. 2010. P. 471-408.
Еще
Статья научная