Parthenium argentatum A. Gray, Taraxacumkok-saghyz L.E. Rodin и Scorzonera tau-saghyz Lipsch. et Bosse как альтернативные источники натурального каучука: нужны ли они нам? (Обзор)

Автор: Америк А.Ю., Мартиросян Л.Ю., Мартиросян В.В., Мартиросян Ю.Ц.

Журнал: Сельскохозяйственная биология @agrobiology

Рубрика: Обзоры, проблемы

Статья в выпуске: 1 т.57, 2022 года.

Бесплатный доступ

Натуральный каучук (НК) - стратегически важное сырье, используемое для производства более 50 000 различных продуктов из резины и латекса. Во многих случаях, например в авиа- и автомобилестроении, он не может быть заменен синтетическими аналогами. Несколько важных факторов делают актуальным поиск альтернативных источников НК. Среди них сильная аллергическая реакция на изделия, изготовленные из латекса гевеи и опасность распространения южноамериканского фитофтороза (South American Leaf Blight, SALB) в Юго-Восточной Азии. Последнее нанесло бы невосполнимый урон производству природного полимера. В настоящее время единственным коммерчески значимым источником НК служит гевея Hevea brasiliensis (Willd. ex A. Juss.) Müll. Arg. - вечнозеленое дерево, растущее в тропических регионах. Неудивительно, что исследования по поиску и созданию альтернативных источников НК методом генетической инженерии интенсивно развиваются в Европе и Северной Америке. Среди публикаций ведущих исследовательских групп по тематике НК следует выделить работы лаборатории под руководством K. Cornish. Так, в 2000 году был опубликован один из первых детальных обзоров, посвященных альтернативным источникам НК (H. Mooibroek, K. Corhish, 2000). Годом позже был подробно описан биосинтез НК в эволюционно далеких каучуконосах (K. Cornish, 2001). Эти исследования получили развитие в последующих работах (К. Cornish, 2017). Детальные обзоры альтернативных каучуконосов представлены другими лидирующими группами (J. van Beilen с соавт., 2007; S.C. Gronover с соавт., 2011; D.T. Ray с соавт., 2005). Недавно мы опубликовали обзорные статьи, подробно описывающие биохимические и молекулярно-генетические аспекты биосинтеза НК (A.Y. Amerik с соавт., 2018; A.Y. Amerik с соавт., 2021). В представляемом обзоре мы уделяем особое внимание историческим аспектам проблемы, которым, по нашему мнению, не было уделено должного внимания в литературе, и сравниваем потенциальные альтернативные продуценты натурального каучука, способные заменить единственный на сегодняшний день коммерчески значимый источник полимера - H. brasiliensis. В качестве альтернативных каучуконосов рассматриваются два вида - мексиканский кустарник гваюла ( Pаrthenium argentatum A. Gray) и кок-сагыз, или русский одуванчик ( Ta-raxacum kok-saghyz L.E. Rodin). Безусловно, следует также упомянуть незаслуженно забытый, но очень перспективный альтернативный производитель НК - тау-сагыз ( Scorzonera tau-saghyz Lipsch. et Bosse). Наиболее изученный альтернативный каучуконос - T. kok-saghyz . Для биохимических и молекулярно-генетических исследований этого растения применялись современные молекулярно-биологические подходы - улучшенные протоколы трансформации, использование РНК-интерференции (сайленсинг) и EST (Expressed Sequence Tag) библиотек для идентификации новых генов. В результате были идентифицированы ключевые белки, ответственные за биосинтез НК, - цис-пренилтрансферазы 1-3 (СРТ1-3) (T. Schmidt c соавт., 2010) и активатор СРТ (RTA) (J. Epping с соавт., 2015). Необходимо отметить, что внутриклеточная концентрация СРТ регулирует биосинтез НК в клетках T. brevicorniculatum - ближайшего родственника T. kok-saghyz . Трансгенные линии, в которых экспрессия всех трех генов СРТ подавлялась методом РНК-интерференции (RNAi), демонстрировали практически полную супрессию биосинтеза НК (J. Post с соавт., 2012). Тем не менее необходимы дополнительные исследования, прежде чем каучук из T. kok-saghyz станет жизнеспособной альтернативой каучуку из H. brasiliensis. Исследования P. argentatum также интенсивно развиваются. В частности, следует отметить работы, которые проводятся в лаборатории D.K. Ro. Исследователи идентифицировали и охарактеризовали белковый комплекс, включающий СРТ и играющий ключевую роль в биосинтезе НК (А.М. Lakusta с соавт., 2019). К сожалению, исследования тау-сагыза ( S. tau-saghyz ) развиваются не столь успешно. Численность тау-сагыза критически снизилась в течение интенсивной заготовки в 1940-х годах. Работы по восстановлению этого уникального вида, у которого в корнях растений накопление НК в благоприятных условиях достигает 40 % сухой массы, ведутся в настоящее время в Казхахстанском национальном университете (С.К. Турашева с соавт., 2016). Таким образом, постоянно растущий спрос на НК в будущем не может быть удовлетворен за счет одного только каучукового дерева. Необходимы альтернативные культуры, которые можно выращивать на больших площадях в промышленных объемах, и соответствующие технологии переработки и получения конечных продуктов. В долгосрочной перспективе каучук из альтернативных культур, особенно его термостабильные производные, такие как эпоксидированный каучук, могут занять место на рынке, где в настоящее время представлены различные синтетические каучуки, при значительном сокращении углеродного следа.

Еще

Натуральный каучук, hevea brasiliensis, южноамериканский фитофтороз, salb, латекс, резина, аллергия, parthenium argentatum, taraxacum kok-saghyz, scorzonera tau-saghyz

Короткий адрес: https://sciup.org/142234467

IDR: 142234467

Список литературы Parthenium argentatum A. Gray, Taraxacumkok-saghyz L.E. Rodin и Scorzonera tau-saghyz Lipsch. et Bosse как альтернативные источники натурального каучука: нужны ли они нам? (Обзор)

  • Eng A.H., Ong E.L. Hevea natural rubber. In: Plastics engineering handbook of elastomers. V. 61 /A.K. Bhowmick, H.L. Stephens (eds.). Marcel Dekker, NY, 2000: 29-59.
  • McIntyre D., Stephens H.L., Schloman W.W. Jr., Bhowmick A.K., Guayule rubber. In: Plastics engineering: handbook of elastomers. V. 61 /A.K. Bhowmick, H.L. Stephens (eds.). Marcel Dekker, NY, 2000: 1-27.
  • Puskas J.E. Producers and world market of synthetic rubbers. In: Biopolymers, Polyisoprenoids. V. 2 /T. Koyama, A. Steinbuchel (eds.). Wiley, Weinheim, 2001: 287-320.
  • Gronover S.C., Wahler D., Prufer D. Natural rubber biosynthesis and physic-chemical studies of plant derived latex. In: Biotechnology of Biopolymers /M. Elnashar (ed.) InTech, Rijeka, 2011: 7588 (doi: 10.5772/17144).
  • Насыров И.Ш., Фаизова В.Ю., Жаворонков Д.А., Шурупов О.К., Васильев В.А. Натуральный и синтетический цис-полиизопрены. Часть 1. Современное состояние и перспективы развития производства. Промышленное производство и использование эластомеров, 2020, 2: 34-47 (doi: 10.24411/2071-8268-2020-10206).
  • Araujo-Morera J., Verdejo R., Lopez-Manchado M.A., Santana M.H. Sustainable mobility: the route of tires through the circular economy model. Waste Management, 2021, 126: 309-322 (doi: 10.1016/j.wasman.2021.03.025).
  • Schwerin M.R., Walsh D.L., Coleman Richardson D., Kisielewski R.W., Kotz R.M., Rout-son L.B., David Lytle C. Biaxial flex-fatigue and viral penetration of natural rubber latex gloves before and after artificial aging. J. Biomed. Mater. Res., 2002, 63(6): 739-745 (doi: 10.1002/jbm. 10467).
  • Ахмедьянова Р.А., Милославский Д.Г., Харлампиди Х.Э., Ву Минх Дак, Нгуен Тай Тхай, Нгуен Тханх Лием. Эпоксидирование бутадиен-стирольного и натурального каучуков в форме латекса пероксидом водорода в присутствии пероксофосфовольфраматной каталитической системы. Промышленное производство и использование эластомеров, 2015, 4: 3-6.
  • Hamzah R., Bakar M.A., Dahham O.S., Zulkepli N.N., Dahham S.S. A structural study of epox-idized natural rubber (ENR-50) ring opening under mild acidic condition. J. Appl. Polym. Sci., 2016, 133(43): 44123 (doi: 10.1002/app.44123).
  • Cornish K. Biochemistry of natural rubber, a vital raw material, emphasizing biosynthetic rate, molecular weight and compartmentalization, in evolutionarily divergent plant species. Natural Product Report, 2001, 18(2): 182-189 (doi: 10.1039/a902191d).
  • van Beilen J., Poirier Y. Guayule and Russian dandelion as alternative sources of natural rubber. Critical Reviews in Biotechnology, 2007, 27: 217-231 (doi: 10.1080/07388550701775927).
  • van Beilen J., Poirier Y. Establishment of new crops for the production of natural rubber. Trends in Biotechnology, 2007, 25(11): 522--529 (doi: 10.1016/j.tibtech.2007.08.009).
  • Mooibroek H., Cornish K. Alternative sources of natural rubber. Applied Microbiology and Biotechnology, 2000, 53: 355-365 (doi: 10.1007/s002530051627).
  • Metcalfe C.R. Distribution of latex in the plant kingdom. Economic Botany, 1967, 21: 115-127 (doi: 10.1007/BF02897859).
  • Buchanan R.A, Swanson C.L, Weisleder D., Cull I.M. Gutta-producing grasses. Phytochemistry, 1979, 18(6): 1069-1071 (doi: 10.1016/S0031-9422(00)91486-9).
  • Tangpakdee J., Tanaka Y., Shiba K., Kawahara S., Sakurai K., Suzuki Y. Structure and biosynthesis of trans-polyisoprene from Eucommia ulmoides. Phytochemistry, 1997, 45(1): 75-80 (doi: 10.1016/S0031-9422(96)00806-0).
  • Cornish K. Alternative natural rubber crops: why should we care? Technology and Innovation, 2017, 18: 245-256 (doi: 10.21300/18.4.2017.245).
  • Association of Natural Rubber Producing Countries. ANRPC Releases natural rubber trends & statistics, Dec. 2018. Режим доступа: http://www.anrpc.org/html/news-secretariat-de-tails.aspx?ID=9&PID=39&NID=2271. Дата обращения: 10.12.2021.
  • Kramer P.J., Kozlowski T.T. Physiology of woody plants /S.G. Pallardy (ed.). Academic Press, NY, 1979.
  • Guyot J., Le Guen V. A review of a century of studies on South America leaf blight of the rubber tree. Plant Disease, 2018, 102: 1052-1065 (doi: 10.1094/PDIS-04-17-0592-FE).
  • Guyot J., Cilas C., Sache I. Influence of host resistance and phenology on South American leaf blight of the rubber tree with special consideration of temporal dynamics. European Journal of Plant Pathology, 2008, 120(2): 111-124 (doi: 10.1007/s10658-007-9197-6).
  • Rousset A., Amor A., Punvichai T., Perino S., Palu S., Dorget M., Pioch D., Chemat F. Guayule (Parthenium argentatum A. Gray), a renewable resource for natural polyisoprene and resin: composition, processes and applications. Molecules, 2021, 26(3): 664 (doi: 10.3390/mol-ecules26030664).
  • Arias M., Herrero J., Ricobaraza M., Hernandez M., Ritter E. Evaluation of root biomass, rubber and inulin contents in nine Taraxacum kok-saghyz Rodin populations. Industrial Crops and Products, 2016, 83: 316-321 (doi: 10.1016/j.indcrop.2016.01.023).
  • Боссэ Г. Г., Ильин М.М. Поиски источников каучука и гуттаперчи в СССР. В кн.: Каучук и каучуконосы. Т. 2. М., 1953: 136-137.
  • Cornish K. Rubber production. In: Encyclopedia of Applied Plant Sciences (Second Edition). V. 3 /B. Thomas, B.G. Murray, D.J. Murphy (eds.). Elsevier, 2017b: 410-419 (doi: 10.1016/B978-0-12-394807-6.00088-5).
  • Schurer H. The Macintosh: the paternity of an invention. Transaction of the Newcomen Society, 1951, 28(1): 77-87 (doi: 10.1179/tns.1951.005).
  • Bebb R.L. Chemistry of rubber processing and disposal. Environmental Health Perspectives, 1976, 17: 95-102 (doi: 10.1289/ehp.761795).
  • He Q., Zhang L., Li T., Li C., Song H., Fan P.J. Genus Sapium (Euphorbiaceae): a review on traditional uses, phytochemistry, and pharmacology. J. Ethnopharmacology, 2021, 277: 114206 (doi: 10.1016/j.jep.2021.114206).
  • Cook O.F. Rubber production from Castilla and Hevea. Science, 1937, 85(2208): 406-407 (doi: 10.1126/science.85.2208.406).
  • Priyadarshan P.M., Goncalves P. de S. Hevea gene pool for breeding. Genetic Resources and Crop Evolution, 2003, 50:101-114 (doi: 10.1023/A:1022972320696).
  • Priyadarshan P.M., Clement-Demange A. Breeding Hevea rubber: formal and molecular genetics. Advances in Genetics, 2004, 52: 51-115 (doi: 10.1016/S0065-2660(04)52003-5).
  • Seibert R.J. A study of hevea (with its economic aspects) in the Republic of Peru. Annals of the Missouri Botanical Garden, 1947, 34(3): 261-352 (doi: 10.2307/2394407).
  • McFadyen R.E., Harvey G.J. Distribution and control of rubber vine, Cryptostegia grandiflora, a major weed in northern Queensland. Plant Protection Quarterly, 1990, 5: 153-155.
  • Shen X., Zou Z.R. Review on research progress of chemical constituents and bioactivities of Soli-dago. China Journal of Chinese Materia Medica, 2016, 41: 4303-4313 (doi: 10.4268/cjcmm20162303).
  • Гаршин М.В., Картуха А.И., Кулуев Б.Р. Кок-сагыз: особенности культивирования, перспективы возделывания и внедрения в современное производство. Биомика, 2016, 8(4): 323-333.
  • Кутузова С.Н., Брач Н.Б., Конькова Н.Г., Гаврилова В.А. Кок-сагыз — Taraxacum koksaghyz (Asteraceae, Compositae) — источник ценного растительного сырья для резиновой, пищевой и фармацевтической промышленности. Биосфера, 2015, 7(4): 392-402 (doi: 10.24855/biosfera.v7i4.124).
  • Bousquet J., Flahault A., Vandenplas O., Ameille J., Duron J. J., Pecquet C., Chevrie K., Annesi-Maesano I. Natural rubber latex allergy among health care workers: A systematic review of the evidence. Journal of Allergy and Clinical Immunology, 2006, 118(2): 447-454 (doi: 10.1016/j.jaci.2006.03.048)
  • Siler D.J., Cornish K., Hamilton R.G. Absence of cross-reactivity of IgE antibodies from subjects allergic to Hevea brasiliensis latex with a new source of natural rubber latex from guayule (Parthenium argentatum). Journal of Allergy and Clinical Immunology, 1996, 98(5, Pt.1): 895-902 (doi: 10.1016/s0091-6749(96)80005-4).
  • Nakayama F.S. Guayule future development. Industrial Crops and Products, 2005, 22(1): 3-13 (doi: 10.1016/j.indcrop.2004.05.006).
  • Tanaka Y. Structural characterization of natural polyisoprenes: solve the mystery of natural rubber based on structural study. Rubber Chemistry and Technology, 2001, 74(3): 355-375 (doi: 10.5254/1.3547643).
  • Amerik A.Yu., Martirosyan Yu.Tc., Gachok I.V. Regulation of natural rubber biosynthesis by proteins associated with rubber particles. Russian Journal of Bioorganic Chemistry, 2018, 44(2): 140-149 (doi: 10.1134/S106816201801003X).
  • Amerik A.Y., Martirosyan Y.T., Martirosyan L.Y., Goldberg V.M., Uteulin K.R., Varfolo-meev S.D. Molecular genetic analysis of natural rubber biosynthesis. Russian Journal of Plant Physiology, 2021, 68(1): 31-45 (doi: 10.1134/S1021443721010039).
  • Yamashita S., Takahashi S. Molecular mechanisms of natural rubber biosynthesis. Annual Review of Biochemistry, 2020, 89: 24.1-24.31 (doi: 10.1146/annurev-biochem-013118-111107).
  • Cornish K., Siler D.J., Grosjean O.K., Goodman N. Fundamental similarities in rubber particle architecture and function in three evolutionarily divergent plant species. Journal of Natural Rubber Research, 1993, 8(4): 275-285.
  • Cornish K. Similarities and differences in rubber biochemistry among plant species. Phytochem-istry, 2001, 57: 1123-1134 (doi: 10.1016/s0031-9422(01)00097-8).
  • McMahan C.M., Kostyal D., Lhamo D., Cornish K. Protein influences on guayule and hevea natural rubber sol and gel. Journal of Applied Polymer Science, 2015, 132(23): 42051-42057 (doi: 10.1002/app.42051).
  • Ikeda Y., Junkong P., Ohashi T., Phakkeeree T., Sakaki Y., Tohsan A., Kohjiya S., Cornish K. Strain-induced crystallization behaviours of natural rubbers from guayule and rubber dandelion revealed by simultaneous time-resolved WAXD/tensile measurements: indispensable function for sustainable resources. RSC Advances, 2016, 6: 95601-95610 (doi: 10.1039/C6RA22455E).
  • Thuong N.T., Yamamoto O., Nghia P.T., Cornish K., Kawahara S. Effect of naturally occurring crosslinking junctions on green strength of natural rubber. Polymers Advanced Technologies, 2016, 28(3): 303-311 (doi: 10.1002/pat.3887).
  • Cornish K., Wood D.F., Windle J.J. Rubber particles from four different species, examined by transmission electron microscopy and electron-paramagnetic-resonance spin labeling, are found to consist of a homogeneous rubber core enclosed by a contiguous, monolayer biomembrane. Planta, 1999, 210(1): 85-96 (doi: 10.1007/s004250050657).
  • Wood D.F., Cornish K. Microstructure of purified rubber particles. International Journal of Plant Sciences, 2000, 161(3): 435-445 (doi: 10.1086/314269).
  • Castelblanque L., Balaguer B., Marti C., Rodriguez J.J., Orozco M., Vera P. Multiple facets of laticifer cells. Plant Signaling & Behavior, 2017, 12(7): e1300743 (doi: 10.1080/15592324.2017.1300743).
  • Ramos M.V., Demarco D., da Costa Souza I.C., de Freitas C.D.T. Laticifers, latex, and their role in plant defense. Trends in Plant Science, 2019, 24(6): 553-567 (doi: 10.1016/j.tplants.2019.03.006).
  • Backhaus R.A. Rubber formation in plants — a mini-review. Israel Journal of Botany, 1985, 34(2-4): 283-293.
  • Siler D.J., Goodrich-Tanrikulu M., Cornish K., Stafford A.E., McKeon T.A. Composition of rubber particles of Hevea brasiliensis, Parthenium argentatum, Ficus elastica, and Euphorbia lac-tiflua indicates unconventional surface structure. Plant Physiology and Biochemistry, 1997, 35(11): 881-889.
  • Estilai A., Ray D.T. Genetics, cytogenetics, and breeding of guayule. In: Guayule natural rubber. A technical publication with emphasis on recent findings /J.W Whitworth, E.E. Whitehead (eds.). USDA, Tucson, 1991: 47-92.
  • Ray D.T., Coffelt T.A., Dierig D A. Breeding guayule for commercial production. Industrial Crops and Products, 2005, 22(1): 15-25 (doi: 10.1016/j.indcrop.2004.06.005).
  • Thompson A.E., Ray D.T. Breeding guayule. In: Plant Breeding Reviews /J. Janick (ed.). Willley, 1989: 93-165 (doi: 10.1002/9781118061039.ch4).
  • Thompson A.E. Breeding new industrial crops. In: Advances in new crops /J. Janick, J.E. Simon (eds.). Timber Press, Portland, OR, 1990: 100-103.
  • Kim I.J., Ryu S.B., Kwak Y.S., Kang H. A novel cDNA from Parthenium argentatum Gray enhances the rubber biosynthetic activity in vitro. Journal of Experimental Botany, 2004, 55(396): 377-385 (doi: 10.1093/jxb/erh039).
  • Benedict C.R., Madhavan S., Greenblatt G.A., Venkatachalam K.V., Foster M.A. The enzymatic synthesis of rubber polymer in Parthenium argentatum Gray. Plant Physiology, 1990, 92(3): 816821 (doi: 10.1104/pp.92.3.816).
  • Pan Z., Durst F., Werck-Reichhart D., Gardner H.W., Camara B., Cornish K., Backhaus R.A. The major protein of guayule rubber particles is a cytochrome P450. Characterization based on cDNA cloning and spectroscopic analysis of the solubilized enzyme and its reaction products. Journal of Biological Chemistry, 1995, 270(15): 8487-8494 (doi: 10.1074/jbc.270.15.8487).
  • Lakusta A.M., Kwon M., Kwon E.J.G., Stonebloom S., Scheller H.V., Ro D.K. Molecular studies of the protein complexes involving cis-prenyltransferase in guayule (Parthenium argentatum), an alternative rubber-producing plant. Frontiers in Plant Science, 2019, 10: 165 (doi: 10.3389/fpls.2019.00165).
  • Hodgins K.A., Lai Z., Oliveira L.O., Still D.W., Scascitelli M., Barker M.S., Kane N.C., Dempe-wolf H., Kozik A., Kesseli R.V., Burke J.M., Michelmore R.W., Reiseberg L.H. Genomics of Compositae crops: reference transcriptome assemblies and evidence of hybridization with wild relatives. Molecular Ecology Resources, 2014, 14(1): 166-177 (doi: 10.1111/1755-0998.12163).
  • Qu Y., Chakrabarty R., Tran H.T., Kwon E.J., Kwon M., Nguyen T.D., Ro D.K. A lettuce (Lactuca sativa) homolog of human Nogo-B receptor interacts with cis-prenyltransferase and is necessary for natural rubber biosynthesis. Journal of Biological Chemistry, 2015, 290(4): 1898-1914 (doi: 10.1074/jbc.M114.616920).
  • Kwon M., Kwon E.J.G., Ro D.K. cis-Prenyltransferase and polymer analysis from a natural rubber perspective. Methods in Enzymology, 2016, 576: 121-145 (doi: 10.1016/bs.mie.2016.02.026).
  • Welti M. Regulation of dolichol-linked glycosylation. Glycoconjugate Journal, 2013, 30(1): 51-56 (doi: 10.1007/s10719-012-9417-y).
  • Mihail J.D., Alcorn S.M., Whitworth J.W. Plant health: the interactions of Guayule, microorganisms, arthropods, and weeds. In: Guayule natural rubber. A technical publication with emphasis on recent findings /J.W. Whitworth, E.E. Whitehead (eds.). USDA, Tucson, 1991: 173-216.
  • Nakayama F.S. Influence of environment and management practices on rubber quantity and quality. In: Guayule natural rubber. A technical publication with emphasis on recent findings /J.W. Whitworth, E. E. Whitehead (eds.). USDA, Tucson, 1991: 217-240.
  • Estilai A. Biomass, rubber, and resin yield potentials of new guayule germplasm. Bioresource Technology, 1991, 35(2): 119-125 (doi: 10.1016/0960-8524(91)90018-F).
  • Jones E.P. Recovery of rubber latex from Guayule shrub. Industrial & Engineering Chemistry, 1948, 40(5): 864-874.
  • Wagner J.P., Parma D.G. Continuous solvent extraction process for recovery of natural rubber from guayule. Polymer-Plastics Technology and Engineering, 1988, 27(3): 335-350 (doi: 10.1080/03602558808070113).
  • Cornish K., McMahan C.M., Pearson C.H., Ray D.T., Shintani D K. Biotechnological development of domestic rubber producing crops. Rubber World, 2005, 233(2): 40-44.
  • Ray D.T. Guayule: a source of natural rubber. In: New crops /J. Janick, J.E. Simon (eds.). Wiley, New York, 1993: 338-343.
  • Schloman W.W. Processing guayule for latex and bulk rubber. Industrial Crops and Products, 2005, 22(1): 41-47 (doi: 10.1016/j.indcrop.2004.04.031).
  • Ильин М.М. Каучуконосность флоры СССР. В кн.: Каучук и каучуконосы. Т. 2. М.-Л., 1953: 9-104.
  • Липшиц С.Ю. Кок-сагыз. В кн.: Каучук и каучуконосы. Т. 2. М.-Л., 1953: 153-172.
  • Whaley W.G., Bowen J.S. Russian dandelion (Kok-saghyz). An emergency source of natural rubber. USDA, government publication no. 6. Washington DC, 1947.
  • Russian rubber plants. Nature, 1945, 155: 229-230 (doi: 10.1038/155229a0).
  • Heim S. Kalorien, Kautschuk, Karrieren. Pflanzenzu chtung und Landwirtschaftliche Forschung in Kaiser- Wilhelm-Instituten 1933-1945. Wallstein Verlag, Gottingen, 2003.
  • Polhamus L.G. Rubber: botany, production, and utilization. Leonard Hill Limited, London, 1962.
  • Wollenweber T.E, van Deenen N., Roelfs K.-U., Prüfer D., Gronover C.S. Microscopic and transcriptomic analysis of pollination processes in self-incompatible Taraxacum koksaghyz. Plants, 2021, 10(3): 555 (doi: 10.3390/plants10030555).
  • Kupzow A.J. Theoretical basis of plant domestication. Theoretical and Applied Genetics, 1980, 57(2): 65-74 (doi: 10.1007/BF00276404).
  • Tysdal H.M., Rands R.D. Breeding for disease resistance and higher rubber yield in Hevea, Guayule and Kok-saghyz. Agronomy Journal, 1953, 45(6): 234-243 (doi: 10.2134/agronj1953.00021962004500060003x).
  • Ramirez-Cadavid D.A., Cornish K., Michel F.C. Jr. Taraxacum kok-saghyz (TK): compositional analysis of a feedstock for natural rubber and other bioproducts Industrial Crops and Products, 2017, 107: 624-640 (doi: 10.1016/j.indcrop.2017.05.043).
  • Parmenter G. Taraxacum officinale — common dandelion, Lion's tooth. Annual Report. New Zealand Institute for Crops and Food Research, Mana Kai Rangahau, 2002.
  • Yamashita S., Yamaguchi H., Waki T., Aoki Y., Mizuno M., Yanbe F., Ishii T., Funaki A., Tozawa Y., Miyagi-Inoue Y., Fushihara K., Nakayama T., Takahashi S. Identification and reconstitution of the rubber biosynthetic machinery on rubber particles from Hevea brasiliensis. eLife, 2016, 5: e19022 (doi: 10.7554/eLife.19022).
  • Asawatreratanakul K., Zhang Y.-W., Wititsuwannakul D., Wititsuwannakul R., Takahashi S., Rattanapittayaporn A., Koyama T. Molecular cloning, expression and characterization of cDNA encoding cis-prenyltransferases from Hevea brasiliensis. A key factor participating in natural rubber biosynthesis. European Journal of Biochemistry, 2003, 270(23): 4671-4680 (doi: 10.1046/j.1432-1033.2003.03863.x).
  • Oh S.K., Hwan Han K., Ryu S.B., Kang H. Molecular cloning, expression, and functional analysis of a cis-prenyltransferase from Arabidopsis thaliana. Implications in rubber biosynthesis. Journal of Biological Chemistry, 2000, 275(24): 18482-18488 (doi: 10.1074/jbc.M002000200).
  • Sato M., Sato K., Nishimura S., Hirata A., Kato J., Nakano A. The yeast RER2 gene, identified by endoplasmic reticulum protein localization mutations, encodes cis-prenyltransferase, a key enzyme in dolichol synthesis. Molecular and Cellular Biology, 1999, 19(1): 471-483 (doi: 10.1128/mcb.19.1.471).
  • Schmidt T., Hillebrand A., Wurbs D., Wahler D., Lenders M., Gronover C.H., Prufer D. Molecular cloning and characterization of rubber biosynthetic genes from Taraxacum koksaghyz. Plant Molecular Biology Reporter, 2010, 28(2): 277-284 (doi: 10.1007/slll05-009-0145-9).
  • Post J., van Deenen N., Fricke J., Kowalski N., Wurbs D., Schaller H., Eisenreich W., Huber C., Twyman R.M., Prufer D., Gronover C.S. Laticifer-specific cis-prenyltransferase silencing affects the rubber, triterpene, and inulin content of Taraxacum brevicorniculatum. Plant Physiology, 2012, 158(3): 1406-1417 (doi: 10.1104/pp.111.187880).
  • Oh S.K., Kang H., Shin D.H., Yang J., Chow K.S., Yeang H.Y., Wagner B., Breiteneder H., Han K.H. Isolation, characterization, and functional analysis of a novel cDNA clone encoding a small rubber particle protein from Hevea brasiliensis. Journal of Biological Chemistry, 1999, 274(24): 17132-17138 (doi: 10.1074/jbc.274.24.17132).
  • Collins-Silva J., Nural A.T., Skaggs A., Scott D., Hathwaik U., Woolsey R., Schegg K., McMahan C., Whalen M., Cornish K., Shintani D. Altered levels of the Taraxacum kok-saghyz (Russian dandelion) small rubber particle protein, TkSRPP3, result in qualitative and quantitative changes in rubber metabolism. Phytochemistry, 2012, 79: 46-56 (doi: 10.1016/j.phytochem.2012.04.015).
  • Kharel Y., Koyama T. Molecular analysis of cis-prenyl chain elongating enzymes. Natural Product Reports, 2003, 20: 111-118 (doi: 10.1039/b108934j).
  • Kharel Y., Takahashi S., Yamashita S., Koyama T. Manipulation of prenyl chain length determination mechanism of cis-prenyltransferases. FEBS Journal, 2006, 273(34): 647-657 (doi: 10.1111/j.1742-4658.2005.05097.x).
  • Kera K., Takahashi S., Sutoh T., Koyama T., Nakayama T. Identification and characterization of a cis,trans-mixed heptaprenyl diphosphate synthase from Arabidopsis thaliana. FEBS Journal, 2012, 279(20): 3813-3827 (doi: 10.1111/j.1742-4658.2012.08742.x).
  • Surmacz L., Plochocka D., Kania M., Danikiewicz W., Swiezewska E. cis-Prenyltransferase atCPT6 produces a family of very short-chain polyisoprenoids in planta. Biochimica et Biophysica Acta, 2014, 1841(2): 240-250 (doi: 10.1016/j.bbalip.2013.11.011).
  • Harrison K.D., Park E.J., Gao N., Kuo A., Rush J.S., Waechter C.J., Lehrman M.A., Sessa W.C. Nogo-B receptor is necessary for cellular dolichol biosynthesis and protein N-glycosylation. EMBO Journal, 2011, 30(12): 2490-2500 (doi: 10.1038/emboj.2011.147).
  • Park E.J., Grabinska K.A., Guan Z, Stranecky V., Hartmannova H., Hoda ova K., Baresova V., Sovova J., Jozsef L., Ondruskova N., Hansikova H., Honzik T., Zeman J., Hülkova H., Wen R. Kmoch S., Sessa W.C. Mutation of Nogo-B receptor, a subunit of cis-prenyltransferase, causes a congenital disorder of glycosylation. Cell Metabolism, 2014, 20(3): 448-457 (doi: 10.1016/j.cmet.2014.06.016).
  • Epping J., van Deenen N., Niephaus E., Stolze A., Fricke J., Huber C., Eisenreich W., Twyman R.M., Prufer D., Gronover C.S. A rubber transferase activator is necessary for natural rubber biosynthesis in dandelion. Nature Plants, 2015, 1: 15048 (doi: 10.1038/nplants.2015.48).
  • Hallahan D.L., Keiper-Hrynko N.M. Cis-prenyltransferases from the rubber-producing plants Russian dandelion (Taraxacum kok-saghyz) and sunflower (Helianthus annus). US Patent 2004/044173. 2004.
  • Богуспаев К.К., Портной В.Х., Фалеев Д.Г., Касымбеков Б.К., Турашева С.К. Таусагыз (Scorzonera tau-saghyz Lipsch. et Bosse) — альтернативный источник получения натурального каучука. Вестник КазНУ, серия биологическая, 2015, 3(65): 323-331.
  • Турaшевa С.К., Богустев К.К., Фaлеев Д.Г., Альнуровa А.А., KamiM^ А.И. Восстановление численности дикорастущего каучуконосного эндемика Scorzonera tau-saghyz Lipsch. et Bosse. Вестник КазНУ, серия экологическая, 2016, 2(47): 141-150.
  • Фалеев Д.Г., Касымбеков Б.К., Фалеев Е.Г., Мырзагалиев Ж.Ж., Богуспаев К.К. Разработка технологии культивирования растений тау-сагыза (Scorzonera tau-saghyz Lipsch. et Bosse) с использованием почвенной микрофлоры: 4. Микоризация в условиях лабораторного эксперимента. Вестник КазНУ, серия биологическая, 2018, 3(76): 143-151.
  • Smith S., Read D. Mycorrhizalsymbiosis, 3rdEdition. Academic Press, NY, 2008 (doi: 10.1016/B978-0-12-370526-6.X5001-6).
  • Vigneron N., Radhakrishnan G.V., Delaux P-M. What have we learnt from studying the evolution of the arbuscular mycorrhizal symbiosis? Current Opinion in Plant Biology, 2018, 44: 49-56 (doi: 10.1016/j.pbi.2018.02.004).
  • Miozzi L., Vaira A.M., Catoni M., Fiorilli V., Accotto G.P., Lanfranco L. Arbuscular mycorrhizal symbiosis: plant friend or foe in the fight against viruses? Frontiers in Microbiology, 2019, 10: 1238 (doi: 10.3389/fmicb.2019.01238).
Еще
Статья обзорная