Пермиссивность культур клеток различного происхождения при культивировании вируса нодулярного дерматита

Автор: Балышева В.И., Живодеров С.П., Пивова Е.Ю., Бобровская Н.К., Живодерова А.В., Анисимова Л.И., Кушнир С.Д., Усадов Т.Р., Юрков С.Г., Сальников Н.И., Луницин А.В.

Журнал: Сельскохозяйственная биология @agrobiology

Рубрика: Ветеринарная вирусология, иммунология

Статья в выпуске: 6 т.52, 2017 года.

Бесплатный доступ

Нодулярный дерматит крупного рогатого скота (НД, заразный узелковый дерматит, кожная бугорчатка, узелковая экзантема, dermatitis nodulares, lumpy skin disease) - трансмиссивная вирусная высококонтагиозная трансграничная эмерджентная болезнь. В 2015 году она была занесена в Республику Дагестан из Азербайджана. В 2016 году заболевание обнаружили в Краснодарском крае, затем еще в 6 областях Российской Федерации. Болезнь приводит к снижению молочной продуктивности до 50 %, потере живой массы тела, абортам и мертворождения, повреждению шкуры, нарушению воспроизводительной функции у больных особей (вплоть до полной потери фертильности у быков) и гибели животных от секундарных инфекций. Нодулярный дерматит вызывает ДНК-содержащий вирус рода Capripoxvirus (подсемейство Chordopoxvirinae, семейства Poxviridae ). Выделение и идентификация вируса, изготовление вакцинных и диагностических препаратов во многом зависят от удачного выбора системы культивирования. Целью нашей работы было изучение культуральных свойств изолята вируса нодулярного дерматита и оптимизация условий получения вирусосодержащего материала в наиболее перспективных клеточных культурах. Вирус выделяли из проб органов (печень, легкие, селезенка, лимфатические узлы и пораженная подкожная клетчатка) от вынужденно убитых быков калмыцкой породы (хозяйства Волгоградской области, 2016 год) с характерными проявлениями клинических признаков НД. Для выделения вируса готовили 10 % суспензию образцов и вносили в культуральные флаконы (по 3 флакона для каждой культуры) со сформировавшимся монослоем клеток тестикул козленка (ТК), перевиваемыми линиями клеток почек теленка (MDBK) и кролика (RК-13/2-03). В третьем пассаже титр вируса, полученного в клетках MDBK и RК-13/2-03, составлял 4,67-5,00 lg ТЦД50/см3. В вирусосодержащем культуральном материале выявляли геном вируса НД методом ПЦР. Полученный штамм вируса НД был депонирован в Государственную коллекцию микроорганизмов Всероссийского НИИ ветеринарной вирусологии и микробиологии под номером 3161. В работе с этим штаммом вируса НД также определяли пермиссивность культур клеток кожи эмбриона лося (КЭЛ/07), почки африканской зеленной мартышки (CV-1, VERO), гибридной линии клеток почки эмбриона свиньи (СПЭВ ТК-) × спленоцитов селезенки свиньи (А4С2/9к), почек овцы (ПО), кролика (RК-13/2-03) и теленка (Taurus-1). Установлено, что к вирусу чувствительны перевиваемые клеточные линии гомологичного (MDBK, Taurus-1, КЭЛ/07, ПО) и гетерологичного происхождения (RК-13/2-03, VERO, CV-1, А4С2/9к, СПЭВ). Впервые выявлено, что вирус НД размножается в клетках диких животных (лося), а также установлена возможность его культивирования в перевиваемых гетерологичных клеточных культурах RК-13/2-03 и А4С2/9к. Длительность культивирования вируса до проявления 95-100 % ЦПД зависела от клеточного субстрата и множественности заражения. В культурах клеток МDBK и VERO она составляла 48 ч, в Taurus-1, ПО, RК-13/2-03, CV-1 максимальные деструктивные изменения клеточного монослоя наблюдали через 48-96 ч после инфицирования. При оптимальной множественности заражения, составляющей 0,001-0,00001 ТЦД50/кл и культивировании в поддерживающей среде, содержащей 2-5 % сыворотки крупного рогатого скота, титр вируса, полученного в культурах клеток ПО и VERO, составлял 6,0-6,8 lg ТЦД50/см3, в клетках RК-13/2-03 - 5,8-6,6 lg ТЦД50/см3. Таким образом, наиболее перспективным представляется использование для накопления вируса НД клональной перевиваемой линии клеток почки кролика RК-13/2-03.

Еще

Вирус нодулярного дерматита, перевиваемые культуры клеток, культура клеток кожи эмбриона лося, цитопатическое действие

Короткий адрес: https://sciup.org/142214107

IDR: 142214107   |   DOI: 10.15389/agrobiology.2017.6.1265rus

Список литературы Пермиссивность культур клеток различного происхождения при культивировании вируса нодулярного дерматита

  • Lumpy skin disease, Russia. Information received on 03/09/2015. Режим доступа: http://www.oie.int/wahis_2/public/wahid.php/Reviewreport/Review?page_refer=MapEventSummary&reportid=18582. Дата обращения: 25.12.2017.
  • Кривонос Р.А., Джаилиди Г.А., Мищенко А.В., Мищенко В.А., Черных О.Ю., Шевкопляс В.Н., Дресвянникова С.Г., Коломиец Д.В., Тихонов С.В. Проблема профилактики и ликвидации очагов нодулярного дерматита крупного рогатого скота. Ветеринария сегодня, 2017, 20(1): 38-44.
  • Buller R.M., Arif B.M., Black D.N., Dumbell K.R., Esposito J.J., Lefkowitz E.J., McFadden G., Moss B., Mercer A.A., Moyer R.W., Skinner M.A., Tripathy D.N. Poxviridae. Virus taxonomy: eight report of the International Committee on the Taxonomy of Viruses. Elsevier Academic Press, Oxford, 2005: 117-133.
  • Esposito J.J., Fenner F. Poxviruses. In: Fields virology/B.N. Fields, D.M. Knipe, P.M. Howley, R.M. Chanock, J.L. Melnick, T.P. Monathy, B. Roizman, S.E. Straus (eds.). 4th ed. Philadelphia, 2001: 2885-2921.
  • Body M.K., Singh K.P., Hussain M.H., Al-Rawahi A., Al-Maawali M., Al-Lamki K., Al-Habsy S. Clinico-histopathological findings and PCR based diagnosis of lumpy skin disease in the Sultanate of Oman. Pakistan Veterinary Journal, 2012, 32(2): 206-210.
  • Самуйленко А.Я., Соловьева Б.В., Непоклонова Е.А., Воронина Е.С. Инфекционная патология животных. Т. 1. М., 2006: 782-786.
  • Мищенко В.А., Мищенко А.В., Кононов А.В., Шевкопляс В.Н., Джаилиди Г.А., Дресвянникова С.Г., Черных О.Ю. Проблема нодулярного дерматита крупного рогатого скота. Ветеринария Кубани, 2015, 5: 3-6.
  • Мищенко А.В., Караулов А.К., Мищенко В.А. Нодулярный дерматит крупного рогатого скота. Ветеринария, 2016, 4: 3-6.
  • Lumpy skin disease. Chapter 2.4.14. Manual of diagnostic tests and vaccines for terrestrial animals. OIE. V. 1. Paris, 2012: 762-774.
  • Tuppurainen E.S.M., Oura C.A.L. Review: lumpy skin disease: an emerging threat to Europe, the Middle East and Asia. Transbound. Emerg. Dis., 2012, 59(1): 40-48 ( ) DOI: 10.1111/j.1865-1682.2011.01242.x
  • Şevik M., Avci O., Doğan M., İnce Ö.B. Serum biochemistry of lumpy skin disease virus-infected cattle. BioMed Res. Int., 2016, 2016: Article ID 6257984 ( ) DOI: 10.1155/2016/6257984
  • Watanabe T.T.N., Moeller R.B. Jr., Crossley B.M., Blanchard P.C. Outbreaks of bovine herpesvirus 2 infections in calves causing ear and facial skin lesions. Journal of Veterinary Diagnostic Investigation, 2017, 29(5): 686-690 ( ) DOI: 10.1177/1040638717704480
  • Черных О.Ю., Мищенко А.В., Мищенко В.А., Шевкопляс О.Ю. Специфическая профилактика нодулярного дерматита крупного рогатого скота. Ветеринария Кубани, 2016, 3: 3-5.
  • Gari G., Abie G., Gizaw D., Wubete A., Kidane M., Asgedom H., Bayissa B., Ayelet G., Oura C.A., Roger F., Tuppurainen E. Evaluation of the safety, immunogenicity and efficacy of three capripoxvirus Vaccine strains against lumpy skin disease virus. Vaccine, 2015, 33(28): 3256-3261 ( ) DOI: 10.1016/j.vaccine.2015.01.035
  • Carn V.M. Control of capripoxvirus infections. Vaccine, 1993, 11(13): 1275-1279.
  • Menasherow S., Rubinstein-Giuni M., Kovtunenko A., Eyngor Y., Fridgut O., Rotenberg D., Khinich Y., Stram Y. Development of an assay to differentiate between virulent and vaccine strains of lumpy skin disease virus (LSDV). J. Virol. Methods, 2014, 199: 95-101 ( ) DOI: 10.1016/j.jviromet.2013.12.013
  • Tuppurainen E.S., Pearson C.R., Bachanek-Bankowska K., Knowles N.J., Amareen S., Frost L., Henstock M.R., Lamien C.E., Diallo A., Mertens P.P. Characterization of sheep pox virus vaccine for cattle against lumpy skin disease virus. Antivir. Res., 2014, 109: 1-6 ( ) DOI: 10.1016/j.antiviral.2014.06.009
  • LSD. Chapter 2.4.13 Manual of diagnostic tests and vaccines for terrestrial animals. OIE, Paris, 2016.
  • Babiuk S., Bowden T.R., Parkyn G., Dalman B., Manning L., Neufeld J., Embury-Hyatt C., Copps J., Boyle D.B. Quantification of lumpy skin disease virus following experimental infection in cattle. Transbound. Emerg. Dis., 2008, 55(7): 299-307 ( ) DOI: 10.1111/j.1865-1682.2008.01024.x
  • El-Nahas E.M., El-Habbaa A.S., El-bagoury G.F., Radwan M.E. Isolation and identification of lumpy skin disease virus from naturally infected buffaloes. Egypt Global Veterinaria, 2011, 7(3): 234-237.
  • Kara P.D., Afonso C.L., Wallace D.B., Kutish G.F., Abolnik C., Lu Z., Vreede F.T., Taljaard L.C., Zsak A., Viljoen G.J., Rock D.L. Comparative sequence analysis of the South African vaccine strain and two virulent field isolates of lumpy skin disease virus. Arch. Virol., 2003, 148: 1335-1356 ( ) DOI: 10.1007/s00705-003-0102-0
  • Кононов А.В., Конова С.В., Шумилова И.Н., Нестеров А.Н., Диев В.И., Яшин Р.В., Мищенко А.В. Культурально-биологические свойства возбудителя нодулярного дерматита крупного рогатого скота, выделенного на территории Российской Федерации в 2015 году. Ветеринария сегодня, 2016, 3(8): 8-13.
  • Каталог коллекции клеточных культур ГНУ ВНИИВВиМ Россельхозакадемии. Покров, 2010: 89.
  • Сюрин В.Н., Белоусова Р.В., Фомина Н.В. Ветеринарная вирусология. М., 1992.
  • Bowden T.R., Babiuk S.L., Parkyn G.R., Copps J.S., Boyle D.B. Capripoxvirus tissue tropism and shedding: a quantitative study in experimentally infected sheep and goats. Virology, 2008, 371: 380-393 ( ) DOI: 10.1016/j.virol.2007.10.002
  • Osuagwuh U.I. Semen quality and the excretion of lumpy skin disease virus in semen following vaccination and experimental challenge of vaccinated bulls. MSc dissertation. Pretoria, 2006.
  • Рябикина О.А., Диев В.И., Кукушкина М.С. Нодулярный дерматит крупного рогатого скота. Актуальные вопросы ветеринарной биологии, 2015, 4(28): 45-52.
  • Abdulqa H.Y., Rahman H.S., Dyary H.O., Othman H.H. Lumpy skin disease. Reproductive Immunology: Open Access, 2016, 1(4): 25.
Еще
Статья научная