Перспективные направления использования биологических и биорациональных гербицидов в растениеводстве России (обзор)

Автор: Голубев А.С., Берестецкий А.О.

Журнал: Сельскохозяйственная биология @agrobiology

Рубрика: Обзоры, проблемы

Статья в выпуске: 5 т.56, 2021 года.

Бесплатный доступ

Появление резистентных к химическим гербицидам популяций сорных растений приводит к повсеместному снижению эффективности использования таких препаратов. Несмотря на то, что в Соединенных Штатах Америки, Канаде, Китае и Южной Африке на рынке средств борьбы с сорной растительностью внедряются биологические и биорациональные гербициды (БГБ), в Российской Федерации к настоящему моменту не зарегистрировано ни одного подобного препарата. В то же время развитие исследований по разработке экологически безопасных средств борьбы с сорными растениями позволяет рассчитывать на изменение существующей ситуации (А.О. Берестецкий, 2017; M. Triolet с соавт., 2020). Цель настоящего обзора - анализ современного ассортимента химических гербицидов, разрешенных для применения в России, для выявления рыночных ниш, которые могут занять биологические и биорациональные гербициды в ближайшем будущем. Для оценки перспектив использования БГБ в первую очередь учитывали спектр их действия, обусловленный видовой специфичностью фитопатогенов, который значительно уже спектра гербицидов химического синтеза (A. Berestetskiy с соавт., 2018; A. Berestetskiy, 2021). В основу анализа был положен перечень особо опасных для продукции растительного происхождения вредных организмов, подготовленный Всероссийским НИИ защиты растений (2013), в котором указаны следующие виды сорных растений: осот полевой ( Sonchus arvensis L.), бодяк щетинистый ( Cirsium setosum (Willd.) Bess.), вьюнок полевой ( Convolvulus arvensis L.), пырей ползучий ( Elytrigia repens (L.) Nevski) и овсюг обыкновенный ( Avena fatua L.). Перечень был дополнен двумя карантинными сорняками, ограниченно распространенными на территории Российской Федерации, но проблемными для ряда регионов, - амброзией полыннолистной ( Ambrosia artemisiifolia L.) и горчаком ползучим ( Acroptilon repens DC.). Указанные виды сорных растений обладают неодинаковой степенью вредоносности на разных культурах (А.М. Шпанев, 2011). В анализе были задействованы наиболее значимые с точки зрения структуры посевных площадей Российской Федерации сельскохозяйственные культуры. Наиболее перспективно применение БГБ в садах и виноградниках, где, в связи с исключением препаратов на основе глифосата, разрешено использовать лишь глюфосинат аммония (А.С. Голубев с соавт., 2018; А.С. Голубев с соавт., 2019). Кроме того, БГБ, применяемые совместно с этим гербицидом, позволили бы увеличить эффективность обработок и продолжительность защитного эффекта. Риски использования БГБ в садах и виноградниках не выглядят значимыми из-за относительной замкнутости этих агроэкосистем. Кормовые культуры и овощи закрытого грунта не имеют существенного потенциала в качестве ниш для применения БГБ: кормовые культуры - из-за низкой экономической отдачи, а овощи закрытого грунта - ввиду особенностей технологии их выращивания. Перспективным выглядит использование БГБ на полях, предназначенных под посев сельскохозяйственных культур, в осенний период и на паровых полях. В условиях севооборотов БГБ могут использоваться против многолетних корнеотпрысковых сорняков и горчака ползучего в период вегетации сои, подсолнечника и картофеля. На двух последних культурах БГБ могут применяться против амброзии полыннолистной. Занять нишу, связанную с уничтожением злаковых сорных растений (таких как пырей ползучий или овсюг), в условиях сложившегося ассортимента химических гербицидов, будет возможно только для подавления резистентных популяций сорняков.

Еще

Биогербициды, зерновые, кукуруза, соя, подсолнечник, картофель, сады, sonchus arvensis, cirsium setosum, convolvulus arvensis, elytrigia repens, avena fatua, ambrosia artemisiifolia, acroptilon repens

Короткий адрес: https://sciup.org/142231400

IDR: 142231400   |   DOI: 10.15389/agrobiology.2021.5.868rus

Список литературы Перспективные направления использования биологических и биорациональных гербицидов в растениеводстве России (обзор)

  • Берестецкий А.О. Биорациональные средства защиты растений. Защита и карантин растений, 2017, 8: 9-14.
  • Triolet M., Guillemin J.-P., Andre O., Steinberg C. Fungal‐based bioherbicides for weed control: a myth or a reality? Weed Research, 2020, 60(1): 60-77 (doi: 10.1111/wre.12389).
  • Willoughby I.H., Seier M.K., Stokes V.J., Thomas S.E., Varia S. Synthetic herbicides were more effective than a bioherbicide based on Chondrostereum purpureum in reducing resprouting of Rhododendron ponticum, a host of Phytophthora ramorum in the UK. Forestry: An International Journal of Forest Research, 2015, 88(3): 336-344 (doi: 10.1093/forestry/cpv004).
  • Tekiela D.R. Effect of the bioherbicide Pseudomonas fluorescens D7 on downy brome (Bromus tectorum). Rangeland Ecology & Management, 2020, 73(6): 753-755 (doi: 10.1016/j.rama.2019.10.007).
  • Soltys D., Krasuska U., Bogatek R., Gniazdowska A. Allelochemicals as bioherbicides — present and perspectives. In: Herbicides. Current research and case studies in use /A.J. Price, J.A. Kelton (eds.). IntechOpen, 2013 (doi: 10.5772/56185).
  • Hershenhorn J., Casella F., Vurro M. Weed biocontrol with fungi: past, present and future. Biocontrol Science and Technology, 2016, 26(10): 1313-1328 (doi: 10.1080/09583157.2016.1209161).
  • Berestetskiy A., Sokornova S. Production and stabilization of mycoherbicides. In: Biological approaches for controlling weeds /R. Radhakrishnan (ed.). IntechOpen, 2018 (doi: 10.5772/intechopen.76936).
  • Morin L. Annual progress in biological control of weeds with plant pathogens. Annual Review of Phytopathology, 2020, 58: 201-223 (doi: 10.1146/annurev-phyto-010820-012823).
  • Berestetskiy A. Development of mycoherbicides. In: Encyclopedia of mycology /Ó. Zaragoza, A. Casadevall (eds.). Elsevier, 2021, 2: 629-640 (doi: 10.1016/B978-0-12-819990-9.00059-7).
  • Sparks T.C., Bryant R.J. Impact of natural products on discovery of, and innovation in, crop protection compounds. Pest Manag. Sci., 2021 (doi: 10.1002/ps.6653).
  • Cordeau S., Triolet M., Wayman S., Steinberg C., Guillemin J. Bioherbicides: dead in the water? A review of the existing products for integrated weed management. Crop Protection, 2016, 87: 44-49 (doi: 10.1016/j.cropro.2016.04.016).
  • Nzioki H.S., Oyosi F., Morris C.E., Kaya E., Pilgeram A.L., Baker C.S., Sands D.C. Striga biocontrol on a toothpick: a readily deployable and inexpensive method for smallholder farmers. Frontiers in Plant Science, 2016, 7: 1121 (doi: 10.3389/fpls.2016.01121).
  • Treiber L., Pezolt C., Zeng H., Schrey H., Jungwirth S., Shekhar A., Stadler M., Bilitewski U., Erb-Brinkmann M., Schobert R. Dual agents: fungal macrocidins and synthetic analogues with herbicidal and antibiofilm activities. Antibiotics, 2021, 10(8): 1022 (doi: 10.3390/antibiotics10081022).
  • Korres N.E., Burgos N.R., Travlos I., Vurro M., Gitsopoulos T.K., Varanasi V.K., Duke S.O., Chad Brabham P.K., Rouse C.E., Salas-Perez R. New directions for integrated weed management: modern technologies, tools and knowledge discovery. Advances in Agronomy, 2019, 155: 243-319 (doi: 10.1016/bs.agron.2019.01.006).
  • Bailey K.L., Pitt W., Derby J., Walter S., Taylor W., Falk S. Efficacy of Phoma macrostoma, a bioherbicide for control of dandelion (Taraxacum officinale) following simulated rainfall conditions. The Americas Journal of Plant Science and Biotechnology, 2010, SI 2: 35-42.
  • Dayan F.E., Duke S.O. Natural products for weed management in organic farming in the USA. Outlooks on Pest Management, 2010, 21(4): 156-160 (doi: 10.1564/21aug02).
  • Shrestha A., Rodriguez A., Pasakdee S., Bañuelos G. Comparative efficacy of white mustard (Sinapis alba L.) and soybean (Glycine max L. Merr.) seed meals as bioherbicides in organic broccoli (Brassica oleracea Var. Botrytis) and spinach (Spinacea oleracea) production. Communications in Soil Science and Plant Analysis, 2015, 46(1): 33-46 (doi: 10.1080/00103624.2014.956884).
  • Mendes I.D.S., Rezende M.O.O. Assessment of the allelopathic effect of leaf and seed extracts of Canavalia ensiformis as postemergent bioherbicides: A green alternative for sustainable agriculture. Journal of Environmental Science and Health, Part B, 2014, 49(5): 374-380 (doi: 10.1080/03601234.2014.882179).
  • Raveau R., Fontaine J., Lounès-Hadj Sahraoui A. Essential oils as potential alternative biocontrol products against plant pathogens and weeds: a review. Foods, 2020, 9(3): 365 (doi: 10.3390/foods9030365).
  • Sarić-Krsmanović M., Umiljendić J.G., Radivojević L., Rajković M., Šantrić L., Đurović-Pejčev R. Chemical composition of Ambrosia trifida essential oil and phytotoxic effect on other plants. Chemistry & Biodiversity, 2020, 17(1): e1900508 (doi: 10.1002/cbdv.201900508).
  • Mangao A., Arreola S., San Gabriel E., Salamanez K. Aqueous extract from leaves of Ludwigia hyssopifolia (G. Don) Exell as potential bioherbicide. Journal of the Science of Food and Agriculture, 2020, 100(3): 1185-1194 (doi: 10.1002/jsfa.10128).
  • Rahayuningsih S., Supriadi S. Herbicidal efficacy of acetic acid and citric acid base on broad leaf weeds of medicinal crops fields. Buletin Penelitian Tanaman Rempah dan Obat, 2016, 25(2): 137-143 (doi: 10.21082/bullittro.v25n2.2014.137-143).
  • Lotina-Hennsen B., King-Díaz B., Pereda-Miranda R. Tricolorin a as a natural herbicide. Molecules, 2013, 18(1): 778-788 (doi: 10.3390/molecules18010778 ).
  • Chen S., Kang Y., Zhang M., Wang X., Strasser R.J., Zhou B., Qiang S. Differential sensitivity to the potential bioherbicide tenuazonic acid probed by the JIP-test based on fast chlorophyll fluorescence kinetics. Environmental and Experimental Botany, 2015, 112: 1-15 (doi: 10.1016/j.envexpbot.2014.11.009).
  • Спиридонов Ю.Я., Жемчужин С.Г., Клейменова И.Ю., Босак Г.С. Современное состояние проблемы изучения и применения гербицидов (дайджест публикаций за 2014-2017 гг.). Агрохимия, 2019, 6: 81-91 (doi: 10.1134/S0002188119060103).
  • Graupner P.R., Gerwick B.C., Siddall T.L., Carr A.W., Clancy E., Gilbert J.R., Bailey K.L. Derby J.-A. Chlorosis inducing phytotoxic metabolites: new herbicides from Phoma macrostoma. In: ACS Symposium Series, Vol. 927. Natural products for pest management /A.M. Rimando, S.O. Duke (eds.). American Chemical Society, 2006: 37-47 (doi: 10.1021/bk-2006-0927.ch003).
  • Irvine N.M., Yerkes C.N., Graupner P.R., Roberts R.E., Hahn D.R., Pearce C., Gerwick B.C. Synthesis and characterization of synthetic analogs of cinnacidin, a novel phytotoxin from Nectria sp. Pest. Manag. Sci., 2008, 64(9): 891-899 (doi: 10.1002/ps.1579).
  • Hahn D.R., Graupner P.R., Chapin E., Gray J., Heim D., Gilbert J.R., Gerwick B.C. Albucidin: a novel bleaching herbicide from Streptomyces albus subsp. chlorinus NRRL B-24108. The Journal of Antibiotics, 2009, 62(4): 191-194 (doi: 10.1038/ja.2009.11).
  • Gerwick B.C., Brewster W.K., deBoer G.J., Fields S.C., Graupner P.R., Hahn D.R., Pearce C.J., Schmitzer P.R., Webster J.D. Mevalocidin: A novel, phloem mobile phytotoxin from Fusarium DA056446 and Rosellinia DA092917. J. Chem. Ecol., 2013, 39: 253-261 (doi: 10.1007/s10886-013-0238-7).
  • Quy T.N., Xuan T.D., Andriana Y., Tran H., Khanh T.D., Teschke R. Cordycepin isolated from Cordyceps militaris: its newly discovered herbicidal property and potential plant-based novel alternative to glyphosate. Molecules, 2019, 24(16): 2901 (doi: 10.3390/molecules24162901 ).
  • Choi J.-S., Park N.-J., Lim H.-K., Ko Y.-K., Kim Y.-S., Ryu S.-Y., Hwang I.-T. Plumbagin as a new natural herbicide candidate for Sicyon angulatus control agent with the target 8-amino-7-oxononanoate synthase. Pesticide Biochemistry and Physiology, 2012, 103(3): 166-172 (doi: 10.1016/j.pestbp.2012.04.007).
  • Demasi S., Caser M., Vanara F., Fogliatto S., Vidotto F., Negre M., Trotta F., Scariot V. Ailanthone from Ailanthus altissima (Mill.) Swingle as potential natural herbicide. Scientia Horticulturae, 2019, 257: 108702 (doi: 10.1016/j.scienta.2019.108702).
  • Yan Y., Liu Q., Zang X., Yuan S., Bat-Erdene U., Nguyen C., Gan J., Zhou J., Jacobsen S.E., Tang Y. Resistance-gene-directed discovery of a natural-product herbicide with a new mode of action. Nature, 2018, 559: 415-418 (doi: 10.1038/s41586-018-0319-4).
  • Maienfisch P., Mangelinckx S. Recent innovation in crop protection research. In: Recent highlights in the discovery and optimization of crop protection products /P. Maienfisch, S. Mangelinckx (eds.). Elsevier Inc, 2021: 1-23 (doi: 10.1016/B978-0-12-821035-2.00001-2).
  • Rimando A.M., Duke S.O. Natural products for pest management. In: ACS Symposium Series, Vol. 927. Natural products for pest management /A.M. Rimando, S.O. Duke (eds.). American Chemical Society, 2006: 2-21 (doi: 10.1021/bk-2006-0927.ch001).
  • Верещагин А.Л., Захарьева Ю.И. Повышение эффективности n-(фосфонометил)-глицина при совместном применении с органическими кислотами — интермедиатами цикла Кребса. Экологический вестник Северного Кавказа, 2014, 10(1): 47-50.
  • Travlos I., Rapti E., Gazoulis I., Kanatas P., Tataridas A., Kakabouki I., Papastylianou P. The herbicidal potential of different pelargonic acid products and essential oils against several important weed species. Agronomy, 2020, 10(11): 1687 (doi: 10.3390/agronomy10111687).
  • Берестецкий А.О., Полуэктова Е.В., Мищенко А.В., Первушин А.Л., Сабашук Ю.А., Далинова А.А., Дубовик В.Р. Оптимизация получения и применения фитотоксинов грибов для борьбы с сорными растениями. Мат. III Межд. науч. конф. «Современное состояние, проблемы и перспективы развития аграрной наук». Ялта, 2018: 104-106.
  • Duke S., Owens D., Dayan F. The growing need for biochemical bioherbicides. In: ACS Symposium Series, Vol. 1172. Biopesticides: state of the art and future opportunities /A.D. Gross, J.R. Coats, S.O. Duke, J.N. Seiber (eds.). American Chemical Society, 2014: 31-43 (doi: 10.1021/bk-2014-1172.ch003).
  • Перечни опасных и особо опасных для растений и продукции растительного происхождения вредных организмов. Мат. IIIВсероссийского съезда по защите растений «Фитосанитарная оптимизация агроэкосистем». СПб, 2013, 1: 459-463.
  • Приказ Министерства сельского хозяйства Российской Федерации от 26 декабря 2007 г. N 673 «Об утверждении перечня карантинных объектов» (Зарегистрировано в Минюсте РФ 17 января 2008 г. N 10903).
  • Федеральная служба государственной статистики. Сельское хозяйство, охота и лесное хозяйство. Режим доступа: https://www.gks.ru/enterprise_economy?print=1. Дата обращения: 01.06.2021.
  • Протасова Л.Д., Ларина Г.Е. Конкурентоспособность сорных растений в агроценозе. Агрохимия, 2009, 6: 67-85.
  • Шпанев А.М. Подходы к оценке вредоносности сорных растений в агроценозах. Вестник защиты растений, 2011, 4: 57-70.
  • Шпанев А.М. Фитосанитарные аспекты возделывания сои в центральном Черноземье. Защита и карантин растений, 2012, 3: 40-42.
  • Шпанев А.М. Фитосанитарное состояние посевов гречихи и потери урожая от вредных организмов на юго-востоке Центрально-Черноземной зоны. Сельскохозяйственная биология, 2013, 5(48): 106-112.
  • Голубев А.С., Маханькова Т.А., Свирина Н.В. Новый гербицид Килео на основе глифосата и 2,4-Д. Известия Санкт-Петербургского государственного аграрного университета, 2017, 1(46): 80-84.
  • Голубев А.С., Маханькова Т.А. Перспективы борьбы с сорняками без глифосата. Новые и нетрадиционные растения и перспективы их использования, 2018, 13: 504-506.
  • Маханькова Т.А., Голубев А.С. Гербициды для зерновых колосовых культур. Защита и карантин растений, 2021, 1: 49-84.
  • Маханькова Т.А., Голубев А.С. Гербициды для кукурузы. Защита и карантин растений, 2018, 2: 37-64.
  • Маханькова Т.А., Голубев А.С. Гербициды для подсолнечника. Защита и карантин растений, 2019, 2: 37-63.
  • Редюк С.И. Защита картофеля от сорных растений. Вестник защиты растений, 2017, 2(92): 55-58.
  • Guske S., Schulz B., Boyle C. Biocontrol options for Cirsium arvense with indigenous fungal pathogens. Weed Research, 2004, 44(2): 107-116 (doi: 10.1111/j.1365-3180.2003.00378.x).
  • Müller E, Nentwig W. Plant pathogens as biocontrol agents of Cirsium arvense – an overestimated approach? NeoBiota, 2011, 11: 1-24 (doi: 10.3897/neobiota.11.1803).
  • Bailey K., Derby J.A., Bourdôt, G., Skipp B., Cripps M., Hurrell G., Saville D., Noble A. Plectosphaerella cucumerina as a bioherbicide for Cirsium arvense: proof of concept. BioControl,2017, 62: 693-704 (doi: 10.1007/s10526-017-9819-7).
  • Национальный доклад о карантинном фитосанитарном состоянии территории Российской Федерации в 2018 году. Защита и карантин растений, 2019, 7: 6-14.
  • Силаев А.И., Поляков С.С. Эффективность применения гербицидов Горчак и Горгон для борьбы с Acroptilon repens в нижнем Поволжье. Аграрный научный журнал, 2017, 4: 49-52.
  • Силаев А.И., Поляков С.С., Маханькова Т.А. Фитотоксичность гербицидов, применяемых для борьбы с горчаком ползучим. Фермер. Поволжье, 2019, 6(83): 70-74.
  • Ou X., Watson A.K. Mass culture of Subanguina picridis and its bioherbicidal efficacy on Acroptilon repens. Journal of Nematology, 1993, 25(1): 89-94.
  • Ramezani S., Saharkhiz M.J., Ramezani F., Fotokian M.H. Use of essential oils as bioherbicides. Journal of Essential Oil Bearing Plants, 2008, 11(3): 319-327 (doi: 10.1080/0972060X.2008.10643636).
  • Трофименко С.Л., Ракова К.А. Заболеваемость поллинозом в Ростове-на-Дону. Российская ринология, 2015, 1: 36-39 (doi: 10.17116/rosrino201523136-39).
  • Маханькова Т.А., Долженко В.И. Современный ассортимент гербицидов для защиты зерновых культур. Защита и карантин растений, 2013, 10: 46-50.
  • Кузнецова С.В., Багринцева В.Н. Гербициды для борьбы с амброзией в посевах кукурузы. Защитаикарантинрастений, 2019, 6: 41-43.
  • Golubev A.S. Study of the efficiency of a new herbicide benito on soybeans. Plant Protection News, 2019, 4(102): 54-59 (doi: 10.31993/2308-6459-2019-4-102-54-59).
  • Лучинский С.И., Маковеев А.В. Гербицид Евро-Лайтнинг в посевах подсолнечника. Политематический сетевой электронный научный журнал Кубанского государственного аграрного университета, 2011, 69: 401-412.
  • Есипенко Л.П., Савва А.П., Тележенко Т.Н., Замотайлов А.С., Хомицкий Е.Е. Методы борьбы с амброзией полыннолистной в России. Мат. Межд. науч.-практ. конф. «Биологическая защита растений — основа стабилизации агроэкосистем». Краснодар, 2018: 387-392.
  • Dmitrović S., Perišić M., Stojić A. Živković S., Boljević J., Nestorović Živković J., Aničić N., Ristić M., Mišić D. Essential oils of two Nepeta species inhibit growth and induce oxidative stress in ragweed (Ambrosia artemisiifolia L.) shoots in vitro. Acta Physiologiae Plantarum, 2015,37: 64 (doi: 10.1007/s11738-015-1810-2).
  • Lefebvre M., Leblanc M.L., Bourgeois G., Watson A.K. Intergenerational assessment of biofumigation on phenology of Ambrosia artemisiifolia and Abutilon theophrasti. Allelopathy Journal, 2019, 46(2): 163-184 (doi: 10.26651/allelo.j/2019-46-2-1206).
  • Лунева Н.Н. Сорные растения. Elytrigia repens (L.) Nevski — Пырей ползучий. В: Агроэкологический атлас России и сопредельных стран: экономически значимые растения, их вредители, болезни и сорные растения /Под ред. А.Н. Афонина, С.Л. Грин, Н.И. Дзюбенко, А.Н. Фролова (ред.). Режим доступа: http://www.agroatlas.ru/ru/content/weeds/Elytrigia_re-pens. Дата обращения: 01.06.2021.
  • Носкова Е.В. Влияние систем земледелия на показатели обилия сорных растений и урожайность кукурузы. Вестник АПК Верхневолжья, 2019, 2(46): 7-10 (doi: 10.35694/YARCX.2019.46.2.002).
  • Проворова О.Н., Панасин В.И., Григорович Л.М. Агрохимические аспекты эффективности применения гербицидов класса сульфонилмочевин при выращивании кукурузы (Zea mays L.) на зерно. Проблемы агрохимии и экологии, 2018, 1: 24-28.
  • Миренков Ю.А., Кажарский В.Р., Папсуев А.В., Булавин Л.А., Гвоздов А.П., Пынтиков С.А. О совершенствовании мер борьбы с многолетними сорными растениями. Вестник Белорусской государственной сельскохозяйственной академии, 2020, 1: 68-73.
  • Ringselle B., De Cauwer B., Salonen J., Soukup J. A review of non-chemical management of couch grass (Elymus repens). Agronomy, 2020, 10(8): 1178 (doi: 10.3390/agronomy10081178).
  • Илларионов А.И. Современные методы и средства защиты озимой пшеницы от сорных растений. Вестник Воронежского государственного аграрного университета, 2019, 3(62): 78-93 (doi: 10.17238/issn2071-2243.2019.3.78).
  • Попов Ю.В., Рукин В.Ф., Хрюкина Е.И. Своевременно реагировать на изменения фитосанитарного состояния картофеля. Защита и карантин растений, 2013, 11: 3-5.
  • Кондратьев А.А. Резистентность овсюга (Ayena fatua L.) к феноксапроп-п-этилу в условиях Приобья Алтая. ВестникАлтайскогогосударственногоаграрногоуниверситета, 2008, 1(39): 7-11.
  • Mortensen K., Hsiao A.I. Fungal infestation of seeds from seven populations of wild oats (Avena fatua L.) with different dormancy and viability characteristics. Weed Research, 1987, 27(4): 297-304 (doi: 10.1111/j.1365-3180.1987.tb00766.x).
  • de Luna L.Z., Kennedy A.C., Hansen J.C., Paulitz T.C., Gallagher R.S., Fuerst E.P. Mycobiota on wild oat (Avena fatua L.) seed and their caryopsis decay potential. Plant Health Progress, 2011, 12(1) (doi: 10.1094/PHP-2011-0210-01-RS).
  • Carsten L.D., Johnston M.R., Douglas L.I., Sands D.C. A field trial of crown rust (Puccinia coronata f. sp. avenae) as a biocontrol agent of wild oats on San Clemente Island. Biological Control, 2000, 19(2): 175-181 (doi: 10.1006/bcon.2000.0850).
  • Hetherington S.D., Auld B.A. Host range of Drechslera avenacea, a fungus with potential for use as a biological control agent of Avena fatua. Australasian Plant Pathology, 2001, 30(3): 205-210 (doi: 10.1071/ap01020).
  • Hetherington S.D., Smith H.E., Scanes M.G., Auld B.A. Effects of some environmental conditions on the effectiveness of Drechslera avenacea (Curtis ex Cooke) Shoem.: a potential bioherbicidal organism for Avena fatua L. Biological Control, 2002, 24(2): 103-109 (doi: 10.1016/s1049-9644(02)00020-8).
  • Kastanias M.A., Chrysayi-Tokousbalides M. Herbicidal potential of pyrenophorol isolated from a Drechslera avenae pathotype. Pest. Manag. Sci., 2000, 56(3): 227-232 (doi: 10.1002/(SICI)1526-4998(200003)56:3-227::AID-PS115-3.0.CO;2-A).
  • Kastanias M.A., Chrysayi-Tokousbalides M. Bioactivity of the fungal metabolite (8R,16R)-(−)-pyrenophorin on graminaceous plants. J. Agric. Food. Chem., 2005, 53(15): 5943-5947 (doi: 10.1021/jf050792m).
  • Aliferis, K.A., Chrysayi-Tokousbalides, M. Metabonomic strategy for the investigation of the mode of action of the phytotoxin (5S,8R,13S,16R)-(−)-pyrenophorol using1h nuclear magnetic resonance fingerprinting. J. Agric. Food. Chem., 2006, 54(5): 1687-1692 (doi: 10.1021/jf0527798).
  • Benchaa S., Hazzit M., Abdelkrim H. Allelopathic effect of Eucalyptus citriodora essential oil and its potential use as bioherbicide. Chem. Biodiversity, 2018, 15(8): e1800202 (doi: 10.1002/cbdv.201800202).
  • Benchaa S., Hazzit M., Zermane N., Abdelkrim H. Chemical composition and herbicidal activity of essential oils from two Labiatae species from Algeria, Journal of Essential Oil Research, 2019, 31(4): 335-346 (doi: 10.1080/10412905.2019.1567400).
  • Abdelgaleil S., Abdel-Razeek N., Soliman S. Herbicidal activity of three sesquiterpene lactones on wild oat (Avena fatua) and their possible mode of action. Weed Science, 2009, 57(1): 6-9 (doi: 10.1614/WS-08-093.1).
  • Anwar T., Qureshi H., Parveen N., Bashir R., Qaisar U., Munazir M., Yasmin S., Basit Z., Mahmood R., Nayyar B., Khani S., Khan S., Qureshi M., Wali M. Evaluation of bioherbicidal potential of Carica papaya leaves. Brazilian Journal of Biology, 2020, 80(3): 565-573 (doi: 10.1590/1519-6984.216359).
  • Голубев А.С., Борушко И.П., Долженко В.И. Эффективность глифосата и глюфосината аммония в борьбе с амброзией полыннолистной (Ambrosia artemisiifolia L.) в виноградниках. Садоводство и виноградарство, 2019, 4: 45-50 (doi: 10.31676/0235-2591-2019-4-45-50).
  • Чебановская А.Ф., Могилюк Н.Т. Возможность распространения горчака ползучего на территории Украины и меры борьбы с ним. ВестникАПКСтаврополья, 2014, 1(13): 42-45.
  • Zhang Y., Yang X., Zhu Y., Li L., Zhang Y., Li J., Song X., Qiang S. Biological control of Solidago canadensis using a bioherbicide isolate of Sclerotium rolfsii SC64 increased the biodiversity in invaded habitats. Biological Control, 2019, 139: 104093 (doi: 10.1016/j.biocontrol.2019.104093).
  • Camargo A., Stefanski F., Scapini T., Weirich S., Ulkovski C., Carezia C., Bordin E., Rossetto V., Júnior F., Galon L., Fongaro G., Mossi A., Treichel H. Resistant weeds were controlled by the combined use of herbicides and bioherbicides. Environmental Quality Management, 2019, 29: 37-42 (doi: 10.1002/tqem.21643).
  • Cai X., Gu M. Bioherbicides in organic horticulture. Horticulturae, 2016, 2(2): 3 (doi: 10.3390/horticulturae2020003).
  • Берестецкий А.О. Перспективы разработки биологических и биорациональных гербицидов. Вестник защиты растений, 2017, 1(91): 5-12.
  • Полуэктова Е.В., Берестецкий А.О. Грибы рода Colletotrichum как продуценты биологически активных соединений и биогербицидов. Микология и фитопатология, 2018, 6(52): 367-381 (doi: 10.1134/S0026364818060053).
Еще
Статья обзорная