Первое микотоксикологическое исследование горчицы белой (Sinapis alba L.)

Первое микотоксикологическое исследование горчицы белой (Sinapis alba L.)

Автор: Буркин А.А., Кононенко Г.П., Мосина Л.В.

Журнал: Сельскохозяйственная биология @agrobiology

Рубрика: Биоактивные метаболиты

Статья в выпуске: 1 т.54, 2019 года.

Бесплатный доступ

Сельскохозяйственные культуры, широко представленные как на возделываемых угодьях, так и в естественных ботанических формациях, привлекают все большее внимание исследователей. Это связано с хозяйственной значимостью и высокой ценностью таких растений как экспериментальных объектов. Согласно современным представлениям, комплекс вторичных веществ в растениях рассматривается как совместный продукт их ассоциаций с сообществами микроорганизмов, главным образом микроскопическими грибами (S. Kusari с соавт., 2012). Российскими исследователями выполнен первый цикл работ по сравнительноему изучению содержания микотоксинов в злаковых и бобовых травах на производственных посевах и в естественной среде обитания (G.P. Kononenko с соавт., 2015; A.A. Burkin с соавт., 2017). В представленной работе мы впервые получили сведения о характере контаминации крестоцветных растений токсичными метаболитами микроскопических грибов, выявили различия в их локализации по вегетативным и генеративным органам, а также изменения, сопровождающие полный цикл развития...

Еще

Горчица белая, микотоксины, т-2 токсин, диацетоксисцирпенол, дезоксиниваленол, зеараленон, фумонизины, альтернариол, афлатоксин в1, стеригматоцистин, роридин а, циклопиазоновая кислота, эмодин, охратоксин а, цитринин, микофеноловая кислота, pr-токсин, эргоалкалоиды, иммуноферментный анализ

Еще

Короткий адрес: https://sciup.org/142220087

IDR: 142220087   |   DOI: 10.15389/agrobiology.2019.1.186rus

Список литературы Первое микотоксикологическое исследование горчицы белой (Sinapis alba L.)

  • Burkin A.A., Kononenko G.P. Mycotoxin contamination of meadow grasses in European Russia. Agricultural Biology, 2015, 50(4): 503-512 ( ) DOI: 10.15389/agrobiology.2015.4.503eng
  • Kononenko G.P., Burkin A.A., Gavrilova O.P., Gagkaeva T.Yu. Fungal species and multiple mycotoxin contamination of cultivated grasses and legumes crops. Agricultural and Food Science, 2015, 24(4): 323-330 ( ) DOI: 10.23986/afsci.52313
  • Burkin A.A., Kononenko G.P., Gavrilova O.P., Gagkaeva T.Yu. Mycotoxins in the legumes of natural fodder of the European Russia. Agricultural Biology, 2017, 52(2): 409-417 ( ) DOI: 10.15389/agrobiology.2017.2.409eng
  • Kusari S., Spiteller M. Metabolomics of endophytic fungi producing associated plant secondary metabolites: progress, challenges and opportunities. In: Metabolomics/U. Roessner (ed.). In Tech, London: 2012, 241-266.
  • Серегин И.В. Фитохелатины и их роль в детоксикации кадмия у высших растений. Успехи биологической химии, 2001, 41: 283-300.
  • Katepa-Mupondwa F., Raney J.P., Rakow J. Recurrent selection for increased protein content in yellow mustard (Sinapis alba L.). Plant Breeding, 2005, 124(4): 382-387 ( )
  • DOI: 10.1111/j.1439-0523.2005.01131.x
  • Fu Y.B., Gugel R., Katepa-Mupondwa F. Genetic diversity of Sinapis alba germplasm as revealed by AFLP markers. Plant Genetic Resources, 2006, 4(2): 87-95 ( )
  • DOI: 10.1079/PGR2005100
  • Klóska Ł., Cegielska-Taras T., Piȩtka T. Regeneration capacity of selected genotypes of white mustard (Sinapis alba L.). In Vitro Cell. Dev. Biol.-Plant, 2012, 48(2): 180-188 ( )
  • DOI: 10.1007/s11627-012-9432-5
  • Fu Y.B., Cheng B., Peterson G.W. Genetic diversity analysis of yellow mustard (Sinapis alba L.) germplasm based on genotyping by sequencing. Genet. Resour. Crop Evol., 2014, 61(3): 579-594 ( )
  • DOI: 10.1007/s10722-013-0058-1
  • Рощина В.В. Биомедиаторы в растениях. Ацетилхолин и биогенные амины. Пущино, 1991.
  • Головкин Б.Н., Руденская Р.Н., Трофимова И.А., Шретер А.И. Биологически активные вещества растительного происхождения. М., 2001.
  • Popova I.E., Morra M.J. Simultaneous quantification of sinigrin, sinalbin, and anionic glucosinolate hydrolysis products in Brassica juncea and Sinapis alba seed extracts using ion chromatography. J. Agric. Food Chem., 2014, 62(44): 10687-10693 ( )
  • DOI: 10.1021/jf503755m
  • Vastenhout K.J., Tornberg R.H., Johnson A.L., Amolins M.W., Mays J.R. High-performance liquid chromatography-based method to evaluate kinetics of glucosinolate hydrolysis by Synapis alba myrosinase. Analytical Biochemistry, 2014, 465: 105-113 ( )
  • DOI: 10.1016/j.ab.2014.07.017
  • Javidfar F., Cheng B. Construction of a genetic linkage map and QTL analysis of erusic acid content and glucosinolate components in yellow mustard (Sinapis alba L.). BMC Plant Biol., 2013, 13: 142 ( )
  • DOI: 10.1186/1471-2229-13-142
  • Zhan X., Lui T., Duan M., Song J., Li X. De novo transcriptome analysis of Sinapis alba in revealing the glucosinolate and phytochelatin pathways. Front. Plant Sci., 2016, 7: 259 ( )
  • DOI: 10.3389/fpls.2016.00259
  • ГОСТ 31653-2012 Корма. Метод иммуноферментного определения микотоксинов. M., 2012.
  • The R project for statistical computing. Режим доступа: http://www.r-project.org. Без даты.
  • McDonald J.H. Handbook of biological statistics. Режим доступа: http://www.biostathandbook.com. Без даты.
  • Гаврилова О.П., Орина А.С., Гагкаева Т.Ю. Количественная оценка зараженности видов рода Trifolium грибами и контаминации микотоксинами. Агрохимия, 2017, 11: 58-66 ( )
  • DOI: 10.7868/S0002188117110072
  • Chang P.-K., Ehrlich K.C., Fujii I. Cyclopiazonic acid biosynthesis of Aspergillus flavus and Aspergillus oryzae. Toxins, 2009, 1: 74-99 ( )
  • DOI: 10.3390/toxins1020074
  • Левитин М.М., Ганнибал Ф.Б., Орина А.С., Гасич Е.Л., Хлопунова Л.Б., Баранова О.А. Грибы рода Alternaria на злаковых, пасленовых и крестоцветных культурах в России. Иммунология, аллергология, инфектология, 2010, 1(2): 112-113.
  • Tralamazza S.M., Piacentini K.C., Iwase C.H.T., Rocha L.O. Toxigenic Alternaria species: impact in cereals worldwide. Current Opinion in Food Science, 2018, 23: 57-63 ( )
  • DOI: 10.1016/j.cofs.2018.05.002
  • Ramires F.A., Masiello M., Somma S., Villani A., Susca A., Logriego A.F., Luz C., Meca G., Moretti A. Phylogeny and mycotoxin characterization of Alternaria species isolated from wheat grown in Tuscany, Italy. Toxins, 2018, 10(11): 472 ( )
  • DOI: 10.3390/toxins10110472
  • Shi W., Tan Y., Wang S., Gardiner D.M., De Saeger S., Liao Y., Wang Ch., Fan Y., Wang Zh., Wu A. Mycotoxigenic potentials of Fusarium species in various culture matrices revealed by mycotoxin profiling. Toxins, 2017, 9(1): 6 ( )
  • DOI: 10.3390/toxins9010006
  • Zielniok K., Szkoda K., Gajewska M., Wilczak J. Effect of biologically active substances present in water extracts of white mustard and coriander on antioxidant status and lipid peroxidation of mouse C2C12 skeletal muscle cells. J. Anim.Physiol. Anim. Nutr., 2016, 100(5): 988-1002 ( )
  • DOI: 10.1111/jpn.12412
  • Abdull Razis A.F., De Nicola G.R., Pagnotta E., Iori R., Ioannides C. 4-Methsulfanyl-3-butenyl isothiocyanate derived from glucoraphasatin is a potent inducer of rat hepatic phase II enzymes and a potential chemopreventive agent. Arch. Toxicol., 2012, 86(2): 183-194 ( )
  • DOI: 10.1007/s00204-011-0750-x
  • Agerbirk N., Warwick S.I., Hansen P.R., Olsen S.E. Sinapis phylogeny and evolution of glucosinolates and specific nitrile degrading enzymes. Phytochemistry, 2008, 69(17): 2937-2949 ( )
  • DOI: 10.1016/j.phytochem.2008.08.014
  • Burkin A.A., Ustyuzhanina M.I., Zotova E.V., Kononenko G.P. Reasons of contamination of production lots of sunflower (Helianthus annuus L.) seeds by mycotoxins. Agricultural Biology, 2018, 53(5): 969-976 ( )
  • DOI: 10.15389/agrobiology.2018.5.969eng
Еще
Статья научная
QR-код для установки приложения SciUp Наведите камеру и скачайте бесплатное приложение SciUp