Первое выявление гриба Fusarium coffeatum на территории Российской Федерации

Автор: Минаева Л.П., Самохвалова Л.В., Завриев С.К., Стахеев А.А.

Журнал: Сельскохозяйственная биология @agrobiology

Рубрика: Фитопатология

Статья в выпуске: 1 т.57, 2022 года.

Бесплатный доступ

Согласно данным Росстата, доля зерновых и зернобобовых культур в структуре сельскохозяйственного производства в России в 2014-2018 годах колебалась от 17,2 до 20,2 %, а их валовые сборы в тот же период - от 105,2 до 135,5 млн т. При этом острой остается проблема заражения зерна и продуктов его переработки фитопатогенами различной природы, в том числе токсигенными грибами рода Fusarium . В комплексе мер по противодействию распространения фузариозной инфекции важнейшую роль играет оценка видового состава грибов, поражающих сельскохозяйственные культуры в разных регионах. Для надежной видовой идентификации широко используется комплексный подход, включающий, помимо традиционных микробиологических методов, анализ нуклеотидных последовательностей маркерных генов и их сравнение со стандартными последовательностями, представленными в базах данных. Настоящая работа посвящена описанию изолята гриба рода Fusarium (штамм ION-3/4), выделенного из зерна пшеницы в Тульской области Российской Федерации (2014 год). Выделение и очистку ДНК из мицелия исследуемого изолята и референтных культур видов Fusarium equiseti и F. graminearum проводили с использованием набора DNAeasy® Plant Pro Kit («Qiagen», Германия). Секвенирование маркерных фрагментов генов фактора элонгации трансляции 1 альфа ( TEF1a, размер фрагмента 587 п.н.) и субъединицы РНК-полимеразы II ( RPB2 , размер фрагмента 689 п.н.) проводили модифицированным методом Сэнгера с использованием флуоресцентной метки на автоматическом секвенаторе ABI PRISM 3730 («Applied Biosystems», США). Для анализа расшифрованных нуклеотидных последовательностей генов TEF1a и RPB2 использовали алгоритм BLAST (https://blast.ncbi.nlm.nih.gov/Blast.cgi). Филогенетический анализ и построение филогенетических деревьев выполняли в программе MEGA-X (https://www.megasoftware.net/) с использованием метода максимального правдоподобия и двухпараметрической модели Кимуры. Макроморфологические характеристики изолята изучали при культивировании на специальных питательных средах, микроморфологические структуры оценивали с использованием микроскопа Olympus CX33 («Olympus Corporation», Япония). Совокупность полученных данных позволила охарактеризовать штамм ION-3/4 как представителя вида Fusarium coffeatum, недавно выделенного в качестве отдельной таксономической группы, входящей в состав комплекса видов F. incarnatum-equiseti . Филогенетически исследуемый изолят (штамм ION-3/4) формирует отдельную группу с типовым штаммом F. coffeatum 635.76. Ключевые морфологические характеристики (тип мицелия, форма и размер конидий, строение моно- и полифиалид) также соответствовали описанию характерных признаков этого вида. Поскольку вид F. coffeatum входит в комплекс видов F. incarnatum-equiseti , включающий возбудителей болезней растений, многие из которых способны к синтезу микотоксинов, то он также может рассматриваться как потенциальный фитопатоген, требующий пристального внимания и дальнейшего изучения.

Еще

Fusarium coffeatum, комплекс видов fusarium incarnatum-equiseti, филогенетический анализ, днк-маркеры, морфология

Короткий адрес: https://sciup.org/142234459

IDR: 142234459

Список литературы Первое выявление гриба Fusarium coffeatum на территории Российской Федерации

  • Гагкаева Т.Ю., Гаврилова О.П., Левитин М.М., Новожилов К.В. Фузариоз зерновых культур. Защита и карантин растений, 2011, 5: 69-120.
  • Gerlach W., Nirenberg H.I. The genus Fusarium — a pictorial atlas. Kommissionsverlag P. Parey, Berlin, 1982.
  • The Fusarium laboratory manual /J.F. Leslie, B.A. Summerell. Blackwell Publishing, 2006 (doi: 10.1002/9780470278376).
  • O'Donnell K., McCormick S.P., Busman M., Proctor R.H., Ward T.J., Doehring G., Geiser D.M., Alberts J.F., Rheeder J.P. Marasas et al. «Toxigenic Fusarium species: identity and mycotoxicology» revisited. Mycologia, 2018, 110(6): 1058-1080 (doi: 10.1080/00275514.2018.1519773).
  • Шнеер В.С. ДНК-штрихкодирование видов животных и растений — способ их молекулярной идентификации и изучения биоразнообразия. Журнал общей биологии, 2009, 70(4): 296-315.
  • Щеховцов С.В., Шеховцова И.Н., Пельтек С.Е. ДНК-штрихкодирование: методы и подходы. Успехи современной биологии, 2019, 139(3): 211-220 (doi: 10.1134/S0042132419030074).
  • Taylor J.W., Jacobson D.J., Kroken S., Kasuga T., Geiser D.M., Hibbett D.S., Fisher M.C. Phylogenetic species recognition and species concepts in Fungi. Fungal Genetics and Biology, 2000, 31, 21-32 (doi: 10.1006/fgbi.2000.1228).
  • O'Donnell K., Humber R.A., Geiser D.M., Kang S., Park B., Robert V.A.R.G., Crous P.W., Johnston P.R., Aoki T., Rooney A.P., Rehner S.A. Phylogenetic diversity of insecticolous fusaria inferred from multilocus DNA sequence data and their molecular identification via FUSARIUM-ID and Fusarium MLST. Mycologia, 2012, 104(2): 427-445 (doi: 10.3852/11-179).
  • O'Donnell K., Ward T.J., Robert V.A.R.G., Crous P.W., Geiser D.M., Kang S. DNA sequence-based identification of Fusarium: current status and future directions. Phytoparasitica, 2015, 43: 583-595 (doi: 10.1007/s12600-015-0484-z).
  • Стахеев А.А., Самохвалова Л.В., Рязанцев Д.Ю., Завриев С.К. Молекулярно-генетические методы в исследовании таксономии и специфической идентификации токсинпродуциру-ющих грибов рода Fusarium: успехи и проблемы. Сельскохозяйственная биология, 2016, 51(3): 275-284 (doi: 10.15389/agrobiology.2016.3.275rus).
  • Kristensen R., Torp M., Kosiak B., Holst-Jensen A. Phylogeny and toxigenic potential is correlated in Fusarium species as revealed by partial translation elongation factor 1 alpha gene sequences. Mycological Research, 2005, 109: 173-186 (doi: 10.1017/S0953756204002114).
  • O'Donnell K., Rooney A.P., Proctor R.H., Brown D.W., McCormick S.P., Ward T.J., Frand-sen R.J.N., Lysee E., Rehner S.A., Aoki T., Robert V.A.R.G., Crous P.W., Groenewald J.Z., Kang S., Geiser D.M. Phylogenetic analyses of RPB1 and RPB2 support a middle Cretaceous origin for a clade comprising all agriculturally and medically important fusaria. Fungal Genetics and Biology, 2013, 52: 20-31 (doi: 10.1016/j.fgb.2012.12.004).
  • Гагкаева Т.Ю., Гаврилова О.П., Стахеев А.А., Рязанцев Д.Ю., Завриев С.К. Первое обнаружение в России гриба Fusarium torulosum. Микология и фитопатология, 2012, 46(1): 86-91.
  • Gagkaeva T., Gavrilova O., Orina A. First report of Fusarium globosum associated with barley grain in the southwestern part of Siberia. Plant Disease, 2019, 103(3): 588 (doi: 10.1094/PDIS-06-18-1108-PDN).
  • O'Donnell K., Kistler H.C., Tacke B.K., Casper H.H. Gene genealogies reveal global phylogeo-graphic structure and reproductive isolation among lineages of Fusarium graminearum, the fungus causing wheat scab. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America, 2000, 97(14): 7905-7910 (doi: 10.1073/pnas.130193297).
  • O'Donnell K., Sutton D.A., Rinaldi M.G., Gueidan C., Crous P.W., Geiser D.M. Novel multi-locus sequence typing scheme reveals high genetic diversity of human pathogenic members of the Fusarium incarnatum-F. equiseti and F. chlamydosporum species complexes within the United States. Journal of Clinical Microbiology, 2009, 47(12): 3851-3861 (doi: 10.1128/JCM.01616-09).
  • Castella G., Cabaсes F.J. Phylogenetic diversity of Fusarium incarnatum-equiseti species complex isolated from Spanish wheat. Antonie van Leeuwenhoek, 2014, 106(2): 309-317 (doi: 10.1007/s10482-014-0200-x).
  • Villani A., Moretti A., De Saeger S., Hab Z., Di Mavungu J.D., Soares C.M.G., Proctor R.H., Vernncio A., Lima N., Stea G., Paciolla C., Logrieco A.F., Susca A. A polyphasic approach for characterization of a collection of cereal isolates of the Fusarium incarnatum-equiseti species complex. International Journal of Food Microbiology, 2016, 234: 24-35 (doi: 10.1016/j.ijfoodmicro.2016.06.023).
  • Ramdial H., Latchoo R.K., Hosein F.N., Rampersad S.N. Phylogeny and haplotype analysis of fungi within the Fusarium incarnatum-equiseti species complex. Phytopathology, 2017, 107: 109210 (doi: 10.1094/PHYTO-05-16-0209-R).
  • Xia J.W., Sandoval-Denis M., Crous P.W., Zhang X.G., Lombard L. Numbers to names — restyling the Fusarium incarnatum-equiseti species complex. Persoonia, 2019, 43: 186-221 (doi: 10.3767/persoonia.2019.43.05).
  • Villani A., Proctor R.H., Kim H-S., Brown D.W., Logrieco A.F., Amatulli M.T., Moretti A., Susca A. Variation in secondary metabolite production potential in the Fusarium incarnatum-equiseti species complex revealed by comparative analysis of 13 genomes. BMC Genomics, 2019, 20: 314 (doi: 10.1186/s12864-019-5567-7).
  • Стахеев А.А., Самохвалова Л.В., Звездина Ю.К., Завриев С.К. Филогенетический анализ и молекулярное типирование трихотеценпродуцирующих грибов рода Fusarium из российских коллекций. Acta Naturae, 2018, 10(2-37): 85-99.
  • Saitou N., Nei M. The neighbor-joining method: a new method for reconstructing phylogenetic trees. Molecular Biology and Evolution, 1987, 4(4): 406-425 (doi: 10.1093/oxfordjournals.mol-bev.a040454).
  • Stakheev A.A., Ryazantsev D.Yu., Gagkaeva T.Yu., Zavriev S.K. PCR detection of Fusarium fungi with similar profiles of the produced mycotoxins. Food Control, 2011, 22(3-4): 462-468 (doi: 10.1016/j.foodcont.2010.09.028).
  • Kumar S., Stecher G., Li M., Knyaz C., Tamura K. MEGA X: molecular evolutionary genetics analysis across computing platforms. Molecular Biology and Evolution, 2018, 35(6): 1547-1549 (doi: 10.1093/molbev/msy096).
  • Kimura M. A simple method for estimating evolutionary rates of base substitutions through comparative studies of nucleotide sequences. Journal of Molecular Evolution, 1980, 16: 111-120 (doi: 10.1007/BF01731581).
  • Lombard L., van Doorn R., Crous P.W. Neotypification of Fusarium chlamydosporum — a reappraisal of clinically important species complex. Fungal Systematics and Evolution, 2019, 4: 183200 (doi: 10.3114/fuse.2019.04.10).
Еще
Статья научная