Почвенные микробные сообщества как источник штаммов для биологической защиты сои от фузариоза в Приенисейской Сибири

Автор: Родовиков С. А., Чураков А. А., Попова Н. М., Хижняк С. В.

Журнал: Вестник Нижневартовского государственного университета @vestnik-nvsu

Рубрика: Экология растений

Статья в выпуске: 2, 2020 года.

Бесплатный доступ

Из почвенных микробных сообществ Приенисейской Сибири выделены 18 штаммов бактерий-антагонистов, подавляющих рост возбудителей фузариоза сои. Два наиболее активных антагониста (штамм RSA-1, предварительно идентифицированный как представитель р. Bacillus, и штамм RSA-13, предварительно идентифицированный как представитель р. Streptomyces) были протестированы в качестве биологических агентов для защиты сои от фузариоза в лабораторных условиях. В отсутствие искусственного заражения штамм RSA-1 снизил распространенность фузариоза на 25 процентных пунктов (с 61,5% до 36,5%, статистическая значимость эффекта p

Соя, фузариоз, приенисейская сибирь, биологическая защита

Короткий адрес: https://sciup.org/14117221

IDR: 14117221   |   DOI: 10.36906/2311-4444/20-2/01

Список литературы Почвенные микробные сообщества как источник штаммов для биологической защиты сои от фузариоза в Приенисейской Сибири

  • Баранов В. Ф., Махонин В. Л. О биологической защите агрофитоценозов сои от вредных организмов // Масличные культуры. 2014. Вып. 1 (157-158). С. 152-164.
  • Горобей И. М., Ашмарина Л. Ф., Коняева Н. М. Фузариозы зернобобовых культур в лесостепной зоне Западной Сибири // Защита и карантин растений. 2011. № 2. С. 14-16.
  • Жаркова С. В., Манылова О. В. Эффективность биофунгицида Метабактерин, СП на посевах сои Glycine max (L.) Merrill // Вестник Алтайского государственного аграрного университета. 2018. № 12 (170). С. 5-10.
  • Заостровных В. И., Кадуров А. А., Дубовицкая Л. К., Рязанова О. А. Мониторинг видового состава болезней сои в различных зонах соесеяния // Дальневосточный аграрный вестник. 2018. № 4 (48). С. 51-67. DOI: 10.24411/1999-6837-2018-14081
  • Курилова Д. А. Вредоносность фузариоза сои в зависимости от степени поражения растений // Масличные культуры. 2010. № 2(144-145). С. 84-89.
  • Маслиенко Л. В., Курилова Д. А., Шипиевская Е. Ю., Асатурова А. М. Первичный скрининг штаммов грибов и бактерий антагонистов к возбудителю фузариоза сои // Масличные культуры. 2009. № 1(140). С. 114-119.
  • Межгосударственный стандарт ГОСТ 12044-93 "Семена сельскохозяйственных культур. Методы определения зараженности болезнями". Принят 21 октября 1993 г.
  • Семыкин В. А., Пигорев И. Я., Тарасов А. А., Глинушкин А. П., Плыгун С. А., Сычева И. И. Микробные препараты и регулятор роста как средства биологизации земледелия // Russian Journal of Agricultural and Socio-Economic Sciences. 2016. Т. 11. № 59. С. 3-9.
  • DOI: 10.18551/rjoas.2016-11.01
  • Чураков А. А. Направления селекции сои в Красноярском крае // Зернобобовые культуры, развивающееся направление в России: Второй Международный форум (Омск, 17-20 июля 2018 г.). Омск: Полиграфический центр КАН, 2018. С. 175-180.
  • Штерншис М. В., Беляев А. А., Цветкова В. П., Шпатова Т. В., Леляк А. А., Бахвалов С. А. Биопрепараты на основе бактерий рода Bacillus для управления здоровьем растений. Новосибирск: изд-во СО РАН. 2016. 284 с.
  • Хижняк С. В., Пучкова Е. П., Петрушкина С. А. Экспресс-метод выявления штаммов-антагонистов для биологической защиты растений от фитопатогенных грибов // Приоритетные направления научно-технологического развития агропромышленного комплекса России: Материалы Национальной научно-практической конференции. 2019. Ч. 2. С. 590-594.
  • Amaria W., Soesanthy F., Ferry Y. The Effectiveness of Biofungicide Trichoderma sp. with Three Kinds of Carrier on White Root Disease Rigidoporus microporus // Jurnal Tanaman Industri dan Penyegar. 2016. V. 3. № 1. P. 37-44.
  • DOI: 10.21082/jtidp.v3n1.2016.p37-44
  • Anderson E. J., Ali M. L., Beavis W. D., Chen P., Clemente T. E., Diers B. W., Nelson R. L. et al. Soybean [Glycine max (L.) Merr.] Breeding: History, Improvement, Production and Future Opportunities // Advances in Plant Breeding Strategies: Legumes. Springer, Cham, 2019. P. 431-516.
  • DOI: 10.1007/978-3-030-23400-3_12
  • Butu M., Stef R., Grozea I., Corneanu M., Butnariu M. Biopesticides: Clean and Viable Technology for Healthy Environment // Bioremediation and Biotechnology. 2020. P. 107-151.
  • DOI: 10.1007/978-3-030-35691-0_6
  • Delaney M., ArchMiller A. A., Delaney D. P., Wilson A. E., Sikora E. J. Effectiveness of fungicide on soybean rust in the southeastern united states: a meta-analysis // Sustainability. 2018. V. 10. № 6. P. 1784.
  • DOI: 10.3390/su10061784
  • Dean R., Van Kan J. A., Pretorius Z. A., Hammond-Kosack K. E., Di Pietro A., Spanu P. D.,.. Foster G. D. The Top 10 fungal pathogens in Molecular plant pathology // Molecular plant pathology. 2012. V. 13. № 4. P. 414-430.
  • DOI: 10.1111/j.1364-3703.2011.00783.x
  • Food and Agricultural organization. Food and agricultural data. URL http://www.fao.org/faostat/en/#data/QC
  • Grichar, W. J. Soybean (Glycine max L.) Response to Fungicides in the Absence of Disease Pressure // International Journal of Agronomy. 2013.
  • DOI: 10.1155/2013/561370
  • Haddad P. E., Leite L. G., Lucon C. M. M., Harakava R. Selection of Trichoderma spp. strains for the control of Sclerotinia sclerotiorum in soybean // Pesquisa Agropecuária Brasileira. 2017. V. 52. № 12. P. 1140-1148.
  • DOI: 10.1590/s0100-204x2017001200002
  • Hartman G. L., West E. D., Herman T. K. Crops that feed the World 2. Soybean-worldwide production, use, and constraints caused by pathogens and pests // Food Security. 2011. V. 3. № 1. P. 5-17.
  • DOI: 10.1007/s12571-010-0108-x
  • O'Brien P. A. Biological control of plant diseases // Australasian Plant Pathology. 2017. V. 46. № 4. P. 293-304.
  • DOI: 10.1007/s13313-017-0481-4
  • Savary S., Willocquet L., Pethybridge S. J., Esker P., McRoberts N., Nelson A. The global burden of pathogens and pests on major food crops // Nature ecology & evolution. 2019. V. 3. № 3. P. 430-439.
  • DOI: 10.1038/s41559-018-0793-y
  • Thakkar A., Saraf M. Development of microbial consortia as a biocontrol agent for effective management of fungal diseases in Glycine max L // Archives of Phytopathology and Plant Protection. 2015. V. 48. № 6. P. 459-474.
  • DOI: 10.1080/03235408.2014.893638
  • Vasebi Y., Safaie N., Alizadeh A. Biological control of soybean charcoal root rot disease using bacterial and fungal antagonists In Vitro and greenhouse condition // Journal of Crop Protection. 2013. V. 2. № 2. P. 139-150. http://journals.modares.ac.ir/article-3-9001-en.html
Еще
Статья научная