Поиск активного центра пептидил-пролил-цис/транс-изомеразы из Pseudomonas fluorescens, ответственного за индукцию устойчивости к вирусу табачной мозаики у растений табака (Nicotiana tabacum L.)

Автор: Джавахия В.Г., Воинова Т.М., Шумилина Д.В.

Журнал: Сельскохозяйственная биология @agrobiology

Рубрика: Элиситоры и биометод в защите растений

Статья в выпуске: 3 т.51, 2016 года.

Бесплатный доступ

Индуцирование устойчивости биогенными элиситорами или их аналогами признается перспективным направлением в современных технологиях защиты растений от болезней. Различные элиситоры, выделенные к настоящему времени из фитопатогенов или из не патогенных для растений микроорганизмов, представлены олигосахаридами, гликопротеинами, липидами, пептидами и белками. Первым белковым элиситором, нашедшим применение в сельском хозяйстве, был харпин, выделенный из бактерии Erwinia amylovora, на основе которого был разработан коммерческий препарат Messenger® (США). В проведенных нами ранее исследованиях из клеток штамма 197 Pseudomonas fluorescens был выделен белок-элиситор MF3, способный индуцировать устойчивость растений к вирусным и грибным патогенам. Столь широкий спектр действия предполагал перспективность использования MF3 в качестве потенциального средства защиты сельскохозяйственных культур от болезней. Была определена полная аминокислотная последовательность выявленного белка и показана высокая степень ее гомологии пептидил-пролил-цис/транс-изомеразам FKBP-типа той же бактерии, вследствие чего MF3 получил название Pf197_ППИ-аза. В отличие от многих белковых индукторов устойчивости растений к фитопатогенам Pf197_ППИ-аза обладает высокой термостабильностью, что облегчает выделение и очистку белка из клеточных лизатов с помощью их кипячения. Активные центры большинства известных белковых индукторов устойчивости растений к патогенам, как правило, связаны с наиболее консервативными участками полипептидной цепи. Мы предположили, что активный центр Pf197_ППИ-азы, ответственный за ее способность индуцировать устойчивость, может быть локализован в одной из наиболее консервативных аминокислотных последовательностей этого белка. Расчет такой последовательности при помощи биоинформационного ресурса PROSITE показал, что она содержит гидролизуемые трипсином сайты, образованные аминокислотами аргинином и лизином. Препараты Pf197_ППИ-азы были получены из штамма Escherichia coli BL21(DE3)+plMF3 - суперпродуцента ППИ-азы. Трипсинолиз Pf197_ППИ-азы приводил к утрате способности белка индуцировать устойчивость растений к патогенам, что косвенно подтвердило правильность нашего предположения об ответственности консервативного участка за элиситорную активность белка. Посредством химического синтеза (Пущинский филиал Института биоорганической химии) был получен соответствующий консервативному участку олигомер, состоящий из 29 аминокислот (Pf_29ак). Дальнейшие эксперименты показали, что эквимолярные концентрации Pf197_ППИ-азы и олигопептида Pf_29ак в одинаковой степени индуцируют устойчивость растений табака Nicotiana tabacum L. к вирусу табачной мозаики (ВТМ). Это было подтверждено в биотесте при подсчете развившихся некрозов на листьях растений табака ( Nicotiana tabacum L.) сорта Xanthi (NN). Листья обрабатывали исследуемыми препаратами и помещали во влажную камеру, инкубировали 1 сут при 22 °С, после чего инокулировали вирусом и выдерживали во влажной камере 3-4 сут при 22 °С. Полученные результаты позволили сделать вывод о том, что для индуцирования устойчивости растений к ВТМ достаточно одного консервативного участка Pf197_ППИ-азы. Далее предполагается определить минимальный размер активного центра, способного проявлять элиситорные свойства.

Еще

Индуцированная устойчивость растений к патогенам, белковые элиситоры, вирус табачной мозаики, пептидил-пролил-цис/транс-изомеразы, консервативные последовательности белков

Короткий адрес: https://sciup.org/142214146

IDR: 142214146   |   DOI: 10.15389/agrobiology.2016.3.392rus

Список литературы Поиск активного центра пептидил-пролил-цис/транс-изомеразы из Pseudomonas fluorescens, ответственного за индукцию устойчивости к вирусу табачной мозаики у растений табака (Nicotiana tabacum L.)

  • Gerwick B.C., Sparks T.C. Natural products for pest control: an analysis of their role, value and future. Pest Manag. Sci., 2014, 70: 1169-118 ( ) DOI: 10.1002/ps.3744
  • Hutchins S.H. Natural products for crop protection: evolution or intelligent design. In: Discovery and synthesis of crop protection products/P. Maienfisch, M.S. Thomas (eds.). ACS Symposium Series, 2015: 55-62 ( ) DOI: 10.1021/bk-2015-1204.ch005
  • Bhatia S., Sinha R.K., Sharma R. Seeking alternatives to chemical fertilizers for sustainable agriculture: study of the impact of vermicompost on growth and yield of potted wheat crops. International Journal of Environmental Education and Information, 2000, 19: 295-304.
  • Duke S.O., Abbas H.K. Natural products with potential use as herbicides. In: Allelopathy/K.M.M. Inderjit, F.A. Dakshini, K. Einhellig (eds.). ACS Symposium Series, 1994: 348-362 ( ) DOI: 10.1021/bk-1995-0582.ch025
  • Gahukar R.T. Evaluation of plant-derived products against pests and diseases of medicinal plants: a review. Crop Protection, 2012, 42: 202-209 ( ) DOI: 10.1016/j.cropro.2004.05.002
  • Roberts D.P., Lakshman D.K., Maul J.E., McKenna L.F., Buyer J.S., Fan B. Control of damping-off of organic and conventional cucumber with extracts from a plant-associated bacterium rivals a seed treatment pesticide. Crop Protection, 2014, 65: 86-94 ( ) DOI: 10.1016/j.cropro.2014.07.009
  • Mejía-Teniente L., Torres-Pacheco I., González-Chavira M.M., Oc-ampo-Velazquez R.V., Herrera-Ruiz G., Chapa-Oliver A.M., Guevara-González R.G. Use of elicitors as an approach for sustainable agriculture. African Journal of Biotechnology, 2010, 9: 9155-9162 ( ) DOI: 10.5897/AJB2010.000-3340
  • Ahemad M., Kibret M. Mechanisms and applications of plant growth promoting rhizobacteria: Current perspective. Journal of King Saud University -Science, 2014, 26: 1-20 ( ) DOI: 10.1016/j.jksus.2013.05.001
  • Djavakhia V.G., Nikolaev O.N., Voinova T.M., Battchikova N.V., Korpela T., Khomutov R.M. DNA sequence of gene and amino acid sequence of protein from Bacillus thuringiensis, which induces non-specific resistance of plants to viral and fungal diseases. Journal of Russian Phytopathological Society, 2000, 1: 75-81.
  • Шумилина Д.В., Воинова Т.М., Джавахия В.Г. Микробный фактор 3 -база для создания новых биопестицидов. Защита и карантин растений, 2006, 10: 20-21.
  • Shcherbakova L.A., Odintsova T.I., Stakheev A.A., Fravel D.R., Zavriev S.K. Identification of a novel small cysteine-rich protein in the fraction from the biocontrol Fusarium oxysporum strain CS-20 that mitigates fusarium wilt symptoms and triggers defense responses in tomato. Front. Plant Sci., 2016, 6(1207): 1-15 ( ) DOI: 10.3389/fpls.2015.01207
  • Shumilina D., Krämer R., Klocke E., Dzhavakhiya V. MF3 (peptidyl-prolyl cis-trans isomerase of FKBP type from Pseudomonas fluorescens) -an elicitor of non-specific plant resistance against pathogens. Phytopathologica Polonica, 2006, 41: 39-49.
  • Шумилина Д.В., Джавахия В.Г. Изучение способности MF3 (пептидил-пролил цис-транс изомеразы FKBP типа) из Pseudomonas fluorescens повышать устойчивость растений табака к вирусным и грибным патогенам. Агро XXI, 2007, 7-9: 12-13.
  • Isaki L., Beers R., Wu H.C. Nucleotide sequence of the Pseudomonas fluorescens signal peptidase II gene (lsp) and flanking genes. J. Bacteriol., 1990, 172: 6512-6517.
  • Wei Z.-M., Qiu D., Kropp M.J., Schading R.L. Harpin, an HR elicitor, activates both defense and growth systems in many commercially important crops. Phytopathology, 1998, 88(suppl.): 96.
  • Gómez-Gómez L., Boller T. Flagellin perception: a paradigm for innate immunity. Trends Plant Sci., 2002, 7(6): 251-256 ( ) DOI: 10.1016/S1360-1385(02)02261-6
  • Gómez-Gómez L. Plant perception systems for pathogen recognition and defense. Mol. Immunol., 2004, 41(11): 1055-1062 ( ) DOI: 10.1016/j.molimm.2004.06.008
  • Kunze G., Zipfel C., Robatzek S., Niehaus K., Boller T., Felix G. The N terminus of bacterial elongation factor Tu elicits innate immunity in Arabidopsis plants. Plant Cell, 2004, 16: 3496-3507 ( ) DOI: 10.1105/tpc.104.026765
  • Felix G., Boller T. Molecular sensing of bacteria in plants. The highly conserved RNA-binding motif RNP-1 of bacterial cold shock proteins is recognized as an elicitor signal in tobacco. J. Biol. Chem., 2003, 278(8): 6201-6208 ( ) DOI: 10.1074/jbc.M209880200
  • Кромина К.А., Джавахия В.Г. Экспрессия бактериального гена CspD в растениях табака приводит к их повышенной устойчивости к грибным и вирусным фитопатогенам. Молекулярная генетика, вирусология и микробиология, 2006, 1: 31-34.
  • Laemmli U.K. Cleavage of structural protein during the assembly of the head of the bacteriophage T4. Nature, 1970, 227: 680-685 ( ) DOI: 10.1038/227680a0
  • Sigrist C.J.A., Cerutti L., Hulo N., Gattiker A., Falquet L., Pagni M., Bairoch A., Bucher P. PROSITE: a documented database using patterns and profiles as motif descriptors. Brief Bioinformatics, 2002, 3: 265-274 ( ) DOI: 10.1093/bib/3.3.265
  • de Castro E., Sigrist C.J.A., Gattiker A., Bulliard V., Langendijk-Gen-evaux P.S., Gasteiger E., Bairoch A., Hulo N. ScanProsite: detection of PROSITE signature matches and ProRule-associated functional and structural residues in proteins. Nucl. Acids Res., 2006, 34: W362-W365 ( ) DOI: 10.1093/nar/gkl124
  • Nürnberger T., Lipka V. Non-host resistance in plants: new insights into an old phenomenon. Mol. Plant Pathol., 2005, 6: 335-345 ( ) DOI: 10.1111/j.1364-3703.2005.00279.x
  • Jones J.D.G. The plant immune system. Nature, 2006, 444: 323-329 ( ) DOI: 10.1038/nature05286
  • Bittel P., Robatzek S. Microbe-associated molecular patterns (MAMPs) probe plant immunity. Curr. Opin. Plant Biol., 2007, 10: 335-341 ( ) DOI: 10.1016/j.pbi.2007.04.021
  • Felix G.G., Duran J.D., Volko S., Boller T. Plants have a sensitive perception system for the most conserved domain of bacterial flagellin. The Plant Journal, 1999, 18: 265-276 ( ) DOI: 10.1046/j.1365-313X.1999.00265.x
  • Galat A., Riviere S. Peptidyl-prolyl cis/trans isomerases. Oxford University Press, Oxford, NY, 1998: 117.
  • Harrar Y., Bellini C., Faure J.D. FKBPs: at the crossroads of folding and transduction. Trends Plant Sci., 2001, 6(9): 426-431 ( ) DOI: 10.1016/S1360-1385(01)02044-1
  • Ivery M. Immunophilins: switched оn protein binding domains? Med. Res. Rev., 2000, 20(6): 452-484 (doi: 10.1002/1098-1128(200011)20:63.0.CO;2-6).
  • Lee J.R., Park S.-C., Kim J.-Y., Lee S.S., Park Y., Cheong G.-W., Hahm K.-S., Lee S.Y. Molecular and functional characterization of a cyclophilin with antifungal activity from Chinese cabbage. BBRC, 2007, 353: 672-678 ( ) DOI: 10.1016/j.bbrc.2006.12.102
Еще
Статья научная