Поиск природных пептидаз в микробном мате горячего источника Гарга и их разнообразие

Автор: Лаврентьева Е.В., Раднаев В.С.

Журнал: Вестник Бурятского государственного университета. Химия. Физика @vestnik-bsu-chemistry-physics

Статья в выпуске: 1, 2020 года.

Бесплатный доступ

Цель исследования - определить природные пептидазы в микробном мате горячего источника Гарга и их разнообразие. Статья посвящена комплексному исследованию пептидаз, которые представляют отдельную группу гидролитических ферментов участвующие в разложение органического вещества. Научная новизна работы заключается в анализе препаратов микробных сообществ горячих источников Байкальской рифтовой зоны методом высокопроизводительного секвенирования, которые обеспечивают гидролиз биополимеров на первых этапах деструкции органического вещества. В результате был проведен метагеномный анализ, который позволил выявить распространение пептидаз класса металлопептидаз в изученных микробных сообществах. В метагеномных последовательностях были идентифицированы потенциальные пептидазы, которые могут представлять биотехнологический интерес.

Еще

Пептидазы, микробный мат, гидролитические ферменты, металло- пептидазы, метагеномомы, секвенирование, байкальская рифтовая зона

Короткий адрес: https://sciup.org/148316720

IDR: 148316720 | DOI: 10.18101/2306-2363-2020-1-45-53

Текст научной статьи Поиск природных пептидаз в микробном мате горячего источника Гарга и их разнообразие

Гидролитические бактерии являются инициаторами процесса разложения органического вещества в микробных сообществах природных местообитаний. За последнее десятилетие появляется все больше информации о наличии полного комплекса гидролитических ферментов у представителей прокариот [1–3]. Интенсивность их деятельности очень сильно зависит от многих экологических факторов, в том числе температуры, окислительно-восстановительных условий, реакции среды. В составе органического вещества одним из основных компонентов является белок. Процесс протеолиза имеет важное биологическое значение, так как играет регулирующую роль в функционировании как клетки, так и экосистемы в целом.

Пептидазы (EC. 3.4) представляют собой отдельную подгруппу гидролитических ферментов, которые катализируют расщепление пептидных связей в белковых субстратах. В зависимости от способа действия и каталитического механиз- ма пептидазы делятся на шесть основных классов, включая сериновые пептидазы (EC. 3.4.21), цистеиновые пептидазы (EC. 3.4.22), аспарагиновые пептидазы (EC. 3.4.23), металлопептидазы (EC. 3.4.24), треониновые эндопептидазы (3.4.25) и глутаминовые (3.4.23.32) . В дополнение к их ключевой метаболической и физиологической значимости, они имеют различное коммерческое применение во всем мире.

Процесс деструкции белка пептидазами в природных экосистемах слабоизу-чен, известно лишь несколько работ, посвященных изучению гидролиза белка в морских экосистемах [2, 4] и в почве [5] .

Объекты и методы исследования

Высокотемпературный источник Гарга находится в долине р. Гарги, расположен в отрогах Икатского хребта, окаймляющего котловину с восточной стороны (54о19'203'' N и 110о59'646'' E. Участок выхода сложен водноледниковыми верхнечетвертичными отложениями, которые перекрывают палеозойские граниты, и связаны с мощным Гаргинским разломом, протягивающимся в северо-восточном направлении на 30-40 км. Температура воды на изливе достигает 74°С, рН 8,3.

Поиск пептидаз в микробном мате горячего источника Гарга проведен в ООО «Биоспарк», г. Москва.

Результаты и обсуждение

Физико-химические условия горячего источника Гарга

Термальная сульфатно-натриевая вода изливается со скоростью 5 л/с в небольшой грот, расположенный на правом берегу реки Гарга, на высоте около 100 м от уреза воды (674 м над уровнем моря). Температура воды на выходе достигает 74°С. Вода, стекая по ручью, образует травертин высотой 1,5-2 м, длиной до 50 м, шириной до 25 м и является одним из самых крупных в Байкальском регионе.

Химический состав воды (табл. 1). Доминирующий катион — Na+, его содержание составило 312,04 мг/дм3. Концентрации ионов Mg2+, К+ и Са2+ составили 0,08, 11,3 и 23 мг/дм3, соответственно. Содержание карбонатов составило 6 мг/дм3, гидрокарбонатов — 109 мг/дм3. Концентрация сульфатов 390 мг/дм3. Содержание хлоридов и фторидов 51 мг/дм3 и 11 мг/дм3, соответственно. Для источника Гарга характерно высокое содержание радона, до 43 эман.

Таблица 1

Na⁺	K⁺	Ca²⁺	Mg²⁺	СО 3 ^2-	НСО 3 ^-	NO 3 ^-	NO^2-	SO 4 ^2-	Н 2 SiO 3	F	PO 4 ^3-	Cl^-
312,04	11,3	23	0,08	6	109,83	7,4	0,004	390	89	10,5	2,02	51,41

Химический состав воды горячего источника Гарга, мг/дм3 (в месте отбора микробного мата)

Микроэлементный состав воды показал, что в Гаргинских водах отмечены повышенные концентрации B, Rb, Li, Ba, Sr. Повышенные содержания данных элементов в целом характерны для термальных источников, разгружающихся в 46

пределах Икатского хребта. Высокие содержания Sr и некоторых других элементов в горячем источнике связаны с их высоким содержанием в гранитоидных породах Баргузинского комплекса.

Для поиска природных пептидаз был отобран микробный мат при температуре воды 54,2°С, рН воды составила 8,3 и минерализация 0,74 г/ дм3.

Метагеномный анализ

На первой стадии выполнения работ по метагеномному анализа были получены данные по поглощению света препаратом ДНК (рис. 1, табл. 2)

Таблица 2

Качество и количество ДНК в полученных препаратах (Гарга)

^A260 A230 A260 A280 ^Raw A260 A260 ^A260

Concent- A340 Turbidi

(10 (10 (10 /A23 /A28

mm) mm) mm) 0 0

(ng/ul) mm) mm)

Общее кол-во ДНК, мкг

215,94 3,24 4,32 2,22 0,9 1,33 1,94 2,23

21,6

Рис. 1. Кривая поглощения света препаратами ДНК

Секвенирование полученных библиотек на платформе Illumina HiSeq

Качественные и количественные характеристики полученных данных секвенирования (табл. 3) Усредненные показатели качества прочтения (Q) каждого нуклеотида (рис. 2).

Рис. 2. Усредненные показатели качества прочтения (Q — ось ординат) каждого нуклеотида (позиции обозначены по оси абсцисс)

Качественные и количественные характеристики полученных данных секвенирования

Таблица 3

Образец	Количество прочтений	Длина прочтений	Усредненный GC cостав прочтений
Гарга	94242298	101	59%

На основании полученной аннотации в изученном образце был получен перечень всех выявленных типов протеаз (табл. 4)

Ферменты, идентифицированные в метагеномных последовательностях, которые могут представлять интерес для биотехнологии

Таблица 4

Перечень всех выявленных типов протеаз для каждого образца (Гарга)

Тип протеазы	Код фермента по EC	Номенклатура
ATP-dependent Clp protease	3.4.21.92	Сериновая пептидаза Гидролиз белка на мелкие пептиды в присутствии АТФ и Mg²⁺
ATP-dependent zinc metalloprotease	3.4.24.-	Металлоэндопептидаза
CAAX amino terminal protease self- immunity
Carboxy-terminal processing protease	3.4.21.102	Сериновая пептидаза
Caudovirus prohead protease
Cysteine protease StiP	3.4.22.-	Цистеиновая эндопептидаза
DNA-binding ATP-dependent protease La
Extracellular basic protease	3.4.21.-	Сериновая эндопептидаза
Extracellular metalloprotease	3.4.21.-	Сериновая эндопептидаза
Extracellular serine protease	3.4.21.-	Сериновая эндопептидаза
Germination protease precursor	3.4.24.78	Металлоэндопептидазы Принадлежит семейству пептидаз M63
Hydrogenase maturation protease
Intracellular serine protease	3.4.21.-	Сериновая эндопептидаза
intramembrane serine protease GlpG
Lon protease	3.4.21.53	Сериновая эндопептидаза La Принадлежит семейству S 16
Metalloprotease LoiP	3.4.24.-	Металлоэндопептидаза
Metalloprotease MmpA	3.4.24.-	Металлоэндопептидаза
Minor extracellular protease Epr	3.4.21.-	Сериновая эндопептидаза
Minor extracellular protease vpr	3.4.21.-	Сериновая эндопептидаза
Multifunctional acyl-CoA thioesterase I and protease I and lysophospholipase L1
Neutral metalloprotease	3.4.24.-	Металлоэндопептидааз
Neutral protease B	3.4.24.-	Металлоэндопептидаза
Papain family cysteine protease
Periplasmic pH-dependent serine endoprotease DegQ	3.4.21.107	Сериновая эндопептидаза Принадлежит семейству S1B
Periplasmic serine endoprotease DegP	3.4.21.107	Сериновая эндопептидаза Принадлежит семейству S1B
Prohead core protein protease

Protease 1	3.4.21.50	Сериновая эндопептидаза Lysyl endopeptidase
Protease 2	3.4.21.83	Сериновая эндопептидаза Oligopeptidase B
Protease 3	3.4.24.55	Металлоэндопептидаза Pitrilysin
Protease 4	3.4.21.-	Сериновая эндопептидаза
Protease HtpX	3.4.24.-	Металлоэндопептидаза
Protease LasA	3.4.24.-	Металлоэндопептидаза
Protease PrsW
Protease TldD
Putative CtpA-like serine protease	3.4.21.-	Сериновая эндопептидаза
Putative cysteine protease YraA
Putative metalloprotease YpwA	3.4.24.-	Металлоэндопептидаза
Putative peptide zinc metalloprotease protein YydH
Putative protease YdeA
Putative protease YhbU
Putative serine protease HhoA
Putative serine protease HtrA
Putative subtilase-type serine protease precursor	3.4.21.-	Сериновая эндопептидаза
Putative zinc metalloprotease Rip3
Putative zinc protease AlbF	3.4.24.-	Металлоэндопептидаза
Retroviral aspartyl protease
Rhomboid protease AarA	3.4.21.105	Сериновая эндопептидаза Rhomboid protease
Rhomboid protease GlpG	3.4.21.105	Сериновая эндопептидаза Rhomboid protease
Rhomboid protease GluP	3.4.21.105	Сериновая эндопептидаза Rhomboid protease
Serine endoprotease DegS	3.4.21.107	Сериновая эндопептидаза Принадлежит семейству S1B
Serine protease AprX	3.4.21.-	Сериновая эндопептидаза
Serine protease Do-like HtrA	3.4.21.107	Сериновая эндопептидаза Принадлежит семейству S1B
Serine protease Do-like HtrB	3.4.21.107	Сериновая эндопептидаза Принадлежит семейству S1B
Serine protease HtrA-like protein	3.4.21.-	Сериновая эндопептидаза
Serine protease SplB	3.4.21.-	Сериновая эндопептидаза
Sporulation-specific protease YabG
Tail-specific protease	3.4.21.102	Сериновая эндопептидаза Re
Thermophilic metalloprotease (M29)
Thermostable alkaline protease	3.4.21.-	Сериновая эндопептидаза
Transglutaminase-activating metalloprotease
Zinc metalloprotease Rip1	3.4.24.-	Металлоэндопептидаза

В природных местообитаниях гидролитические бактерии занимают нишу первичных деструкторов, благодаря способности гетеротрофно расти на биополимерах различной природы. Особенностью изученных микробных сообществ термальных источников Прибайкалья является его термофилия и алкалитолернат-ность, что предполагает термо- и рН стабильность соответствующих ферментов.

Проведенный метагеномный анализ позволил выявить гены пептидаз в природном образце микробного мата горячего источника Гарга. Анализ собранных метагеномных последовательностей позволил систематизировать и дать характеристику выявленных генов. Сравнение метагеномных последовательностей репрезентативных данных показало доминирование ферментов класса сериновых пептидаз. Ферменты, относящиеся к этому классу, ингибируются диизопропил-фторфосфатом и фенилметилсульфонилфторидом, а также субстратоподобными галоидметилкетонами, такими как тозиллизинхлорметилкетон (TLCK) или тозилфенилаланинхлорметилкетон (TPCK). Из литературных данных известно, что сериновые пептидазы обычно активны при нейтральных и щелочных значениях рН и имеют оптимум рН между 7 и 11 [6]. На основании аминокислотной последовательности, пептидазы делят на семейства и в настоящее время выделено более 20 семейств. В нашем исследовании было выявлено 7 представителей сериновых пептидаз (табл. 4). Принято считать, что эволюционное родство ферментов выражается в гомологии первичной и сходстве пространственной структур. Поэтому этим признакам придается большое значение. Известны случаи, когда сходство структуры каталитического центра не сопровождается гомологией пространственной и первичной структур. Вероятно, такое сходство является следствием конвергентной эволюции.

Метагеномный анализ позволил выявить распространение пептидаз класса металлопептидаз в изученных микробных сообществах. В классе металлопепти-дазы выделяют 25 семейств, обнаруженных в разных систематических группах. Металлопептидазы, как правило, синтезируются в неактивной форме и активируются в присутствии ионов металлов (магния, марганца, кобальта, цинка). Активность металлопротеиназ подавляется веществами, связывающими металлы — ЭДТА, 1,10-фенантролином, версеном, цитратом, фосфамидом и др. Оптимальные значения рН для металлопротеиназ также лежат в диапазоне 7–9. Также известны металлопротеиназы, обладающие свойствами термостабильности [3].

Обнаружены единичные последовательности генов класса цистеиновых пептидаз в микробном сообществе Гарга. Возможно, это связано с тем, что цистеиновые пептидазы эффективны при нейтральных значениях рН; реже зона оптимума лежит в слабокислой или слабощелочной среде (pH 4–9) в зависимости от природы гидролизуемого белка [3]. У изученного нами микробного сообщества диапазон развития находится в высокотемпературной зоне и щелочной области рН. В состав активного центра цистеиновых пептидаз входит цистеин и гистидин [7]. Цистеиновые пептидазы активируются синильной кислотой и сульфгидрильными соединениями — восстановленным глутатионом, дитиотреи-толом, 2-меркаптоэтанолом и цистеином.

Таким образом, на основе анализа препаратов тотальной ДНК микробных сообществ горячих источников Байкальской рифтовой зоны методом высокопроизводительного секвенирования были получены данные о высоком разнообразии природных пептидаз в исследуемом микробном сообществе, которые обеспечи- 51

вают гидролиз биополимеров на первых этапах деструкции органического вещества.

В метагеномных последовательностях были идентифицированы потенциальные пептидазы, которые могут представлять биотехнологический интерес. Их использование в разных областях промышленности, медицины, биоремедиации обусловлено несколькими факторами: снижением риска контаминации, увеличением скорости процессов и повышением общей стабильности ферментов.

Работа поддержана бюджетной темой ИОЭБ СО РАН АААА-А17-117011810034-9

Список литературы Поиск природных пептидаз в микробном мате горячего источника Гарга и их разнообразие

Замана Л. В., Хахинов В. В., Данилова Э. В., Бархутова Д. Д. Гидрохимия минеральных вод // Геохимическая деятельность микроорганизмов гидротерм Байкальской рифтовой зоны. Новосибирск: Академическое изд-во "Гео". 2011. С. 62-101.
Obayashi Y., Ueoka N., Suzuki S. Degradation and utilization of protein derived from Pseudomonas aeruginosa by marine microbial community // J. Oceanogr. 2010. V. 6. P. 513- 521.
Oliveira A. S., Filho J. X., Sales M. P. Cysteine proteinases cystatins // Braz Arch Biol Technol. 2003. V. 46, № 1. P. 91-104.
Orsi W. D., Smith J. M., Liu S. and oth. Diverse, uncultivated bacteria and archaea underlying the cycling of dissolved protein in the ocean // ISME J. 2016. V. 10. P. 2158-2173.
Vranova V., Rejsek K., Formanek P. Proteolytic activity in soil: A review // Applied Soil Ecology. 2013. V. 70. P. 23-32.
Rao M. B., Tanksale A. M., Ghatge M. S., Deshpande V. V. Molecular and biotechnological aspects of microbial proteases // Microbiol. Mol. Biol. Rev. 1998. V. 62, № 3. P. 597-635.
Rawlings N. D. and Barrett A. J. Evolutionary families of peptidases // Biochem. J. 1993. V. 290. P. 205-218.

Статья научная