Показатели микробиологического исследования при переломах нижней челюсти

Бюллетень науки и практики / Bulletin of Science and Practice

Переломы нижней челюсти - важная проблема в травматологии лицевого черепа. Актуальность этой проблемы обусловлена тенденций к росту бытового и транспортного травматизма, преобладанием сложных клинических форм, требующих выполнение остеосинтеза, молодым возрастом пострадавщих. Частота переломов нижней челюсти в настоящее время варьирует от 70% до 85% от общего количества повреждений костей лицевого черепа. [9]. Согласно сведениям Всемирной организации здравоохранения, травмы ежегодно становятся причинами смертности около 5,1 млн человек [1, 7, 9], а также являются причиной потери трудоспособности и инвалидизации более чем 7 млн человек [1, 12].

Зачастую к возникновению осложнений приводит нерациональный выбор способа лечения. В настоящее время известно большое количество различных методов фиксации фрагментов верхней и нижней челюстей, среди которых наиболее часто применяются двухчелюстное шинирование шинами С. С. Тигерштедта, назубные ортопедические конструкции, спицы Киршнера, методы прямого и непрямого остеосинтеза, назубные и накостные компрессионно-дистракционные аппараты (КДА). [2, 6].

Лечение переломов нижней челюсти в пределах зубного ряда более чем у 90% больных проводится методом двухчелюстного шинирования с межчелюстным эластичным вытяжением. Длительная иммобилизация нижней челюсти способствует гипофункции мышц, участвующих в жевании и у 74% пациентов, вызывает уменьшение объема мышц на 10% и более. Снижение функциональной нагрузки уменьшает регионарное кровообращение, замедляет ремоделирование кости, направляет процесс созревания костной мозоли в сторону формирования хрящевой ткани. Одним из путей повышения активности остеорепаративных процессов является ранняя активизация функции мышц лица путем возобновления их произвольного сокращения, либо посредством электростимуляции в изометрическом режиме.

На кафедре хирургической стоматологии Кыргызской государственной медицинской академии последипломного образования разработанный и клинически апробированный назубный компрессионно-дистракционный аппарат (КДА) с двумя винтовыми тягами (декларационный патент) для лечения больных с переломами нижней челюсти в пределах зубного ряда. Использование данного аппарата исключает межчелюстное шинирование, дает возможность правильно и плотно сопоставить костные фрагменты, способствует ранней активизации функции мышц и улучшению кровотока микроциркуляторного русла. Достижение хорошей иммобилизации костных фрагментов с сохранением функции челюсти и гемодинамики явилось основанием для проведения настоящего исследования. Учитывая выше изложенное, мы поставили цель изучить состояние микробной флоры из раны при переломе нижней челюсти и их чувствительность к антибиотикам по данным кафедры хирургической стоматологии КГМА. Цель работы: анализ микробной флоры из раны и пародонтального кармана при переломе нижней челюсти и их чувствительность к антибиотикам (по материалам кафедры хирургической стоматологии КГМА).

Материал и методы исследования

Микробиологические лабораторные исследования проводились у 34 больных с переломами нижней челюсти, в лабораториях НГ МЗКР и в частных лабораториях г. Бишкек. Исследование проводилось при обращении больных и на 4 сутки в ходе лечения. Бактериологическое исследование включало: идентификацию структуры ассоциаций микрофлоры и определение чувствительности микроорганизмов к антибактериальным препаратам. Материалом для исследования служило фазовоконтрастная микроскопия (ФКМ) содержимого пародонтальных карманов (ПК) и метод секторных посевов по Gold (1965) с расчетом количества аэробных и анаэробных микроорганизмов в полученном материале. Анализ чувствительности микроорганизмов, выделенных у больных с переломами нижней челюсти к антибиотикам (ампициллин, амоксиклав, гентамицин, цефотоксим, левофлоксацин, метронидазол, флуконазол), было проведено на и определялась чувствительность к антибиотикам на микроанализаторе АТВ “Expression“ фирмы “Bio Merieux” (Франция).

В основной группе состояло 15 пациентов с переломом нижней челюсти, с применением нового способа лечения и орошение раствором кочкорской соли. В сравниваемой группе состояло 19 пациентов с переломом нижней челюсти, с применением традиционного способа лечения (орошение раствором фурациллина).

Результаты исследования и обсуждение

Для изучения состава микробной флоры и ее чувствительности к антибиотикам у 34 больных с переломом нижней челюсти определены количественные и качественные показатели микрофлоры в пародонтальных пространствах основной и сравниваемой группах. В исследуемых группах в процессе лечения установлено общее количество посевов с высевающимися микробными сообществами на 1 сутки (Таблица 1).

ОБЩЕЕ КОЛИЧЕСТВО ВЫСЕЯННЫХ МИКРООРГАНИЗМОВ И ШТАММОВ

ДО ЛЕЧЕНИЯ НА 1 СУТКИ

Таблица 1

Выделенные виды микроорганизмов	Число штаммов
Actinomyces spp.	4
Candida albicans	2
Escherichia aerogenes	2
Escherichia agglomerans	2
Escherichia coli	7
Porphyromonas gingivalis	18
Morganella morganii	2
Proteus mirabilis	1
Proteus rettgeri	1
Serratia marcescens	4
Staphylococcus aureus	15
Staphylococcus auricularis	2
Staphylococcus cohnii	9
Actinobacillus actinomycetemcomitans	28
Staphylococcus haemoliticus	8
Staphylococcus hominis	6
Staphylococcus hyicus	19
Staphylococcus intermedius	8
Staphylococcus simulans	3
Streptococcus faecalis	5
Streptococcus mitis	8
Streptococcus mutans	5
Streptococcus constellatus	15
Streptococcus pyogenes	2
Streptococcus salivarius	14
Streptococcus sanguis	5
Всего выделено штаммов	195

В исследуемых группах в процессе лечения установлено уменьшение количества посевов с высевающимися микробными сообществами, повышение количества стерильных посевов в сопоставлении на 4 сутки (Таблица 2).

В итоге нами было выявлено всего 330 штаммов культур при изучении пациентов с переломами нижней челюсти. Перед началом лечения, бактериальный пейзаж в пародонтальных карманах и в ране представлен в виде монокультуры у 15 (41%) больного, у 19 (59%) больных выявлены ассоциации 2-х и более микроорганизмов различного вида (Таблица 3).

Бюллетень науки и практики / Bulletin of Science and Practice Т. 9. №4. 2023 ОБЩЕЕ КОЛИЧЕСТВО ВЫСЕЯННЫХ МИКРООРГАНИЗМОВ И ШТАММОВ ПОСЛЕ ЛЕЧЕНИЯ НА 4 СУТКИ Таблица 2 Выделенные виды микроорганизмов Число штаммов Actinomyces spp. 3 Candida albicans 1 Escherichia aerogenes 1 Escherichia agglomerans 1 Escherichia coli 3 Porphyromonas gingivalis 14 Morganella morganii 0 Proteus mirabilis 0 Proteus rettgeri 0 Serratia marcescens 2 Staphylococcus aureus 8 Staphylococcus auricularis 1 Staphylococcus cohnii 5 Actinobacillus actinomycetemcomitans 24 Staphylococcus haemoliticus 6 Staphylococcus hominis 3 Staphylococcus hyicus 14 Staphylococcus intermedius 5 Staphylococcus simulans 4 Streptococcus faecalis 3 Streptococcus mitis 5 Streptococcus mutans 3 Streptococcus constellatus 12 Streptococcus pyogenes 1 Streptococcus salivarius 13 Streptococcus sanguis 3 Всего выделено штаммов 135 КОЛИЧЕСТВО ШТАММОВ КУЛЬТУР ДО НАЧАЛА ЛЕЧЕНИЯ Таблица 3 Группы и количество Культуры обследуемых                 монокультура ассоциации микроорганизмов n % n % основная, n=15                        5 33,3 10 66,6 сравниваемая, n=19                   8 42,1 11 57.8

После проведения нами анализа и изучения результатов микробной картины, было выявлено, что при переломах нижней челюсти преобладают стафилококки и стрептококки, в ассоциации микробов других видов ( Actinobacillus actinomycetemcomitans, Porphyromonas gingivalis, Escherichia coli, Actinomyces spp, Escherichia agglomerans, Candida albicans ).

Итоги анализа степени чувствительности ассоциаций микрофлоры из раны и пародонтального кармана к 5 наиболее часто применяемым в клинике антибиотикам с доверительными интервалами М±m, % при вероятности Р=93,0; % из анализируемого числа n (n1 — при аэробной и n2 — при анаэробной микробной флоре), представлены в Таблице 4.

Таблица 4

ЧУВСТВИТЕЛЬНОСТЬ МИКРОФЛОРЫ ИЗ РАНЫ

И ПАРОДОНТАЛЬНОГО КАРМАНА К АНТИБИОТИКАМ

Антибиотики	Устойчивые		Умеренно чувствительные		Чувствительные
	n	М±m, %	n	М±m, %	n	М±m, %
Амоксиклав	6	11,1±3,8	9	25,2±2,7	19	45,1±3,2
Гентамицин	5	12,3±2,9	18	7,6±1,8	40	69,31±2,7
Левофлоксацин	4	17,5±5,9	7	24,3±3,8	24	32,9±3,8
Метронидазол	3	8,6±1,5	5	21,±5,9	22	28,3±4,1
Цефотаксим	6	14,52±2,8	19	8,2±3,1	44	72,29±2,9

Согласно данным, представленным в Таблице 4 можно отметить, что выделенные культуры микроорганизмов из пародонтального пространства наиболее чувствительными оказались к цефотоксиму — 72,29%, гентамицину — 69,31%, амоксиклаву — 45,1%. Вторичный бактериологический анализ больных был проведен на 4 сутки лечения вышеперечисленными препаратами. В то же время можно отметить, что в 4 раза снизилась суммарная концентрация в пересчете на 1 мл содержимого в воспаленной ране. Уменьшение общей концентрации было отмечено у всех больных (Таблица 5).

Таблица 5

ИЗМЕНЕНИЕ ЧИСЛА ПАТОГЕННЫХ МИКРООРГАНИЗМОВ У ОБСЛЕДУЕМЫХ

Сроки лечения, сутки	Число микроорганизмов / 1 г ткани
	Основная группа	Сравниваемая группа
1-Е	2,9±0,4 х 10 5	3,1±0,7 х 10 7
4-Е	1,7±1,9 х 10 3	2,3±0,9 х 10 5

Таким образом, на основании полученных данных были сделаны следующие выводы:

• 1.    Микробная флора по распространенности в ране и пародонтальном кармане представлена в основном в ассоциациях — 59,0%, и только в 41,0% случаев в монокультуре.

• 2.    Наиболее часто встречаемые микроорганизмы представлены в виде Streptococcus constellatus, Аctinobacillus actinomycetemcomitans, Staphylococcus hyicus

• 3.    Выделенные культуры микроорганизмов из раны и пародонтального кармана, наиболее чувствительными оказались к гентамицину, амоксиклаву, цефотоксиму.