Полилокусное генотипирование крупного рогатого скота по участкам гомологии к ретротранспозонам

Автор: Глазко В.И., Косовский Г.Ю., Ковальчук С.Н., Глазко Т.Т.

Журнал: Сельскохозяйственная биология @agrobiology

Рубрика: Геномное сканирование, контроль происхождения

Статья в выпуске: 6 т.50, 2015 года.

Бесплатный доступ

Задачи интенсификации животноводства привели к необходимости развития генетических методов селекционной оценки животных (genomic breeding values - GBV). В этих целях применяются подходы, основанные на выявлении ассоциаций изменчивости признаков продуктивности животных в связи с полиморфизмом разных геномных элементов, начиная от микросателлитных локусов до миллионов мононуклеотидных полиморфизмов при полногеномном секвенировании. Несмотря на большой объем накопленных данных до сих пор остаются актуальными разработки относительно простых, быстрых и доступных для интерпретации методов полилокусного генотипирования (геномного сканирования) для решения таких традиционных проблем, как выявление «генофондного стандарта» пород, и задач геномной селекции. Одним из таких методов полилокусного генотипирования может быть использование мобильных генетических элементов (наиболее полиморфных геномных участков) в качестве «якорных» последовательностей. В этом отношении особый интерес представляют видоспецифичные ретротранспозоны, которые встречаются в геноме крупного рогатого скота с высокой частотой, такие как L1_BT LINE и эндогенный ретровирус ENV1_BT. В этой связи целью настоящей работы был сравнительный анализ полиморфизма участков геномной ДНК, фланкированных инвертированными повторами нуклеотидных последовательностей, гомологичных фрагментам этих ретротранспозонов, у специализированных молочных пород (айрширский и черно-пестрый голштинизированный скот) и мясной калмыцкой породы. Выявленный нами ранее продукт рекомбинации между ними оказался консервативным у исследованных пород, что, по-видимому, свидетельствует о древности его формирования. Поскольку генетические взаимоотношения, выявленные на основании анализа распределения и полиморфизма длин участков ДНК, фланкированных инвертированными повторами ENV1_BT, демонстрируют существенные различия между специализированными молочными и местной мясной породами, но характеризуются низкой внутрипородной изменчивостью, это позволяет прийти к заключению об относительно низкой транспозиционной активности ENV1_BT. Значения полиморфного информационного содержания (PIC) спектров, полученных с праймером к участку энлогенного ретровируса ERV1_BT, варьировали у разных пород от 0,075 до 0,089. Распределение инвертированных повторов участков гомологии к L1_BT имело другой характер и оказалось неодинаковым у разных пород и внутри пород, значения PIC были существенно выше и варьировали от 0,062 до 0,260. Таким образом, использование мобильных генетических элементов для полилокусного генотипирования оказывается эффективным при решении задач частной генетики и селекции животных, однако зависит от транспозиционной активности этих элементов. Судя по полученным данным, для оценок генетической дифференциации пород и выявления «генофондного стандарта» удобными маркерами представляются инвертированные повторы ENV1_BT, а при изучении индивидуальной внутрипородной изменчивости с этой целью следует использовать более транспозиционно активные элементы L1_BT.

Еще

Полилокусное генотипирование, ретротранспозоны, инвертированные повторы, геномное сканирование, породы крупного рогатого скота

Короткий адрес: https://sciup.org/142133640

IDR: 142133640   |   DOI: 10.15389/agrobiology.2015.6.766rus

Список литературы Полилокусное генотипирование крупного рогатого скота по участкам гомологии к ретротранспозонам

  • Daetwyler H.D., Capitan A., Pausch H. et al. Whole-genome sequencing of 234 bulls facilitates mapping of monogenic and complex traits in cattle. Nat. Genet., 2014, 46(8): 858-865 ( ) DOI: 10.1038/ng.3034
  • Hozé C., Fritz S., Phocas F., Boichard D., Ducrocq V., Croiseau P. Efficiency of multi-breed genomic selection for dairy cattle breeds with different sizes of reference population. J. Dairy Sci., 2014, 97(6): 3918-3929 ( ) DOI: 10.3168/jds.2013-7761
  • Stothard P., Liao X., Arantes A.S., De Pauw M., Coros C., Plastow G.S., Sargolzaei M., Crowley J.J., Basarab J.A., Schenkel F., Moore S., Miller S.P. A large and diverse collection of bovine genome sequences from the Canadian Cattle Genome Project. Gigascience, 2015, 4: 49 ( ) DOI: 10.1186/s13742-015-0090-5
  • Xu L., Bickhart D.M., Cole J.B., Schroeder S.G., Song J., VanTassell C.P., Sonstegard T.S., Liu G.E. Genomic signatures reveal new evidences for selection of important traits in domestic cattle. Mol. Biol. Evol., 2015, 32(3): 711-725 ( ) DOI: 10.1093/molbev/msu333
  • Patry C., Jorjani H., Ducrocq V. Effects of a national genomic preselection on the international genetic evaluations. J. Dairy Sci., 2013, 96(5): 3272-3284 ( ) DOI: 10.3168/jds.2011-4987
  • Zhao F., McParland S., Kearney F., Du L., Berry D.P. Detection of selection signatures in dairy and beef cattle using high-density genomic information. Genet. Select. Evol., 2015, 47: 49 ( ) DOI: 10.1186/s12711-015-0127-3
  • Sempéré G., Moazami-Goudarzi K., Eggen A., Laloë D., Gautier M., Flori L. WIDDE: a Web-Interfaced next generation database for genetic diversity exploration, with a first application in cattle. BMC Genomics, 2015, 16(1): 940 ( ) DOI: 10.1186/s12864-015-2181-1
  • Cicconardi F., Chillemi G., Tramontano A., Marchitelli C., Valentini A., Ajmone-Marsan P., Nardone A. Massive screening of copy number population-scale variation in Bos taurus genome. BMC Genomics, 2013, 14: 124 ( ) DOI: 10.1186/1471-2164-14-124
  • Xu L., Cole J.B., Bickhart D.M., Hou Y., Song J., VanRaden P.M., Sonstegard T.S., VanTassell C.P., Liu G.E. Genome wide CNV analysis reveals additional variants associated with milk production traits in Holsteins. BMC Genomics, 2014, 15: 683 ( ) DOI: 10.1186/1471-2164-15-683
  • Bickhart D.M., Liu G.E. The challenges and importance of structural variation detection in livestock. Front. Genet., 2014, 5: 37 ( ) DOI: 10.3389/fgene.2014.00037
  • Календарь Р.В., Глазко В.И. Типы молекулярно-генетических маркеров и их применение. Физиология и биохимия культурных растений, 2002, 34(4): 279-296.
  • Глазко В.И., Косовский Г.Ю., Ковальчук С.Н., Архипов А.В., Петрова И.О., Дедович Г.О., Глазко Т.Т. Инвертированный повтор микросателлита (AGC)6G фланкирует районы ДНК с участками гомологии к ретротранспозонам в геноме крупного рогатого скота. Инновационные технологии в медицине, 2014, 2(03): 63-79.
  • Elsik C.G., Tellam R.L., Worley K.C. et al. The genome sequence of taurine cattle: a window to ruminant biology and evolution. Science, 2009, 324: 522-528 ( ) DOI: 10.1126/science.1169588
  • Walsh A.M., Kortschak R.D., Gardnerb M.G., Bertozzia T., Adelsona D.L. Widespread horizontal transfer of retrotransposons. PNAS USA, 2013, 110(3): 1012-10160 ( ) DOI: 10.1073/PNAS.1205856110
  • Smyka P., Kalendar R., Ford R., Macas J., Griga M. Evolutionary conserved lineage of Angela-family retrotransposons as a genome-wide microsatellite repeat dispersal agent. Heredity, 2009, 103: 157-167 ( ) DOI: 10.1038/hdy.2009.45
  • McInerney C.E., Allcock A.L., Johnson M.P., Bailie D.A., Prodohl P.A. Comparative genomic analysis reveals species dependent complexities that explain difficulties with microsatellite marker development in mollusks. Heredity, 2011, 106: 78-87 ( ) DOI: 10.1038/hdy.2010.36
  • Adelson D.L., Raison J.M., Garber M., Edgar R.C. Interspersed repeats in the horse (Equus caballus); spatial correlations highlight conserved chromosomal domains. Anim. Genet., 2010, 41 (Suppl. 2): 91-99 ( ) DOI: 10.1111/j.1365-2052.2010.02115.x
  • Grandi F.C., An W. Non-LTR retrotransposons and microsatellites. Partners in genomic variation. Mobile Genetic Elements, 2013, 3: e25674 ( ) DOI: 10.4161/mge.25674
  • Startek M., Szafranski P., Gambin T., Campbell I.M., Hixson P., Shaw C.A., Stankiewicz P., Gambin A. Genome-wide analyses of LINE-LINE-mediated nonallelic homologous recombination. Nucl. Acids Res., 2015, 43(4): 2188-2198 ( ) DOI: 10.1093/nar/gku1394
  • Adelson D.L., Raison J.M., Edgar R.C. Characterization and distribution of ret-rotransposons and simple sequence repeats in the bovine genome. PNAS USA, 2009, 106(31): 12855-12860 ( ) DOI: 10.1073/pnas.0901282106
  • Garcia-Vallve S., Puigbo P. DendroUPGMA: A dendrogram construction utility. 2002 (http://genomes.urv.cat/UPGMA/).
  • Nei M., Li W.-H. Mathematical model for studying genetic variation in terms of restriction endonucleases. PNAS USA, 1979, 76: 5269-5273.
  • Page R. TreeView: An application to display phylogenetic trees on personal computers. CABIOS applications note, 1996, 12(4): 357-358.
  • Peakall R., Smouse P.E. GenAlEx 6.5: genetic analysis in Excel. Population genetic software for teaching and research -an update. Bioinformatics, 2012, 28: 2537-2539 ( ) DOI: 10.1093/bioinformatics/bts460
  • Xiao R., Park K., Oh Y., Kim J., Park C. Structural characterization of the g-genome of BERV γ4, the most abundant endogenous retrovirus family in cattle. Mol. Cells, 2008, 26: 404-408.
  • Garcia-Etxebarria K., Jugo B.M. Genome-wide detection and characterization of endogenous retroviruses in Bos taurus. J. Virol., 2010 Oct, 84(20): 10852-10862 ( ) DOI: 10.1128/JVI.00106-10
  • Saylor B., Elliott T.A., Linquist S., Kremer S.C., Gregory T.R., Cottenie K. A novel application of ecological analyses to assess transposable element distributions in the Genome of the domestic cow, Bos taurus. Genome, 2013, 56: 521-533 ( ) DOI: 10.1139/gen-2012-0162
  • Beja-Pereira A., Luikart G., Bradley D., Bradley D.G., Jann O.C., Bertorelle G., Chamberlain A.T., Nunes T.P., Metodiev S., Ferrand N., Erhardt G. Gene-culture coevolution between cattle milk protein genes and human lactase genes. Nature Genet., 2003, 35(4): 311-313 ( ) DOI: 10.1038/ng1263
Еще
Статья научная