Полиморфизм по признакам, ассоциированным с генетической системой ЦМС-RF, у зернового сорго из коллекции ВИР
Автор: Анисимова Ирина Николаевна, Рябова Дарья Николаевна, Малиновская Елена Василиевна, Алпатьева Наталья Владимировна, Карабицина Юлия Игоревна, Радченко Евгений Евгеньевич
Журнал: Сельскохозяйственная биология @agrobiology
Рубрика: Генетические ресурсы, интрогрессия, иммунитет (к 130-летию со дня рождения Н.И. Вавилова)
Статья в выпуске: 5 т.52, 2017 года.
Бесплатный доступ
У зернового сорго ( Sorghum bicolor L. Moench) известны семь различных типов цитоплазматической мужской стерильности (ЦМС), однако в селекции используется лишь А1 (milo). Генетический контроль восстановления фертильности ЦМС А1 обусловлен действием двух или трех генов Rf ( Restoration of Fertility ), а также ряда модификаторов. Молекулярные механизмы ЦМС А1 и восстановления фертильности изучены очень мало. На молекулярном уровне до настоящего времени был идентифицирован только ген-кандидат Rf1 (R.R. Klein et al., 2005). В представленной работе мы впервые показали нуклеотидный полиморфизм в кодирующих последовательностях рецессивного и доминантного аллелей гена Rf2, а также гена-кандидата RFL-PPR, характеризующихся гомологией с геном Rf1 риса. Материалом служили образцы сорго из мировой коллекции ВИР (Всероссийский институт генетических ресурсов растений им. Н.И. Вавилова): восстановители фертильности к-928 и к-929, полувосстановитель к-1362, стерильные линии А-10598 и А-83 (ЦМС А1) и их фертильные аналоги, устойчивые к Schizaphis graminum Rond. сестринские линии F8-F12 BC1-BC2, выделенные из гибридов от скрещиваний линии Н-81 (ЦМС А1) с линиями к-929 и к-928, а также гибриды между сестринскими линиями. Для изучения характера изменчивости генов-кандидатов, ассоциированных с генетической системой ЦМС- Rf, из биоинформационной базы данных (http://www.ncbi.nlm.hih.gov) отобрали четыре референсные последовательности, сконструировали восемь пар специфичных праймеров и секвенировали фрагменты, амплифицированные на ДНК генотипов, различавшихся по способности к супрессии фенотипа ЦМС. У линий ЦМС и восстановителей фертильности обнаружен значительный нуклеотидный полиморфизм (18 полиморфных сайтов) фрагмента кодирующей последовательности гена Rf2 длиной 825 п.н. (референсный фрагмент XM_002459403.1, хромосома SDI02), а также PPR -гена, локализованного в 3-й хромосоме (референсный фрагмент XM_002458104.1). Секвенированные участки структурного ядерного гена ALDH2b, кодирующего альдегиддегидрогеназу, - гомолога гена Rf2 кукурузы и митохондриального гена a-субъединицы АТФ-синтазы F0F1 у линий ЦМС и восстановителей фертильности оказались идентичными. Сравнение изменчивости показателей фертильности пыльцы с использованием окрашенных ацетокармином цитологических препаратов показало, что устойчивые к S. graminum линии, а также их гибриды различались по частоте формирования окрашенных (фертильных), аномально крупных (диаметром 54-70 мкм), гигантских (до 84 мкм) и деформированных пыльцевых зерен. Так, у фертильных линий F8-F12 BC1-BC2 на основе гибридов с к-929 и к-928 доля окрашенных пыльцевых зерен была относительно высокой, составив в первом случае 72,2-83,8 %, во втором - 57,4 и 63,4 % (у двух линий); крупные пыльцевые зерна с разной частотой встречались у пяти линий, гигантские - у двух. Наблюдавшаяся изменчивость может быть обусловлена различиями в аллельном составе генов Rf, полученных от рекуррентного родителя.
Зерновое сорго, цмс, восстановление фертильности, фертильность пыльцы, гены-кандидаты, нуклеотидный полиморфизм
Короткий адрес: https://sciup.org/142214085
IDR: 142214085 | DOI: 10.15389/agrobiology.2017.5.952rus
Список литературы Полиморфизм по признакам, ассоциированным с генетической системой ЦМС-RF, у зернового сорго из коллекции ВИР
- Ivanov M.K., Dymshits G.M. Cytoplasmic male sterility and restoration of pollen fertility in higher plants. Russian Journal of Genetics, 2007, 43(4): 354-368 ( ) DOI: 10.1134/S1022795407040023
- Chen L., Liu Y.G. Male sterility and fertility restoration in crops. Annu. Rev. Plant Biol., 2014, 65: 579-606 ( ) DOI: 10.1146/annurev-arplant-050213-040119
- Conner A.B., Karper R.E. Hybrid vigour in sorghum. Texas Agricultural Experiment Station Bulletin, 1927, 359: 21-26 (цит. по B.V.S. Reddy et al., 2006).
- Reddy B.V.S., Sharma H.C., Thakur R.P., Ramesh S., Rattunde F., Mgonja M. Sorghum hybrid parents research at ICRISAT -strategies, status, and impacts. Journal of SAT Agricultural Research, 2006, 2: 1-24.
- Stephens J.C., Holland R.F. Cytoplasmic male sterility for hybrid sorghum seed production. Agron. J., 1954, 46: 20-23 (doi: 10.2134/agronj1954.00021962004600010006x).
- Pring D.R., Tang H.V., Schertz K.F. Cytoplasmic male sterility and organelle DNAs of sorghum. In: Molecular biology of plant mitochondria/C.S. Levings III, I.K. Vasil (eds.). Kluwer, Dordrecht, The Netherlands 1995.
- Elkonin L.A., Tsvetova M.I. Heritable effect of plant water availability conditions on restoration of male fertility in the 9E CMS-inducing cytoplasm of sorghum. Front. Plant Sci., 2012, 3: 91 ( ) DOI: 10.3389/fpls.2012.00091
- Elkonin L.A., Domanina I.V., Gerashchenkov G.A., Rozhnova N.A. Inheritance of reversions to male fertility in male-sterile sorghum hybrids with 9E male-sterile cytoplasm induced by environmental conditions. Russian Journal of Genetics, 2015, 51(3): 251-261 ( ) DOI: 10.7868/S0016675815030030
- Kozhemyakin V.V., Elkonin L.A., Dahlberg J.A. Effect of drought stress on male fertility restoration in A3 CMS-inducing cytoplasm of sorghum. The Crop Journal, 2017, 5(4): 282-289 ( ) DOI: 10.1016/j.cj.2017.02.003
- Jordan D.R., Mace E.S., Henzell R.G., Klein P.E., Klein R.R. Molecular mapping and candidate gene identification of the Rf2 gene for pollen fertility restoration in sorghum Theor. Appl. Genet., 2010, 120(7): 1279-1287 ( ) DOI: 10.1007/s00122-009-1255-3
- Klein R.R., Klein P.E., Mullet J.E., Minx P., Rooney W.L., Schertz K.F. Fertility restorer locus Rf1 of sorghum (Sorghum bicolor L.) encodes a pentatricopeptide repeat protein not present in the collinear region of rice chromosome 12. Theor. Appl. Genet., 2005, 111(6): 994-1012 ( ) DOI: 10.1007/s00122-005-2011-y
- Reddy P.S., Rao D.M., Reddy V.S.B., Kumar A.A. Inheritance of male-fertility restoration in A1, A2, A3 and A4(M) cytoplasmic male-sterility systems of sorghum . Indian Journal of Genetics, 2010, 70(3): 240-246.
- Jordan D.R., Klein R.R., Sakrewski K.G., Henzell R.G., Klein P.E., Mace E.S. Mapping and characterization of Rf5 a new gene conditioning pollen fertility restoration in A1 and A2 cytoplasm in sorghum (Sorghum bicolor (L.) Moench). Theor. Appl. Genet., 2011, 123(3): 383-396 ( ) DOI: 10.1007/s00122-011-1591-y
- Pring D.R., Tang H.V., Howad W., Kempken F. A unique two-gene gametophytic male sterility system in sorghum involving a possible role of RNA editing in fertility restoration. J. Hered., 1999, 90: 386-393 ( ) DOI: 10.1093/jhered/90.3.386
- Tang H.K., Pederson J.F., Chase C.D., Pring D.R. Fertility restoration of the sorghum A3 male-sterile cytoplasm through a sporophytic mechanism derived from sudangrass. Crop Science, 2007, 47: 943-950 ( DOI: 10.2133/cropsci2006.08.0542
- Hanson M.R., Bentolila S. Interactions of mitochondrial and nuclear genes that affect male gametophyte development. Plant Cell, 2004, 16(Suppl. 1): 154-169 ( ) DOI: 10.1105/tpc.015966
- O'Toole N., Hattori M., Andres C., Iida K, Lurin C, Schmitz-Linneweber C, Sugita M, Small I. On the expansion of the pentatricopeptide repeat gene family in plants. Mol. Biol. Evol., 2008, 25(6): 1120-1128 ( ) DOI: 10.1093/molbev/msn057
- Fujii S., Bond Ch.S., Small I.D. Selection patterns on restorer-like genes reveals a conflict between nuclear and mitochondrial genomes throughout angiosperm evolution. PNAS, 2011, 108(4): 1723-1728 ( ) DOI: 10.1073/pnas.1007667108
- Dahan J., Mireau H. The Rf and Rf-like PPR in higher plants, a fast-evolving subclass of PPR genes. RNA Biol., 2013, 10(9): 1469-1476 ( ) DOI: 10.4161/rna.25568
- Gaborieau L., Brown G.G., Mireau H. The propensity of pentatricopeptide repeat genes to evolve into restorers of cytoplasmic male sterility. Front. Plant Sci., 2016, 7: 1816 ( ) DOI: 10.3389/fpls.2016.01816
- Kaur P., Verma M., Chaduvula P.K., Saxena S., Baliyan N., Junaid A., Mahato A.K., Sing N.K., Gaikwad K. Insights into PPR gene family in Cajanus cajan and other legume species. Journal of Data Mining in Genomics and Proteomics, 2016, 7: 203 ( ) DOI: 10.4172/2153-0602.1000203
- Кибальник О.П. Цитологический анализ фертильности пыльцы у гибридов F1 сорго на основе А3, А4 И 9Е типов ЦМС. Мат. Межд. науч.-практ. конф., посвященной 128-й годовщине со дня рождения академика Н.И. Вавилова. Саратов, 2015: 124-125.
- Радченко Е.Е., Малиновская Е.В. Устойчивые к обыкновенной злаковой тле линии зернового сорго. Защита и карантин растений, 2012, 10: 24-25.
- Radchenko E.E. Inheritance of greenbug resistance in several forms of grain sorghum and sudangrass. Russian Journal of Genetics, 2006, 42(1): 55-59 ( ) DOI: 10.1134/S1022795406010078
- Роскин Г.И. Микроскопическая техника. М., 1951.
- Анисимова И.Н., Алпатьева Н.В., Тимофеева Г.И. Скрининг генетических ресурсов растений с использованием ДНК-маркеров: основные принципы, выделение ДНК, постановка ПЦР, электрофорез в агарозном геле. Методические указания ВИР/Под ред. Е.Е. Радченко. СПб, 2010.
- Paterson A.H., Bowers J.E., Bruggmann R. et al. The Sorghum bicolor genome and the diversification of grasses. Nature, 2009, 457(7229): 551-556 ( ) DOI: 10.1038/nature07723
- Tamura K., Peterson D., Peterson N., Stecher G., Nei M., Kumar S. MEGA5: molecular evolutionary genetics analysis using maximum likelihood, evolutionary distance, and maximum parsimony methods. Mol. Biol. Evol., 2011, 28: 2731-2739 ( ) DOI: 10.1093/molbev/msr121
- Desloire S., Gherbi H., Laloui W., Marhadour S., Clouet V., Cattolico L., Falentin L., Giancola S., Renard M., Budar F., Small I., Caboche M., Delourme R.M., Bendahmane A. Identification of the fertility restoration locus, Rfo, in radish, as a member of the pentatricopeptide-repeat protein family. EMBO Rep., 2003; 4(6): 588-594 ( ) DOI: 10.1038/sj.embor.embor848
- Cui X., Wise R.P., Schnable P.S. The rf2 nuclear restorer gene of male-sterile T-cytoplasm maize. Science, 1996, 272(5266): 1334-1336 ( ) DOI: 10.1126/science.272.5266.1334
- Liu F., Cui X., Horner H.T., Weiner H., Schnable P.S. Mitochondrial aldehyde dehydrogenase activity is required for male sterility in maize. The Plant Cell, 2001, 13: 1063-1078 ( ) DOI: 10.1105/tpc.13.5.1063
- Jimenez-Lopez J.C., Gachomo E.W., Seufferheld M.J., Kotchoni S.O. The maize ALDH protein superfamily: linking structural features to functional specificities. BMC Struct. Biol., 2010, 10: 43 ( ) DOI: 10.1186/1472-6807-10-43
- Tsvetova M.I., Ishin A.G. Large pollen grains as indicators of increased ploidy level due to colchicines treatment. International Sorghum and Millets Newsletter, 1995, 36: 77.