Популяционный полиморфизм клубеньковых бактерий люцерны ( Sinorhizobium meliloti) по генам симбиотической эффективности и конкурентоспособности
Автор: Онищук О.П., Курчак О.Н., Чижевская Е.П., Проворов Н.А., Симаров Б.В.
Журнал: Сельскохозяйственная биология @agrobiology
Рубрика: Разнообразие и эволюция микробно-растительных систем
Статья в выпуске: 3 т.50, 2015 года.
Бесплатный доступ
Важнейшие признаки клубеньковых бактерий (ризобий), по которым проводится отбор хозяйственно ценных штаммов, - симбиотическая эффективность (способность повышать массу инокулированных растений-хозяев благодаря интенсивной фиксации молекулярного азота) и конкурентоспособность (способность инокулировать растения в присутствии других штаммов этого же вида ризобий). С помощью ПЦР-анализа штаммов ризобий люцерны ( Sinorhizobium meliloti ) различного происхождения мы впервые показали полиморфизм природных популяций по генам Smc03879, или phbA («негативный регулятор эффективного симбиоза», кодирует синтез поли-b-гидроксибутирата), и Sma0907, или cmp-107 (участвует в конкуренции за образование клубеньков). В популяции, обитающей в бедной солончаковой почве (Уральская область, Казахстан), ген phbA выявлен у 100 % штаммов, тогда как в популяции из богатой черноземной почвы Тернопольской области Украины - лишь у 82,2 % штаммов. Еще более низкая встречаемость гена phbA (30,8 %) характерна для штаммов из клубеньков люцерны, собранных в Тернопольской области. Наблюдаемый полиморфизм может отражать низкую адаптивную значимость конверсии С-соединений в поли-b-гидроксибутират для штаммов ризобий из Тернопольской области по сравнению со штаммами из Уральской области. Участие гена phbA в контроле симбиотической эффективности подтверждается тем, что для гена nifH, который кодирует структуру малой субъединицы нитрогеназы, но не влияет на интенсивность ее синтеза, различий в показателях популяционного полиморфизма между штаммами двух популяций выявлено не было. Отсутствие во всех изученных популяциях полиморфизма по гену Smb21375, или eff-798, может быть связано с тем, что кодируемый им АВС-транспортер необходим для переноса в бактериальную клетку широкого спектра питательных веществ, получаемых как от растения-хозяина, так и из почвы. Высокая встречаемость эффективных симбионтов среди штаммов, лишенных гена phbA, указывает на возможность использования молекулярных зондов, содержащих этот ген, для отбора практически значимых генотипов ризобий, способных обеспечивать растения-хозяина значительными количествами фиксированного азота.
Бобово-ризобиальный симбиоз, клубеньковые бактерии, азотфиксация, симбиотическая эффективность, конкурентоспособность, популяционный полиморфизм, пцр-анализ
Короткий адрес: https://sciup.org/142133595
IDR: 142133595 | DOI: 10.15389/agrobiology.2015.3.339rus
Текст научной статьи Популяционный полиморфизм клубеньковых бактерий люцерны ( Sinorhizobium meliloti) по генам симбиотической эффективности и конкурентоспособности
Клубеньковые бактерии (ризобии), которые формируют N2-фик-сирующие симбиозы с бобовыми растениями, относятся к наиболее широко используемым в сельском хозяйстве микроорганизмами: масштабы их ежегодного выпуска в составе биопрепаратов для инокуляции бобовых культур по площадям исчисляются сотнями миллионов гектаров (1). До недавнего времени штаммы ризобий для приготовления препаратов получали методами аналитической селекции — посредством выделения из почв и клубеньков растений. С использованием транспозонового (Tn5) мутагенеза у ризобий люцерны ( Sinorhizobium meliloti ) была получена коллекция мутантов по eff -генам, которые повышают симбиотическую эффективность (СЭ) бактерий — способность увеличивать продуктивность (биомассу, количество накапливаемого азота, урожай семян) у инокулируемых растений (2). Многие из этих генов, обозначенных как негативные регуляторы симбиоза, кодируют метаболизм поставляемых растениями С-сое-динений, включая их транспорт в клетку ( eff-798 ), запасание в форме по-
Работа поддержана грантом РФФИ ¹ 14-04-01441 и Программой ЕврАзЭС, контракт ¹ 14.М04.12.0011 (тестирование симбиотической активности), а также Российским научным фондом, грант ¹ 14-26-00094 (молекулярное генотипирование популяций).
ли-Р-гидроксибутирата (phbA) и расходование на синтез поверхностных полисахаридов ( exoZ , rkpC , eglC ). Эти гены расположены в различных частях генома S. meliloti (хромосома, мегаплазмиды), что создает предпосылки для их использования в конструировании штаммов с повышенной СЭ (3). Большой интерес для конструирования таких штаммов представляют также cmp -гены, определяющие способность ризобий конкурировать за образование клубеньков с находящимися в почве малоактивными аборигенными штаммами (4). Перспективными источниками исходного материала для этой работы служат природные популяции ризобий, изменчивые по наличию eff - и cmp -генов.
В настоящей статье впервые показан популяционный полиморфизм S. meliloti по генам, контролирующим симбиотическую эффективность и конкурентоспособность, который может быть использован для отбора хозяйственно ценных штаммов ризобий.
Методика . Штаммы клубеньковых бактерий люцерны ( Sinorhizo-bium meliloti ) выделяли по стандартной методике (5) из солончаковой почвы Уральской области (Казахстан), а также из черноземной почвы Тернопольской области (Украина) и из клубеньков произрастающей на ней люцерне разных видов ( Medicago lupulina, M. sativa ). Гены, контролирующие хозяйственно ценные симбиотические признаки, идентифицировали ранее на основе анализа Tn5-мутантов эффективных штаммов СХМ1-105 и СХМ1-188, обладающих повышенной симбиотической эффективностью ( eff-798 и phbA ) либо сниженной конкурентоспособностью ( cmp-107 ) (2, 6, 7).
Для ПЦР-амплификации фрагментов ДНК, содержащих изучаемые гены, использовали следующие праймеры:
Smb21375 ( eff-798 ) — 5´-GAGAACAGCCGGGAGGAAA-3´ и 5´-CAGAACACAGCAGCCAAAGC-3´;
phbA ( eff-152 ) — 5´-CCTTCGGCAATACTCTCGC-3´ и 5´-GTTGA-GACCCGAAGCGTTG-3´;
Sma0907 ( cmp-107 ) — 5´-CCACCCTCCAGATCCAAGGT-3´ и 5´-CCTACGAGCTTTCCGGTCTC-3´.
Протокол проведения ПЦР: предварительная денатурация — 3 мин при 95 °С; 30 циклов — денатурация 30 с при 94 °С, отжиг праймеров 30 с при 54 °С, синтез ДНК 1 мин при 72 °С; финальный синтез ДНК — 5 мин при 72 °С (Термоциклер C1000 TM , «Bio-Rad», США; ЦКП «Геномные технологии и клеточная биология» Всероссийского НИИ сельскохозяйственной микробиологии). Полученные ПЦР-продукты разделяли в 1 % агарозном геле по стандартной методике (8). В качестве ДНК-матрицы в ПЦР использовали лизаты изучаемых штаммов ризобий. Для этого свежую культуру бактерий вносили в 20 мл лизирующего буфера (0,25 мM NaOH; 0,25 % SDS), денатурировали в ПЦР-машине (95 °С, 15 мин), добавляли 180 мл бидистиллированной воды, центрифугировали 1 мин и хранили при -20 °С. Хромосомный локус IGS (участок между генами 16S- и 23S-рРНК), а также плазмидный локус, содержащий ген nifH (кодирует малую субъединицу нитрогеназы), анализировали по описанной ранее методике (9).
Симбиотическую эффективность штаммов S. meliloti изучали в стерильных микровегетационных опытах на люцерне посевной ( M . sa-tiva ) сорта Вега (5).
Для статистической обработки данных использовали t -критерий Стьюдента (10).
Результаты. Для изучения популяционной изменчивости ризобий люцерны (S. meliloti) по генам эффективности и конкурентоспособности в зависимости от экологических условий (тип почвы, возможность вступления в симбиоз) был проанализирован полиморфизм генов eff-798, phbA и cmp-107 у изолятов из контрастно различающихся почв: бедной, лишенной растительности солончаковой почвы Уральской области Казахстана и богатой черноземной почвы Тернопольской области Украины, на которой произрастают многочисленные популяции разных видов люцерны хмелевидной и посевной (M. lupulina и M. sativa).
1. Встречаемость генов эффективности и конкурентоспособности среди штаммов Sinorhizobium meliloti различного происхождения
Происхождение штаммов (их число) |
Доля штаммов, у которых выявлен ген, %* |
|
eff798 1 phbA 1 |
cmp107 |
|
Уральская область, почва (24) Тернопольская область, почва (46) Тернопольская область, клубеньки (13) * В каждой колонке одинаковыми буквами (P 0 > 0,05). |
100 100a 100 82,2±5,7b 100 30,8±12,8c обозначены величины, которые достоверно |
91,7±5,6a 84,8±5,3a 52,8±13,8b не различаются |
Анализ полученных данных показал (табл. 1), что ген eff-798 (кодирует ABC-транспортер, обеспечивающий поступление в бактериальную клетку С-соединений) присутствует у всех штаммов S. meliloti независимо от источника выделения. Фрагмент ДНК, содержащий ген phbA (кодирует β-кетотиолазу, участвующую в накоплении бактериями поли-β-гидрокси-бутирата), имеется у всех штаммов из почв Уральской области, однако выявляется только у 82,2 % штаммов из почв Тернопольской области. Еще более низкая встречаемость гена phbA (30,8 %) была характерна для штаммов из клубеньков люцерны, собранных в Тернопольской области.
Логично предположить, что полиморфизм ризобий по гену phbA , выявленный в популяции из Тернопольской области, отражает снижение способности бактерий накапливать углерод в форме поли-β-гидроксибу-тирата, связанное с переключением на симбиотрофное питание углеродом, в избытке поставляемым растениями. Вероятно, циркуляция бактерий между богатой углеродом черноземной почвой и растениями способствует ослаблению отбора в пользу штаммов, активно накапливающих запасные питательные вещества. В то же время отбор в пользу этого признака, определяющий однородность популяции из Уральской области по наличию гена phbA , может обеспечить ей максимальную выживаемость в бедной питательными веществами и лишенный растительности солончаковой почве. Отсутствие в изученных популяциях полиморфизма по гену eff-798 , возможно, связано с тем, что кодируемый им АВС-транспортер необходим для переноса в клетку широкого спектра питательных веществ, получаемых как от растения-хозяина, так и из почвы.
Анализ СЭ S. meliloti в микровегетационных опытах показал, что все штаммы, у которых не удалось обнаружить ген phbA , эффективны (инокуляция достоверно повышала сухую массу растений люцерны сорта Вега), тогда как среди штаммов, содержащих этот ген, 29±8,1 % неэффективны. Однако для эффективных штаммов степень СЭ не зависит от присутствия гена phbA , что может быть связано с варьированием генетического фона, на котором осуществляется экспрессия этого гена.
В обеих почвенных популяциях S. meliloti был выявлен одинаково высокий полиморфизм по гену cmp-107, Tn5-мутация в котором снижает конкурентоспособность бактерий (см. табл. 1). В то же время среди изоля-тов из клубеньков, собранных в Тернопольской области, ген встречается реже, чем среди почвенных изолятов. Это позволяет предположить участие гена cmp-107, кодирующего белок с неизвестными функциями, в конкуренции бактерий не только за клубеньковые, но и за почвенные экологические ниши.
При проведении контрольных опытов по анализу полиморфизма ризобий по маркерам, не связанным непосредственно с количественным проявлением активности симбиоза, оказалось (табл. 2), что, во-первых, изменчивость по локусу IGS для клубеньковых изолятов выше, чем для ризосферных, что отражает описанное ранее общее повышение популяционного полиморфизма ризобий при переходе из почвы в клубеньковую нишу (9); во-вторых, не было обнаружено различий между популяциями по локусу nifH , который кодирует малую субъединицу нитрогеназы, но не участвует в количественном определении азотфиксирующей активности клубеньков. Таким образом, различие почвенных и клубеньковых субпопуляций по наличию генов phbA и cmp107 определяется именно их участием в контроле количественных признаков симбиоза.
2. Показатели структуры почвенной и клубеньковой субпопуляций Sinorhizo-bium meliloti по локусам igs и nifH (Тернопольская обл.)
Локус |
Показатель |
Происхождение (число) штаммов |
|
почва (40) |
клубеньки (13) |
||
IGS |
Число генотипов (в расчете на число штаммов, %) |
5 (12,5 %) |
6 (46,1 %*) |
Индекс Нея |
0,384 |
0,798 |
|
Доля доминирующего генотипа, % |
77±6 |
27±13* |
|
nifH |
Число генотипов (в расчете на число штаммов, %) |
3 (7,5 %) |
4 (30,8 %) |
Индекс Нея |
0,486 |
0,489 |
|
Доля доминирующего генотипа, % |
63±8 |
69±13 |
* Различие клубеньковой и почвенной популяций достоверно (P0 < 0,05).
Ранее у разных видов клубеньковых бактерий был описан ряд генов, контролирующих симбиотическую эффективность (11-17) и конкурентоспособность (18-22), однако исследования популяционного полиморфизма этих генов не проводились.
Итак, нами впервые показан популяционный полиморфизм клубеньковых бактерий люцерны ( Sinorhizobium meliloti ) по генам, контролирующим хозяйственно ценные признаки — симбиотическую эффективность ( phbA ) и конкурентоспособность ( cmp-107 ). Высокая изменчивость популяции из богатой питательными веществами черноземной почвы Тернопольской области по гену phbA , контролирующему образование поли-β-гидроксибутирата, может быть связана с высокой доступностью углерода, получаемого посредством гетеротрофного либо симбиотрофного питания, которая снижает интенсивность отбора в пользу штаммов, активно запасающих С-соединения. Анализ полиморфизма генов, выполняющих роль негативных регуляторов симбиотической эффективности, может быть использован при отборе штаммов, перспективных для инокуляции бобовых культур.
Список литературы Популяционный полиморфизм клубеньковых бактерий люцерны ( Sinorhizobium meliloti) по генам симбиотической эффективности и конкурентоспособности
- Тихонович И.А., Круглов Ю.В., Кожемяков А.П., Чеботарь В.К., Кандыбин Н.В., Лаптев Г.Ю. Биопрепараты в сельском хозяйстве. М., 2005.
- Sharypova L.A., Onishchuk O.P., Chesnokova O.N., Fomina-Eshchenko J.G., Simarov B.V. Isolation and characterization of Rhizobium meliloti Tn5-mutants showing enhanced symbiotic effectiveness. Microbiology, 1994, 140: 463-470 ( ) DOI: 10.1099/00221287-140-3-463
- Проворов Н.А., Онищук О.П., Юргель С.Н., Курчак О.Н., Чижевская Е.П., Воробьев Н.И., Затовская Т.В., Симаров Б.В. Конструирование высокоэффективных симбиотических бактерий: эволюционные модели и генетические подходы. Генетика, 2014, 50(11): 1273-1285 ( ) DOI: 10.7868/S0016675814110113
- Онищук О.П., Курчак О.Н., Шарыпова Л.А., Проворов Н.А., Симаров Б.В. Анализ различных типов конкурентоспособности у Tn5-мутантов клубеньковых бактерий люцерны (Sinorhizobium meliloti). Генетика, 2001, 37: 1507-1512.
- Румянцева М.Л., Симаров Б.В., Онищук О.П., Андронов Е.Е., Чижевская Е.П., Белова В.С., Курчак О.Н., Мунтян А.Н., Румянцева Т.Б., Затовская Т.В. Биологическое разнообразие клубеньковых бактерий в экосистемах и агроценозах. Теоретические основы и методы. СПб, 2011.
- Сагуленко Е.А., Шарыпова Л.А., Кроль Е.А., Симаров Б.В. Клонирование генов «эффективности» Rhizobium meliloti с использованием вектора pK18mob. Генетика, 1998, 34: 903-907.
- Chizhevskaya E.P., Onishchuk O.P., Sharypova L.A., Simarov B.V. Isolation and characterization of a gene involved in control of nodulation competitiveness of Sinorhizobium meliloti strain CXM1-105. Proc. 11th Int. Congr. on molecular plant-microbe interactions/I.A. Tikhonovich., B.J.J. Lugtenberg, N.A. Provorov (eds.). St. Petersburg, 2004: 549-553.
- Маниатис Т., Фрич Э., Сэмбрук Дж. Методы генной инженерии. Молекулярное клонирование. М., 1984.
- Проворов Н.А., Андронов Е.Е., Онищук О.П., Курчак О.Н., Чижевская Е.П. Генетическая структура интродуцированных и местных популяций Rhizobium leguminosarum в системах «растения-почва». Микробиология, 2012, 81: 244-253.
- Лакин Г.Ф. Биометрия (4-е изд.). М., 1990.
- Finan T.M., McWhinnie E., Driscoll B.T., Watson R.J. Complex symbiotic phenotypes result from gluconeogenic mutations in Rhizobium meliloti. Mol. Plant Microbe Interact., 1991, 4: 386-392.
- Cevallos M.A., Encarnacion S., Leija A., Mora Y., Mora J. Genetic and physiological characterization of a Rhizobium etli mutant strain unable to synthesize poly-beta-hydroxybutyrate. J. Bacteriol., 1996, 178: 1646-1654.
- Юргель С.Н., Шарыпова Л.А., Симаров Б.В. Tn5-мутации Rhizobium meliloti, вызывающие повышение редокс-потенциала свободноживущих клеток и эффективности их симбиоза с люцерной. Генетика, 1998, 34: 737-741.
- Yurgel S.N., Kahn M.L. Dicarboxylate transport by rhizobia. FEMS Microbiol. Rev., 2004, 28: 489-501 ( ) DOI: 10.1016/j.femsre.2004.04.002
- Miller S.H., Elliot R.M., Sullivan J.T., Ronson C.W. Host-specific regulation of symbiotic nitrogen fixation in Rhizobium leguminosarum biovar trifolii. Microbiology, 2007, 153: 3184-3195 ( ) DOI: 10.1099/mic.0.2007/006924-0
- Bonaldi K., Gourion B., Fardoux J., Hannibal L., Cartieaux F., Boursot M., Vallenet D., Chaintreuil C., Prin Y., Nouwen N., Giraud E. Large-scale transposon mutagenesis of photosynthetic Bradyrhizobium sp. strain ORS278 reveals new genetic loci putatively important for nod-independent symbiosis with Aeschynomene indica. Mol. Plant Microbe Interact., 2010, 23: 760-770 ( ) DOI: 10.1094/MPMI-23-6-0760
- Онищук О.П., Воробьев Н.И., Проворов Н.А., Симаров Б.В. Симбиотическая активность ризобий люцерны (Sinorhizobium meliloti) с генетическими модификациями системы транспорта дикарбоновых кислот. Экологическая генетика, 2009, 7(2): 3-10.
- Онищук О.П., Шарыпова Л.А., Курчак О.Н., Беккер А., Симаров Б.В. Выявление генов Sinorhizobium meliloti, влияющих на синтез поверхностных полисахаридов и конкурентоспособность. Генетика, 2005, 41: 1617-1623.
- Pobigaylo N., Szymczak S., Nattkemper T.W., Becker A. Identification of genes relevant to symbiosis and competitiveness in Sinorhizobium meliloti using signature-tagged mutants. Mol. Plant-Microbe Interact., 2008, 21: 219-231 ( ) DOI: 10.1094/MPMI-21-2-0219
- Williams A., Wilkinson A., Krehenbrink M., Russo D.M., Zorreguieta A., Downie J.A. Glucomannan-mediated attachment of Rhizobium leguminosarum to pea root hairs is required for competitive nodule infection. J. Bacteriol., 2008, 190: 4706-4715 ( ) DOI: 10.1128/JB.01694-07
- van Dillewijn P., Soto M.J., Villadas P.J., Toro N. Construction and environmental release of a Sinorhizobium meliloti strain genetically modified to be more competitive for alfalfa nodulation. Appl. Environ. Microbiol., 2001, 67: 3860-3865 ( ) DOI: 10.1128/AEM.67.9.3860-3865.2001
- Ding H., Yip C.B., Geddes B.A., Oresnik I.J., Hynes M.F. Glycerol utilization by Rhizobium leguminosarum requires an ABC transporter and affects competition for nodulation. Microbiology, 2012, 158: 1369-1378 ( ) DOI: 10.1099/mic.0.057281-0