Причины контаминации производственных партий семян подсолнечника (Helianthus annuus L.) микотоксинами

Автор: Буркин А.А., Устюжанина М.И., Зотова Е.В., Кононенко Г.П.

Журнал: Сельскохозяйственная биология @agrobiology

Статья в выпуске: 5 т.53, 2018 года.

Бесплатный доступ

В последние годы в нашей стране отчетливо прослеживается тенденция к устойчивому росту масштабов производства подсолнечного масла. Для побочной продукции маслобойных и маслоэкстракционных отраслей - жмыхов и шротов, которые традиционно востребованы как ценное сырье для комбикормов, в процессе многолетнего мониторинга установлены высокие риски контаминации микотоксинами (Г.П. Кононенко с соавт., 2018). В числе возможных причин чаще всего называют нарушения технологии производства и хранения конечной продукции, однако проблема санитарного качества масличных семян, поступающих от сельхозпроизводителей, остается без внимания. Целью работы стало сравнение контаминации микотоксинами основных семян и сорной примеси в производственных партиях, предназначенных для выработки подсолнечного масла. Средние образцы масличных семян из хозяйств Белгородской, Воронежской, Курской и Липецкой областей урожая 2016 года фракционировали на семена и сорную примесь (по ГОСТ 22391-2015) для раздельного изучения характера их контаминации...

Еще

Подсолнечник, семена, сорная примесь, микотоксины, иммуноферментный анализ

Короткий адрес: https://sciup.org/142216610

IDR: 142216610 | DOI: 10.15389/agrobiology.2018.5.969rus

Список литературы Причины контаминации производственных партий семян подсолнечника (Helianthus annuus L.) микотоксинами

Chulze S.N., Torres A.M., Dalcero A.M., Etcheverry M.G., Ramirez M.L., Farnochi M.C. Alternaria mycotoxins in sunflower seeds: incidence and distribution of the toxins in oil and meal. J. Food Prod., 1995, 58: 1133-1135.
Suganthi M.P.F., Ravi R., Purushothaman M.R., Mohan B., Vasanthakumar P. Occurrence of ochratoxin A in sunflower cake and evaluation of detoxified sunflower cake in poultry. Indian Journal of Poultry Science, 2003, 38(1): 37-41.
Mmongoyo J.A., Wu F., Linz J.E., Nair M.G., Mugula J.K., Tempelman R.J., Strasburg G.M. Aflatoxin levels in sunflower seeds and cakes collected from micro-and small-scale sunflower oil processors in Tanzania. PLoS ONE, 2017, 12(4): 1-14 ( ) DOI: 10.1371/journal.pone.0175801
Kononenko G.P., Ustyuzhanina M.I., Burkin A.A. The problem of safe sunflower (Helianthus annuus L.) use for food and fodder purposes (review). Agricultural Biology, 2018, 53(3): 485-498 ( ) DOI: 10.15389/agrobiology.2018.3.485eng
Ostry V. Alternaria mycotoxins: an overview of chemical characterization, producers, toxicity, analysis and occurrence in foodstuffs. World Mycotoxin J., 2008, 1(2): 175-188 ( ) DOI: 10.3920/WMJ2008.x013
EFSA Panel on Contaminants in the Food Chain. Scientific Opinion on the risks for animal and public health related to the presence of Alternaria toxins in feed and food. EFSA Journal, 2011, 9(10): 2407 ( ) DOI: 10.2903/j.efsa.2011.2407
Arcella D., Escola M., Ruiz J.A.G. Dietary exposure assessment to Alternaria toxins in the European population. EFSA Journal, 2016, 14(12): 4654 ( ) DOI: 10.2903/j.efsa.2016.4654
ГОСТ 22391-2015. Подсолнечник. Технические условия. М., 2015.
Raper K.B., Thom C., Fennell D.I. A manual of the Penicillia. Williams & Wilkins Company, USA, Baltimore, 1949.
Simmons E.G. Alternaria. An identification manual. CBS, Utrecht, 2007.
Introduction to food-and airborne fungi. 6th edition/R.A. Samson, E.S. Hoekstra, J.C. Frisvad, O. Filtenborg (eds.). CBS, Utrecht, 2000.
ГОСТ 31653-2012 Корма. Метод иммуноферментного определения микотоксинов. М., 2012.
Burkin A.A., Kononenko G.P. Mycotoxin contamination of reindeer moss. Russian Agricultural Science, 2011, 37(2): 182-184.
McDonald J.H. Handbook of biological statistics. 3rd edition. Sparky House Publishing, USA, Baltimore, 2014. Режим доступа: http://www.biostathand-book.com. Без даты.
The R project for statistical computing. Режим доступа: http://www.r-project.org. Без даты.
Chang P.-K., Erlich K.C., Fujii I. Cyclopiazonic acid biosynthesis of Aspergillus flavus and Aspergillus oryzae. Toxins, 2009, 1: 74-99 ( ) DOI: 10.3390/toxins1020074
Gerhards N., Neubauer L., Tudzynski P., Li S.-M. Biosynthetic pathways of ergot alkaloids. Toxins, 2014, 6: 2381-2395 ( ) DOI: 10.3390/toxins6123281
Izhaki I. Emodin -a secondary metabolite with multiple ecological functions in higher plants. New Phytologist, 2002, 155(2): 205-217 ( ) DOI: 10.1046/j.1469-8137.2002.00459.x
Выприцкая А.А. Микобиота подсолнечника в Тамбовской области. Тамбов, 2015.
Зотова Е.В., Кононенко Г.П., Буркин А.А. Микотоксины в подсолнечнике (Helianthus annuus L.): компонентный состав и распределение по растению. Современная микология в России, 2017, 7: 202-204.
Rodriguez R.J., White J.F. Jr., Arnold A.E., Redman R.S. Fungal endophytes: diversity and functional roles. New Phytol., 2009, 182(2): 314-330 ( ) DOI: 10.1111/j.1469-8137.2009.02773.x
Zhang H.W., Song Y.C., Tan R.X. Biology and chemistry of endophytes. Nat. Prod. Rep., 2006, 23(5): 753-771 ( ) DOI: 10.1039/b609472b
Kononenko G.P., Burkin A.A. Distribution of mycotoxins and usnic acid in the thalli of epigeous lichens. Biology Bull., 2015, 42(3): 213-219 ( ) DOI: 10.1134/S1062359015030036
Tralamazza S.M., Piacentini K.C., Tadashi Iwase C.H., de Olivera Rocha L. Toxigenic Alternaria species: impact in cereals worldwide. Current Opinion in Food Science, 2018, 23: 57-63 ( ) DOI: 10.1016/j.cofs.2018.05.002
Scott J.A., Wong B., Summerbell R.C., Untereiner W.A. A survey of Penicillium brevicompactum and P. bialowiezense from indoor environments, with commentary on the taxonomy of the P. brevicompactum group. Botany, 2008, 86(7): 732-741 ( ) DOI: 10.1139/B08-060
Burkin A.A., Kononenko G.P. Producers of mycophenolic acid in ensiled and grain feeds. Applied Biochemistry and Microbiology, 2010, 46(5): 545-550 ( ) DOI: 10.1134/S0003683810050145
Frisvad J.C., Filtenborg O. Terverticillate Penicillia: chemotaxonomy and mycotoxin production. Mycologia, 1989, 81(6): 837-861 ( ) DOI: 10.2307/3760103
Overy D.P., Frisvad J.C. Mycotoxin production and postharvested storage rot of ginger (Zingiber officinale) by Penicillium brevicompactum. J. Food Protect., 2005, 68(3): 607-609.
Müller M.E.H., Urban K., Köppen R., Siegel D., Korn U., Koch M. Mycotoxins as antagonistic or supporting agents in the interaction between phytopathogenic Fusarium and Alternaria fungi. World Mycotoxin J., 2015, 8(3): 311-321 ( ) DOI: 10.3920/WMJ2014.1747
Orina A.S., Gavrilova O.P., Gagkaeva T.Yu., Loskutov I.G. Symbiotic relationships between aggressive Fusarium and Alternaria fungi colonizing oat grain. Agricultural Biology, 2017, 52(5): 986-994 ( ) DOI: 10.15389/agrobiology.2017.5.986eng
Рудаков О.Л. Микофильные грибы, их биология и практическое значение. М., 1981.
Гигиенические требования безопасности и пищевой ценности пищевых продуктов. Санитарно-эпидемиологические правила и нормативы. СанПиН 2.3.2.1078-01. М., 2008.
ТР ТС 021/2011 Технический регламент Таможенного союза «О безопасности пищевой продукции». Утвержден решением Комиссии Таможенного союза от 9 декабря 2011 г. № 880.
ТР ТС 015/2011 Технический регламент Таможенного союза «О безопасности зерна». Утвержден решением Комиссии Таможенного союза от 9 декабря 2011 г. № 874.

Еще

Статья научная