Применение паракринных факторов мезенхимальных стволовых клеток в послеоперационном периоде кератопластика высокого риска в эксперименте
Автор: Трифаненкова И.Г., Темнов А.А., Булатова Ю.Д., Кодунов А.М., Кириленко И.Ю.
Журнал: Вестник Национального медико-хирургического центра им. Н.И. Пирогова @vestnik-pirogov-center
Рубрика: Оригинальные статьи
Статья в выпуске: 4S1 т.18, 2023 года.
Бесплатный доступ
Цель. Представить предварительные результаты применения паракринных факторов мезенхимальных стволовых клеток в послеоперационном периоде кератопластики высокого риска у животных на фоне предсуществующего неоангиогенеза. Материал и методы. В исследование, состоящее из двух этапов, были включены 12 кроликов (12 глаз) породы серая шиншилла весом от 2,5 до 3,2 кг. На первом этапе 8 животным (8 глаз) был смоделирован термический ожог роговицы в периферической зоне с захватом лимбальной зоны. Перед получением экспериментальной модели термического ожога роговицы выделяли стволовые клетки костного мозга кроликов и получали кондиционированную среду, содержащую паракринные факторы мезенхимальных стволовых клеток (КС-МСК). Затем на всех глазах с термическим ожогом проводилась сквозная кератопластика по стандартной технологии. В качестве доноров использовали 4 кролика (8 глаз). На втором этапе были сформированы контрольная (4 кролика, 4 глаза) и опытная группы (4 кролика, 4 глаза). В опытной группе в качестве послеоперационного лечения применяли инстилляции КС-МСК с 1-х по 14-е стуки четырехкратно. В контрольной группе лечение проводилось путем инстилляции антибиотиков (Офтаквикс) и кератопротекторов (Корнерегель) трехкратно в течение 14 дней. Сроки наблюдения составили 1-е, 3-и, 7-е, 14-е сутки. Выполняли офтальмоскопию переднего отрезка глаза с последующей фоторегистрацией, исследование на приборе Pentacam AXL.
Термический ожог роговицы, васкуляризация, кератопластика, паракринные факторы мезенхимальных стволовых клеток
Короткий адрес: https://sciup.org/140303513
IDR: 140303513 | DOI: 10.25881/20728255_2023_18_4_S1_76
Список литературы Применение паракринных факторов мезенхимальных стволовых клеток в послеоперационном периоде кератопластика высокого риска в эксперименте
- Пятышина О.В., Шалаева Е.Ю., Костив В.Я. Частота и исходы ожоговой травмы органа зрения // Современные технологии в офтальмологии. — 2022. — Т. 2. — № 42. — С. 254-259. [Pyatyshina OV, Shalaeva EYu, Kostiv VYa. Frequency and outcomes of burn injury to the organ of vision. Modern technologies in ophthalmology. 2022; 2(42): 254-259 (In Russ).]
- Inoue K, Amano S, Oshika T, Tsuru T. Risk factors for corneal graft failure and rejection in penetrating keratoplasty. Acta Ophthalmol Scand. 2001; 79(3): 251-255. doi: 10.1034/j.1600-0420.2001.790308.x. PMID: 11401633.
- Ситник Г.В. Особенности фармакотерапии после фемтокератопластики у больных с кератоконусом // Современные технологии в офтальмологии. — 2014.—Т.4.—С.65 [Sitnik GV. Features of pharmacotherapy after femtokeratoplasty in patients with keratoconus. Modern technologies in ophthalmology. 2014; 4: 65 (In Russ).]
- Niederkorn JY. Corneal transplantation and immune privilege. Int Rev Immunol. 2013; 32(1): 57-67. doi: 10.3109/08830185.2012.737877. PMID: 23360158; PMCID: PMC3885418.
- Chang JH, Gabison EE, Kato T, Azar DT. Corneal neovascularization. Curr Opin Ophthalmol. 2001; 12(4): 242-249. doi: 10.1097/00055735-200108000-00002. PMID: 11507336.
- Le Blanc K, Tammik C, Rosendahl K, et al. HLA expression and immunologic properties of differentiated and undifferentiated mesenchymal stem cells. Exp Hematol. 2003; 31(10): 890-896. doi: 10.1016/s0301-472x(03) 00110-3. PMID: 14550804.
- Ryan JM, Barry FP, Murphy JM, Mahon BP. Mesenchymal stem cells avoid allogeneic rejection. J Inflamm (Lond). 2005; 26(2): 8. doi: 10.1186/147 6-9255-2-8. PMID: 16045800; PMCID: PMC1215510.
- Yao L, Bai H. Review: mesenchymal stem cells and corneal reconstruction. Mol Vis. 2013; 7(19): 2237-2243. PMID: 24227919; PMCID: PMC3820430.
- Ma Y, Xu Y, Xiao Z, et al. Reconstruction of chemically burned rat corneal surface by bone marrow-derived human mesenchymal stem cells. Stem Cells. 2006; 24(2): 315-321. doi: 10.1634/stemcells.2005-0046. Epub 2005 Aug 18. PMID: 16109757.
- Терещенко А.В., Темнов А.А., Кодунов А.М., Трифаненкова И.Г. Профилактика и лечение постожоговой неоваскуляризации роговицы у животных в эксперименте [доступ от 2022]. Доступ по ссылке https://eyepress.ru/article.aspx?55874 [Tereshchenko AV, Temnov AA, Kodunov AM, Trifanenkova IG. Prevention and treatment of post-burn corneal neovascularization in animals in experiment [accessed 2022]. Access via the link https://eyepress.ru/article.aspx?55874 (In Russ).]
- Кодунов А.М., Терещенко А.В., Трифаненкова И.Г., и др. Влияние раствора пептидов на процессы ангиогенеза роговицы крыс в эксперименте // Саратовский научно-медицинский журнал. — 2021. — №2. — С. 314-318. [Kodunov AM, Tereshchenko AV, Trifanenkova IG, et al. The influence of a peptide solution on the processes of angiogenesis of the cornea of rats in an experiment. Saratov Journal of Medical Scientific Research. 2021; 2: 314-318. (In Russ).]
- Кодунов А.М., Темнов А.А., Терещенко А.В., и др. Механизмы влияния кондиционированной среды культивированных стволовых клеток на развитие патологического ангиогенеза роговицы глаза в эксперименте // Патогенез. — 2022. — Т.19. — № 4. — С. 41-52. https://doi.org/https://doi.org/10.25557/ 2310-0435.2021.04.41-52. [Kodunov A.M., Temnov A.A., Tereshchenko A.V., et al. Mechanisms of influence of the conditioned medium of cultured stem cells on the development of pathological angiogenesis of the cornea in an experiment // Pathogenesis. 2022; 19(4): 41-52. (In Russ).]
- Niederkorn JY. High-risk corneal allografts and why they lose their immune privilege. Curr Opin Allergy Clin Immunol. 2010; 10: 493–497. doi: 10.1097/ACI.0b013e32833dfa11.
- Chang JH, Garg NK, Lunde E, et al. Corneal neovascularization: an anti-VEGF therapy review. Surv Ophthalmol. 2012; 57: 415–429. doi: 10.1016/j.survophthal.2012.01.007.
- Cursiefen C, Chen L, Borges LP, et al. VEGF-A stimulates lymphangiogenesis and hemangiogenesis in inflammatory neovascularization via macrophage recruitment. J Clin Invest. 2004; 113: 1040–1050. doi: 10.1172/JCI20465.
- Cursiefen C, Chen L, Dana MR, Streilein JW. Corneal lymphangiogenesis: evidence, mechanisms, and implications for corneal transplant immunology. Cornea. 2003; 22: 273–281. doi: 10.1097/00003226-200304000-00021.
- Oh JY, Ko JH, Kim MK, et al. Effects of mesenchymal stem/stromal cells on cultures of corneal epithelial progenitor cells with ethanol injury. Invest Ophthalmol Vis Sci. 2014; 55: 7628–7635. doi: 10.1167/iovs.14-15424.
