Проблемы и пути совершенствования лабораторной диагностики хламидийной инфекции

Автор: Султанахмедов Е.С., Утц С.Р., Федорова В.А.

Журнал: Саратовский научно-медицинский журнал @ssmj

Статья в выпуске: 3 т.11, 2015 года.

Бесплатный доступ

В обзоре освещены исторические аспекты и современные представления о лабораторной диагностике хламидийной инфекции. Рассматриваются работы по изучению различных штаммов Chlamydia trachomatis как в Российской Федерации, так и за рубежом. Проанализированы и представлены результаты исследований отечественных и зарубежных ученых, направленных на поиск совершенного лабораторного теста для идентификации С. trachomatis на основе молекулярно-биологических методов.

Лабораторная диагностика, молекулярно-биологические методы, хламидийная инфекция

Короткий адрес: https://sciup.org/14918163

IDR: 14918163

Список литературы Проблемы и пути совершенствования лабораторной диагностики хламидийной инфекции

Halberstaedter L, von Prowazek S. Zur Atiologie des Tra-choms (in German). Deutsch Med Wochenschr 1907; 33: 1285-1287
Lindner K. Zur aetiologie der gonokokkenfrien urethritis. Wiener klinische Wochenschrift 1910; 23: 283-284
Jones H, Rake G, and Steams B. Studies on lymphogran-uloma venerum. III. The action of the sulfonamides on the agent of lymphogranuloma venerum. Journal of Infectious Diseases 1945;76:55-69
Page LA. Revision of the family Chlamydiaceae Rake (Rickettsiales): unification of the psittacosis-lymphogranuloma venerum-trachoma group of organisms in the genus Chlamydia Jones, Rake, and Steams, 1945. Int J Syst Bacteriol 1966; 16: 223-252
Page LA. Proposal for the recognition of two species in the genus Chlamydia Jones, Rake, and Steams, 1945. Int J Syst Bacteriol 1968; 18:51-66
Storz J, Page LA. Taxonomy of the chlamydiae: reasons for classifying organisms of the genus Chlamydia, family Chlamydiaceae, in a separate order, Chlamydiales. Int J Syst Bacteriol 1971;21:332-334
Tang FF, Chang HL, Hiang YT, et al. Studies on the etiology of trachoma with special reference to isolation of the virus in chick embryo. Chin Med J 1957; 75: 429-447
Collier LH, Sowa J. Isolation of trachoma virus in embryo-nated eggs. Lancet 1958; 1: 993-996
Collier LH, Duke-Elder S, Jones BR. Experimental trachoma produced by cultured virus. British Journal of Ophthalmology 1958;42:705-720
Jones BR, Collier LH and Smith CH. Isolation of virus from inclusion blennorrhea. Lancet 1959; 1: 902-905
Jones BR.AI-Hussaini MK, Dunlop EMC. Genital infection in association with TRIC virusinfection of the eye. I. Isolation of virus from urethra, cervix, andeye: preliminary report. Br J Ven-erDis1964;40: 19-24
Dunlop EMC, Harper IA, Al-Hussaini MK, et al. Relation to TRIC agent to "non specific" genital infection. Br J Vener Dis 1966; 42: 77-87
Dunlop EMC, Freedman A, Garland JA, et al. Infection by Bedsoniae and the possibility of spurious isolation: 2. Genital infection, disease of the eye, Reiter's disease. Amer. J Ophthal-mol 1967; 63: 1073-81
Thygeson P, Hanna L, Dawson C, et al. Inoculation of human volunteer with egg-grown inclusion conjunctivitis virus. Am J Ophtalmol 1962 May; 53: 786-795
Gordon FB, Quan AL. Isolation of the trachoma agent in cell culture. Proc Soc Exp Biol Med 1965 Feb; 118: 354-359
Dunlop EM, Hare MJ, Darougar S, et al. Detection of Chlamydia (Bedsonia) in certain infections of man. II. Clinical study of genital tract, eye, rectum, and other sites of recovery of Chlamydia. J Infect Dis 1969 Oct; 120 (4): 463-470
Шаткин A.A., Мавров И. И. Урогенитальные хламидиозы. Киев: Здоровье, 1983; 14 с.
Ripa КТ, Mardh PA. Cultivation of СТ in cyclohexim-ide-treated mccoy cells. J Clin Microbiol 1977 Oct; 6 (4): 328-331
Дмитриев Г.А. Урогенитальная хламидийная инфекция: подходы к диагностике и терапии. Клин дерматол и венерол 2003; 2: 24-28
Попович Г.Г. Изучение антигенов, полученных при помощи ультразвуковой дезинтеграции изхламидий, в перекрестных РСК. Микробиол. журн. 1978; 40 (4): 477-479
Wang S-P. A micro-immunofluorescence method. А study of antibody response to TRIC organisms in mice. In: Trachoma and Related Disorders caused by Chlamydial Agents. Nichols R L, ed. Amsterdam: Excerpta Medica, 1971; p. 273-288
Dwyer RStC, Treharne JD, Jones BR, et al. Chlamydial infection. Results of micro-immunofluorescence tests for the detection of type-specific antibody in certain chlamydial infections. Brit J vener Dis 1972; 48: 452
Wang S-P, Grayston JT Human serology in CT infections with micro-immunofluorescence. J Infect Dis 1974; 130: 388-379
Stephens RS, Tarn MR, Kuo CC, et al. Monoclonal antibodies to CT: antibody specificities and antigen characterization. J Immunol 1982 Mar; 128 (3): 1083-1089
Kutlin AV, Drobyshevskaia El, Shatkin AA. The immu-nochemical and biological properties of monoclonal antibodies to Chlamydia trachomatis. Zh Microbiol Epidemiol Immunobiol, 1996 Jan-Feb; (1):3-6
Гомберг M.A., Машкиллейсон А.Л., Делекторский В. В. Применение антихламидийных антител для диагностики урогенитального хламидиоза. Вестник дерматологии 1986; (8): 57-61
Шаткин А.А., Бескина P.C., Панкратова B.H. и др. Индикация антигенов гальпровий (хламидий) прямым иммунопероксидазным методом. Журн. микроб, эпидемиол., иммунол. 1976; (9): 74-78
Duggan MA, Pomnoni С, Kay D, et al. Infantile chlamydial conjunctivitis: A comparison of Papanicolaou, Giems and immunoperoxidase stainin methods. Acta cytol 1986; 30 (4): p. 341-346
Lewis VJ, Thacker WL, and Mitchell SH. Enzyme-linked immunosorbent assay for chlamydial antibodies. J Clin Microbiol 1977 Nov; 6 (5): 507-510
Skaug K, Vik ISS, Qvigstad E, et al. Chlamydial serum IgG antibodies in patients with acute salpingitis measured by an enzyme-linked immunosorbent assay. Acta Phathol Microbiol Immunol Scand С 1982 Nov; 90 (6): 67-71
Evans RT, Taylor-Robinson D. Development and evaluation of an enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA), using chlamydial group antigen, to detect antibodies to Chlamydial trachomatis. J Clin Pathol 1982; 35: 1122-1128
Cevenini R, Sarov I, Rumpianesi F, et al. Serum specific IgA antibody to CT in patient with chlamydial infections detected by ELISA and an immunofluorescence test. J Clin Pathol 1984 Jun; 37 (6): 686-691
Miettinen A, Heinonen PK, Teisala K, et al. Antigen specific serum antibody response to CT in patients with acute pelvic inflammatory disease. J Clin Pathol 1990 Sep; 43 (9): 758-761
Samra Z, Softer Y. IgA antichlamydia antibodies as a diagnostic tool for monitoring of active chlamydial infection. Eur J Epidemiol 1992 Nov;8 (6):882-884
Kumamoto Y, Sato T, Hiroi M, et al. Assessment of CT-specific IgA and IgG serum antibodies in genitourinary CT infection -comparative study between HITAZYME and IPAzyme. Kansenshogaku Zasshi 1993 Apr; 67 (4): 315-30
Maruta N. Study of CT in chronic prostatitis. Hinyokika Kiyo 1992 Mar; 38 (3): 297-304. Japanese
Piura B, Sarov B, and Sarov I. Persistence of antichla-mydial antibodies after treatment of acute salpingitis with doxycy-cline. Eur J Obs Gyn Reprod Biol 1993; 48: 117-121
Workowski KA, Lampe MF, Wong KG, et al. Long-term eradication of CT genital infection after antimicrobial therapy: Evidence against persistent infection. JAMA 1993 Nov 3; 270 (17): 2071-5
Henry-Suchet J, Askienazy-Elbhar M, Thibon M, et al. Post-therapeutic evolution of serum chlamydial antibody titers in women with acute salpingitis and tubal infertility. Fertil Steril 1994 Aug; 62 (2): 296-304
Bjercke S, and Purvis K. Chlamydia serology in the investigation of infertility. Hum Reprod 1992; 7: 621-4
Wolff H, Neubert U, Volkenandt M, et al. Detection of CT in semen by antibody-enzyme immunoassay compared with polymerase chain reaction, antigen-enzyme immunoassay, and urethral cell culture. Fertil Steril 1994; 62: 1250-1254
Dieterle S, Mahony JB, Luinstra KE, et al. Chlamydial immunoglobulin IgG and IgA antibodies in serum and semen are not associated with the presence of CT DNA or rRNA in semen from male partners of infertile couples. Hum Reprod 1995; 10: 315-19
Corradi G, Konkoly Thege M, Panovics J, et al. Is semen fluid a suitable specimen for detecting chlamydial infection in men?Acta Microbiol Immunol Hung 1995; 42 (4): 389-94
Ludwig M, Hausmann G, Hausmann W, et al. CT antibodies in serum and ejaculate of male patients without acute urethritis. Ann Urol (Paris) 1996; 30 (3): 139-46
Банникова В.А. Разработка твердофазного иммуноферментного анализа для лабораторной диагностики хламидиоза: дис.... канд. мед. наук. Саратов, 2004; 174 с.
Федорова В.А., Банникова В.А., Аликберов Ш.А. и др. Сравнительная эффективность обнаружения возбудителя урогенитального хламидиоза методами иммунофлюоресценции, ПЦР и ДОТ-иммуноанализа. Клиническая лабораторная диагностика 2007; (7): 30-35
Федорова В.А., Аликберов Ш.А., Елисеев Ю.Ю. и др. Сравнительное изучение эффективности методов серодиагностики урогенитального хламидиоза. Клиническая лабораторная диагностика 2010; (4): 45-49
Сельков С. А., Костючек Д.Ф., Рищук С.В. и др. Сезонные колебания заболеваемости хламидиозом, микоплазмозом и уреаплазмозом. В кн: Экология и развитие Северо-Запада России: тезисы научных докладов 7-й международной конференции. СПб, 2002; с. 83-84
Кухтинова H.B., Кротов С.А., Кротова В.А. Рецидивирующие и хронические формы хламидофилеза у детей: современные стандарты диагностики, клинические особенности, схемы семейной реабилитации: Пособие для врачей. Кольцово, 2004; 150 с.
Cohenm CR, Sinei SS, Bukusi EA, et al. Human leukocyte antigen class IIDQ alleles associated with CT tubal infertility. Obstet and Gynec 2000; 95 (1): 72-77
Chernesky M, Luinstra K, Sellors J, et al. Can serology diagnose upper genital tract CT infections? Studies on women with pelvic pain, with or without chlamydial plasmid DNA in endo-metrial biopsy tissue. Sex Transm Dis 1998; 25: 14-9
Бакулев А.Л. Синдром эндогенной интоксикации при болезни Рейтера и оптимизация фармакотерапии: автореф. дис.... д-ра мед. наук. Саратов, 2003; 35 с.
Palva A, Jousimies-Somer Н, Saikku Р, et al. Detection of CTby nucleic acid sandwich hybridization. FEMS Microbiology Letters 1984; 23(1): 83-89
Hyypia T, Jalava A, Larsen SH, et al. Detection of CT in clinical specimens by nucleic acid spot hybridization. J Gen Microbiol 1985 Apr; 131 (4): 975-978
Tuokko H, Ruuska P, Hyypia T. Comparison of nucleic acid hybridization with enzyme immunoassay and isolation for detection of CT. Eur J Clin Microbiol Infect Dis 1989 Apr; 8 (4): 320-1
Кротов С.А, Кротова В.A., Юрьев С.Ю. Хламидиозы: эпидемиология, характеристика возбудителя, методы лабораторной диагностики, лечение генитального хламидиоза: Реферативное сообщение. Кольцово, 1997; 63 с.
Шалепо К.В., Шипицына Е.В., Савичева A.M. и др. Сравнение методов лабораторной диагностики урогенитальных инфекций, вызванных СТ. Журнал акушерства и женских болезней 2001; 50 (4): 77-82
Чураков А.А., Куличенко A.H., Казакова E.C. К вопросу о лабораторной диагностике урогенитального хламидиоза. Клиническая и лабораторная диагностика 2005; (2): 43-47
Шипицына E.B., Воробьева H.E., Савичева A.M. и др. Применение метода NASBA (Nucleic Acid Sequence-Based Amplification) в реальном времени для диагностики урогенитальной хламидийной инфекции. Журнал акушерства и женских болезней 2005; 54 (4)
Тихомиров А.Л., Сарсания С. И. Современные подходы к лечению воспалительных заболеваний женских половых органов: Методические рекомендации, М., 2005; 32 с.
Trum JW, Pannekoek Y, Spanjaard L, et al. Accurate detection of male subclinical genital tract infection via cervical culture and DNA hybridization assay of the female partner. Int J Andr 2000; 23(1): 43-45
Lovett M, Kuo K-K, Holmes K, et al. (1980). Plasmids of the genus Chlamydia. In: Current chemotherapy and infectious diseases, vol. 2, pp. 1250-1252 (Eds Nelson, J & Grassi, C) published by American Society of Microbiology, Washington DC
Comanducci M, Ricci S, Cevenini R, et al. Diversity of the CT common plasmid in biovars with different pathogenicity Plasmid 1990; 23: 149-154
Thomas NS, Lusher M, Storey CC, et al. Plasmid diversity in Chlamydia. Microbiology 1996 Jun; 143 (Pt6), 1847-1854
Comanducci M, Cevenini R, Moroni A, et al. Expression of a plasmid gene of CT encoding a novel 28 kDa antigen. J Gen Microbiol 1993; 139: 1083-1092
O'Connell CM, IngallsRR, Andrews CWJr, etal. Plas-mid-deficient Chlamydia muridarum fail to induce immune pathology and protect against oviduct disease. J Immunol 2007; 179: 4027-4034
Carlson JH, Whitmore WM, Crane DD, et al. The CT plasmid is a transcriptional regulator of chromosomal genes and a virulence factor. Infect Immun 2008; 76: 2273-2283
Peterson EM, Markoff BA, Schachter J, et al. The 7,5 kb Plasmid present in CT is not essential for the growth of this microorganism. Plasmid 1990; 23: 144-148
Stothard DR, Williams JA, Van Der Pol B, et al. Identification of a CT serovar E urogenital isolate witch lacks the cryptic plasmid. Infect Immun 1998; 66: 6010-6013
RipaT, Nilsson P. A variant О trachomatis with deletion in cryptic plasmid: implications for use of PCR diagnostic tests. Euro Surveill 2006; (11): 9-11
Ripa T, Nilsson P. A С trachomatis strain with a 377-bp deletion in the cryptic plasmid causing false-negative nucleic acid amplification tests. Sex Transm Dis 2007; 34 (5): 255-6
Pedersen LN, Hermann B, Moller JK. Typing С tra-chomatis: from egg yolk to nanotechnology. FEMS Immunol Med Microbiol 2009 Mar; 55 (2): 120-30
Marions L, Rotzen-Ostlund M, Grillner L, et al. High occurrence of a new variant of CT escaping diagnostic tests among STI clinic patients in Stockholm, Sweden. Sex Transm Dis 2008 Jan; 35(1): 61-4
Shipitsyna E, Hadad R, Ryzhkova O, et al. First reported case of the Swedish new variant of Chlamydia trachomatis (nvCT) in Eastern Europe (Russia), and evaluation of Russian nucleic acid amplification tests regarding their ability to detect nvCT. Acta Derm Venereol 2012 May; 92 (3): 330-1
Feodorova VA, Sultanakhmedov ES, Saltykov YuV, et al. The first case of the Swedish new variant Chlamydia trachomatis in the Southeastern European region Russia. In: Proceeding Book, IUSTI Europe Scientific Meeting in St Julian, Malta, September, 18-20. 2014; p. 106
Пашко Ю.П., Зигангирова H.A., Капотина Л.H. и др. Особенности распространения в организме Chlamydia trachomatis при хроническом течении урогенитального хламидиоза и детекция возбудителя в сыворотке крови. Фундаментальные исследования 2010; 7: 50-57
Федорова В.А., Султанахмедов Э.С., Салтыков Ю.В. и др. Тестирование крови пациентов с урогенитальным хламидиозом повышает эффективность лабораторной диагностики Chlamydia trachomatis. Молекулярная диагностика 2014; 1: 172-173
Федорова В.А., Коннова С.С., Полянина Т.И. Использование различных мишеней для выявления штаммов Chlamydia trachomatis. Известия Саратовского университета 2011; 11 (2): 73-76
Российское общество дерматовенерологов. Инфекции, передаваемые половым путем: Клинические рекомендации. Дерматовенерология. Под ред. А.А. Кубановой. М: ДЭКС-ПРЕСС, 2010; 413-425.

Еще

Статья научная