Профилактика и коррекция постдекомпрессионной дисфункции печени при механической желтухе у экспериментальных животных

Автор: Магомедов М.М., Хамидов М.А., Магомедов Х.М., Гаджиев К.И.

Журнал: Вестник медицинского института "РЕАВИЗ": реабилитация, врач и здоровье @vestnik-reaviz

Рубрика: Морфология. Патология

Статья в выпуске: 4 (52), 2021 года.

Бесплатный доступ

Механическая желтуха является достаточно сложной патологией, которая существенно усложняет проведение хирургических вмешательств и сопровождается рядом негативных последствий. В связи с опасностью механической желтухи весьма важно своевременно выявить степень тяжести данного состояния и предпринять соответствующие меры лечения пациента. На сегодняшний день активно разрабатываются способы прогнозирования риска послеоперационных осложнений при механической желтухе, а также разрабатываются методы лечения этой патологии. В данном исследовании изучались биохимические показатели функционального состояния печени собак с моделированной механической желтухой при разных схемах лечения. Было сформировано три экспериментальных группы. Собаки контрольной группы не получали лечения. У собак второй группы проводилась декомпрессия желчных путей без контроля темпа оттока желчи. У животных третьей группы осуществлялась декомпрессия желчных путей и контролировался темп оттока желчи. В качестве терапии собаки данной экспериментальной группы получали цитофлавин (0,28 мл/кг массы тела) и сулодексид (1 мл/кг массы тела) в условиях умеренной гипотермии. У всех животных была произведена лапаротомия с пункцией желчного пузыря и последующее введение катетера через пузырный проток в холедох. Кровь из воротной вены и лимфа из грудного лимфатического протока были взяты для анализа следующих биохимических показателей: прямого билирубина, C-реактивного белка, аланинаминотрансферазы, гамма-глутамилтрансферазы и глюкозы. Концентрация перечисленных показателей функционального состояния печени оценивалась в разные сроки после моделирования механической желтухи. Результаты исследования показали, что у собак всех групп через сутки после моделирования механической желтухи биохимические показатели существенно возрастают как в крови воротной вены, так и в лимфе грудного лимфатического протока, что связано с нарушением функционального состояния печени. У животных, у которых не контролировался темп оттока желчи, биохимические показатели сохранялись на высоком уровне, что отражало развитие печеночной недостаточности и реперфузионного синдрома. После введения цитофлавина и сулодексида при умеренной гипотермии собаки демонстрировали снижение концентрации биохимических показателей до контрольного уровня, что характеризует нормализацию функционального состояния печени. В целом, предложенная схема лечения показала высокую эффективность и может применяться для коррекции постдекомпрессионной дисфункции печени у собак с механической желтухой. Результаты исследования представляют ценность для разработки методов лечения пациентов с механической желтухой и предупреждения развития послеоперационных осложнений. Данная статья может быть информативна для специалистов в области хирургии и анестезиологии, которые занимаются вопросами коррекции послеоперационных осложнений у пациентов с механической желтухой.

Еще

Механическая желтуха, воротная вена, грудной лимфатический проток, гипотермия, цитофлавин, сулодексид

Короткий адрес: https://sciup.org/143177462

IDR: 143177462   |   DOI: 10.20340/vmi-rvz.2021.4.MORPH.2

Список литературы Профилактика и коррекция постдекомпрессионной дисфункции печени при механической желтухе у экспериментальных животных

  • Galperin E.R., Momukova I.R. Classification of the severity of obstructive jaundice. Surgery. Journal named after N.I. Pirogov. 2014;1:5-9. (In Russ).
  • Kulezneva Yu.V., Melekhina O.V., Kurmanseitova L.I. et al. Antegrade biliary excretion: analysis of complications and methods of their prevention. Annals of Surgical Hepatology. 2018;23(3):37-46. (In Russ).
  • Markevich P.S., Danilenko S.Yu., Yankin A.V. Priority areas of cytoflavin use. Bulletin of the Buryat State University. 2010;12:264-267. (In Russ).
  • Romashchenko P.N., Maistrenko N.A., Kuznetsov A.I. et al. Obstructive jaundice of tumor genesis: substantiation of the choice of a method for decompression of the bile ducts. Annals of Surgical Hepatology. 2020;25(2):124-136. (In Russ).
  • Tupikin K.A., Kovalenko Yu.A., Vishnevsky V.A. New possibilities for predicting post-resection hepatic failure. Annals of Surgical Hepatology. 2016;21(3):70-74. (In Russ).
  • Khoronko Yu.V., Korobka V.L., Groshilin V.S. et al. "Rapid" biliary decompression syndrome in the treatment of obstructive jaundice. Annals of Surgical Hepatology. 2019;24(4):123-124. (In Russ).
  • Tsyganenko A.Ya., Zhukov V.I., Myasoedov V.V., Zavgorodniy I.V. Clinical Biochemistry. Moscow: Triada-X, 2002. 504 p. (In Russ).
  • Aitbayeva A.M., Kashibadze K., Zhakiyev B.S. Differentiated approach to surgical treatment of cholelithiasis complicated by choleducholithiasis and obstructive jaundice. Journal of Global Pharma Technology. 2019;11(8):12-19. (In Russ).
  • Alva N., Palomeque J., Carbonell T. Oxidative stress and antioxidant activity in hypothermia and rewarming: can RONS modulate the beneficial effects of therapeutic hypothermia? Oxidative medicine and cellular longevity. 2013, 957054. https://doi.org/10.1155/2013/957054
  • Chunming L., Jianhui S., Hongguang Z. et al. The development of a clinical score for the prediction of nonalcoholic steatohepatitis in patients with nonalcoholic fatty liver disease using routine parameters. Turk. J. Gas-troenterol. 2015;26(5):408-416.
  • Coccheri S., Mannello F. Development and use of sulodexide in vascular diseases: implications for treatment. Drug design, development and therapy. 2013;8:49-65.
  • Constantinescu G., Ilie M., Sandru V. et al. Primary non-Hodgkin's lymphoma of the common bile duct presenting as obstructive jaundice: A case report. Archives of the Balkan Medical Union. 2018;53(4):608-611.
  • Dobias L., Petrova M., Vojtko R., Ulicna O. Effect of Sulodexide on Vascular Responses and Liver Mitochondrial Function in Diabetic Rats. Physiological research. Academia Scientiarum Bohemoslovaca. 2015;64(4):497-505.
  • Fargo M.V., Grogan S.P., Saguil A. Evaluation of Jaundice in Adults. Am. Fam. Physician. 2017;95(3):164-168.
  • Farook S., Shah V., Lenouvel D. et al. Guidelines for management of sodium hypochlorite extrusion injuries. Br. Dent. J. 2014;217:679-684.
  • Geiger T. L., Howard S.C. Acetaminophen and Diphenhydramine Premedication for Allergic and Febrile Nonhemolytic Transfusion Reactions: Good Prophylaxis or Bad Practice? Transfusion Medicine Reviews. 2007;21(1):1-12.
  • Hide D., Ortega-Ribera M., Garcia-Pagan JC. et al. Effects of warm ischemia and reperfusion on the liver microcirculatory phenotype of rats: underlying mechanisms and pharmacological therapy. Sci. Rep. 2016; 6:22107. https://doi.org/10.1038/srep22107
  • Hofer S., Brenner T., Bopp C. Cell death biomarkers are early predictors for survival patients with hepatic dysfunction. Critical Care. 2009;13(4):173-177.
  • Hung O.L., Kwon N.S., Cole A.E. et al. Evaluation of the physician's ability to recognize the presence or absence of anemia, fever, and jaundice. Acad. Emerg. Med. 2000;7(2):146-156.
  • Jun J. H., Choi J.H., Bae S.H., Oh S.H., Kim G.J. Decreased C-reactive protein induces abnormal vascular structure in a rat model of liver dysfunction induced by bile duct ligation. Clinical and molecular hepatolo-gy. 2016;22(3):372-381.
  • Luo W.-W., Zhou X.-L., Wang Q.-Q. et al. The application of compont gel in chronic obstructive jaundice rats model. Acta Cirurgica Brasileira. 2019;34(5):e201900504.
  • McGill M.R. The past and present of serum aminotransferases and the future of liver injury biomarkers. EXCLI journal. 2016;15:817-828.
  • McLendon K., Preuss C.V. (2021) Atropine. StatPearls [Internet]. Treasure Island (FL): StatPearls Publishing; Jan-. Available from: https://www.ncbi.nlm.nih.gov/books/NBK470551/
  • Mishra P., Singh U., Pandey C.M., Mishra P., Pandey G. Application of student's t-test, analysis of variance, and covariance. Ann. Card. Anaesth. 2019;22(4):407-411.
  • Olsson I. A. S., da Silva S.P., Townend D., Sandoe P. Protecting Animals and Enabling Research in the European Union: An Overview of Development and Implementation of Directive 2010/63/EU. ILAR Journal. 2016;57(3):347-357.
  • Palvidi E.T., Palvidis T.E. Pathophysiological concequences of obstructive management. Hepatobiliary & Pancreatic Diseases International. 2018;17(1):17-21.
  • Park Y., Ahn J.H., Lee T.K. et al. Therapeutic hypothermia reduces inflammation and oxidative stress in the liver after asphyxial cardiac arrest in rats. Acute and critical care. 2020;35(4):286-295.
  • Petersen M.C., Vatner D.F., Shulman G.I. Regulation of hepatic glucose metabolism in health and disease. Nature reviews. Endocrinology. 2017;13(10):572-587.
  • Pompilio G., Integlia D., Raffetto J., Palareti G. Comparative Efficacy and Safety of Sulodexide and Other Extended Anticoagulation Treatments for Prevention of Recurrent Venous Thromboembolism: A Bayesian Network Meta-analysis. TH open: companion journal to thrombosis and haemostasis. 2020;4(2):80-93.
  • Savoliuk S.I. Critical moments of the postoperative period, postdecompression liver dysfunction in surgery for non-tumor obstructive jaundice. International journal of endocrinology (Ukraine). 2020;16(1):19-24.
  • Shaaban M., Kassem M., Elkammar M., Korittum A. Clinical Evaluation of Intravenous Propofol Alone or in Combination With Diazepam, Ketamine Hcl and Thiopental Sodium to Induce General Anaesthesia in Dogs. Alexandria Journal of Veterinary Sciences. 2018;57:106-114.
  • Sriussadaporn S., Sriussadaporn S., Pak-Art R. et al. Outcomes of pancreaticoduodenectomy in patients with obstructive jaundice with and without preoperative biliary drainage: A retrospective observational study. Asian Biomedicine. 2019;12(5):237-241.
  • Suslina Z.A., Romantsov M.G., Kovalenko A.L. et al. Therapeutic efficiency of cytoflavine solution for infusion in emergency conditions. Clinical Medicine. 2010;88(4):61-67.
  • Vagholkar K. Obstructive Jaundice: Understanding the pathophysiology. International Journal of Surgery and Medicine. 2020;6(4):26-31.
  • Wang L., Yu W.-F. Obstructive jaundice and perioperative management. Acta Anaesthesiologica Taiwanica, 2014;52(1):22-29.
  • Yoon K.C., Kwon H.D., Jo HS. et al. Explorative study of serum biomarkers of liver failure after liver resection. Sci. Rep. 2020;10:9960. https://doi.org/10.1038/s41598-020-66947-1
  • Zhang C., Ma Y.-F., Yang Y.-L. Jaundice caused by protrusion of a hepatic cyst into common bile duct that was resolved by choledochoscopic needle-knife electrotomy: A case report. BMC Gastroenterology. 2018;18 (1):90.
  • Zhang L., Gan L., Liu Q. et al. Obstructive jaundice in a patient with polycystic liver disease complicated with polycystic kidney and polycystic lung: A case report. Medicine (United States). 2020;99(14):e19511. https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC7220720/
Еще
Статья научная