Разработка мультиплексной панели микросателлитов для оценки достоверности происхождения и степени дифференциации популяций северного оленя Rangifer tarandus

Автор: Харзинова В.Р., Гладырь Е.А., Федоров В.И., Романенко Т.М., Шимит Л.Д., Лайшев К.А., Калашникова Л.А., Зиновьева Н.А.

Журнал: Сельскохозяйственная биология @agrobiology

Рубрика: Геномное сканирование, контроль происхождения

Статья в выпуске: 6 т.50, 2015 года.

Бесплатный доступ

Северный олень ( Rangifer tarandus ), единственный представитель рода Rangifer, принадлежит к числу наиболее интересных объектов исследования генетического разнообразия. Создание панелей STR (short tandem repeats) маркеров - один из приемов изучения генетической структуры популяций и оценки достоверности происхождения животных. Целью настоящей работы стала разработка мультилокусной панели анализа STR маркеров и оценка ее информативности для контроля достоверности происхождения и изучения биоразнообразия российских популяций северного оленя. В качестве биологического материала для исследований использовали образцы тканей (пробы уха) северного оленя эвенской (EVN, n = 44), эвенкийской (EVK, n = 44), ненецкой пород ( n = 45) и оленей тувинской популяции (TUV, n = 35). ДНК выделяли с использованием колонок фирмы «Nexttec» (Германия) согласно рекомендациям фирмы-изготовителя. Полиморфизм девяти STR (NVHRT76, RT9, NVHRT24, RT30, RT1, RT6, RT27, NVHRT21, RT7) определяли по собственным методикам с использованием ДНК-анализатора ABI3130xl («Applied Biosystems», США). Статистическую обработку данных проводили с использованием пакета MS Excel 2007 с плагином GenAIEx v. 6.5, программного обеспечения MSA 4.05, Phylip, v. 3.5c, Treev32 и Structure, v. 2.3.4. Исследуемые популяции северного оленя характеризовались относительно высокой степенью генетического разнообразия. Среднее число аллелей на локус составило 6,11±0,56 у TUV; 6,67±0,50 - у NEN; 8,00±0,76 - у EVN и 8,89±0,65 - у EVK. Наименьшим числом эффективных аллелей на локус характеризовалась популяция TUV (3,37±0,47), максимальным - EVK (4,89±0,46), популяции EVN и NEN занимали промежуточное положение (соответственно 4,42±0,53 и 3,90±0,38). Число аллелей в отдельных локусах варьировало от 4 (в локусах NVHRT21 и NVHRT24 у TUV) до 12 (в локусе RT7 у EVK и в локусе RT1 у EVN). Вероятность совпадения генотипов (PI) по девяти локусам составила от 1,8½10 -9 у NEN до 5,9½10 -11 у EVK, что подтвердило высокую информативность предложенной панели в контроле достоверности происхождения. Расчет среднего значения коэффициента членства Q в i -м кластере для наиболее вероятного числа кластеров k = 3 и k = 4 (Q i/k) показал неоднородность генетической структуры всех исследованных популяций. Наибольшей генетической обособленностью характеризовались популяции TUV (Q 2/3 = 0,899±0,034, Q 3/4 = 0,883±0,035) и NEN (Q 3/3 = 0,885±0,031, Q 4/4 = 0,813±0,038). Изучаемые популяции пород EVN и EVK были дифференцированы в меньшей степени, и четкой кластеризации между ними не обнаружили. Расчет значения R st (AMOVA) показал, что общая молекулярная изменчивость была на 11,4 % обусловлена различиями между популяциями и на 88,6 % - индивидуальными различиями между животными (p st при парном сравнении были выявлены сходные тенденции. Популяция TUV характеризовалась наибольшей удаленностью от остальных (D Nei = 0,283-0,502, F st = 0,299-0,452), при этом она оказалась наиболее дифференцирована от NEN и более близка к EVN. Минимальные генетические различия отмечались между EVN и EVK (D Nei = 0,068, F st = 0,032). Полученные результаты подтвердили высокую функциональную емкость разработанной STR панели как для анализа достоверности происхождения, так и для изучения биоразнообразия российских популяций северного оленя.

Еще

Породы северного оленя, микросателлиты, биоразнообразие

Короткий адрес: https://sciup.org/142133639

IDR: 142133639   |   DOI: 10.15389/agrobiology.2015.6.756rus

Список литературы Разработка мультиплексной панели микросателлитов для оценки достоверности происхождения и степени дифференциации популяций северного оленя Rangifer tarandus

  • Столповский Ю.А. Популяционно-генетические основы сохранения генофондов доместицированных видов животных. Вавиловский журнал генетики и селекции, 2013, 17(4/2): 900-902.
  • Давыдов A.B. Морфологическая и генетическая дифференциация популяций северного оленя Евразии. Автореф. канд. дис. М., 1997.
  • Флеров К.К. Фауна СССР. Млекопитающие. Кабарги и олени. М., 1952.
  • Гептнер В.Г., Насимович А.А., Банников А.Г. Млекопитающие Советского Союза. М., 1961.
  • Данилкин А.А. Оленьи (Cervidae). М., 1999.
  • Banfield A.W.F. A revision of the reindeer and caribou genus, Rangifer. Bulletin № 177. National Museum of Canada, Ottawa, 1961.
  • Куприянов А.Г. Дикий северный олень на Европейском Севере России. Мат. 2-го Межд. симп. «Динамика популяций охотничьих животных Северной Европы». Петрозаводск, 1998: 25-26.
  • Данилов П.И. Охотничьи животные Карелии: экология, ресурсы, управление, охрана. М., 2005.
  • Данилов П.И., Панченко Д.В. Изменение распространения и численности копытных зверей на европейском севере России. Современные проблемы природопользования, охотоведения и звероводства, 2012, 1: 88-92.
  • Южаков А.А., Мухачев А.Д. Социальное значение северного оленеводства. Аграрная наука, 2002, 10: 7-8.
  • Эрнст Л.К., Дмитриев Н.Г., Паронян И.А. Генетические ресурсы сельскохозяйственных животных в России и сопредельных странах. СПб, 1994.
  • Помишин С.Б. Проблемы породы и ее совершенствование в оленеводстве. Якутск, 1981.
  • Storset A., Olaisen B., Wika M., Bjarghov R. Genetic markers in the Spitzbergen reindeer. Hereditas, 1978, 88: 113-115.
  • Baccus R., Ryman N., Smith M.H., Reuterwall C., Cameron D. Genetic variability and differentiation of large grazing mammals. J. Mammalogy, 1983, 64: 109-120 ( ) DOI: 10.2307/1380756
  • Roed K.H. Genetic differences at the transferrin locus in Norwegian semidomestic and wild reindeer (Rangifer tarandus L.). Hereditas, 1985, 102: 199-206.
  • Cronin M.A., Renecker L., Pierson B.J., Patton J.C. Genetic variation in domestic reindeer and wild caribou in Alaska. Anim. Genet., 1995, 26: 427-434.
  • Романенко Т.М., Калашникова Л.А., Филиппова Г.И., Лайшев К.А. Генетическая структура популяции северных оленей О. Колгуев ненецкого автономного округа. Достижения науки и техники АПК, 2014, 4: 68-71.
  • Røed K.H., Midthjell L. Microsatellites in reindeer, Rangifer tarandus, and their use in other cervids. Mol. Ecol., 1998, 7: 1773-1776 ( ) DOI: 10.1046/j.1365-294x.1998.00514.x
  • Зиновьева Н.А., Харзинова В.Р., Логвинова Т.И., Гладырь Е.А., Сизарева Е.И., Чинаров Ю.И. Микросателлитные профили как критерии определения чистопородности и оценки степени гетерогенности подборов родительских пар в свиноводстве. Сельскохозяйственная биология, 2011, 6: 47-53.
  • Weber J.L., May P.E. Abundant class of human DNA polymorphisms which can be typed using the polymerase chain reaction. Am. J. Hum. Genet., 1989, 44(3): 388-396.
  • Tautz D. Hypervariability of simple sequences as a general source for polymorphic DNA markers. Nuc. Acids Res., 1989, 17: 6463-6471.
  • DeWoody J., Avise J.C. Microsatellite variation in marine, freshwater and anadromous fishes compared with other animals. J. Fish Biology, 2000, 56: 461-473 ( ) DOI: 10.1111/j.1095-8649.2000.tb00748.x
  • Primmer C.R., Ellegren H., Saino N., Møller A.P. Directional evolution in germline microsatellite mutations. Nat. Genet., 1996, 13: 391-393.
  • Ball M.C., Finnegan L., Manseau M., Wilson P. Integrating multiple analytical approaches to spatially delineate and characterize genetic population structure: an application to boreal caribou (Rangifer tarandus caribou) in central Canada. Conserv. Genet., 2010, 11: 2131-2143 ( ) DOI: 10.1007/s10592-010-0099-3
  • McDevitt A.D., Mariani S., Hebblewhite M., DeCesare N.J., Morgantini L., Seip D., Weckworth B.V., Musiani M. Survival in the Rockies of an endangered hybrid swarm from diverged caribou (Rangifer tarandus) lineages. Mol. Ecol., 2009, 18: 665-679 ( ) DOI: 10.1111/j.1365-294X.2008.04050.x
  • Zittlau K.A., Coffin J., Farnell R.S., Kuzyk G.W., Strobeck C. Genetic relationships of three Yukon caribou herds determined by DNA typing. Rangifer, 2000, 12: 59-62 ( ) DOI: 10.7557/2.20.5.1625
  • Кол Н.В., Лазебный О.Е. Полиморфизм ISSR-PCR маркеров в тувинской популяции северного оленя (Rangifer tarandus L.). Генетика, 2006, 42(12): 1731-1734.
  • Cronin M.A. Intraspecific variation in mitochondrial DNA of North American cervids. J. Mammalogy, 1992, 73(1): 70-82 ( ) DOI: 10.2307/1381867
  • Cronin M.A., MacNeil M.D., Patton J.C. Variation in mitochondrial DNA and microsatellite DNA in caribou (Rangifer tarandus) in North America. J. Mammalogy, 2005, 86: 495-505 (doi: 10.1644/1545-1542(2005)86%5B495:VIMDAM%5D2.0.CO;2).
  • Engel S.R., Linn R.A., Taylor J.F., Davis S.K. Conservation of microsatellite loci across species of artiodactyls: implications for population studies. J. Mammalogy, 1996, 77: 504-518 ( ) DOI: 10.2307/1382825
  • Zittlau K.A. Population genetic analyses of North American caribou (Rangifer tarandus). PhD Thesis. University of Alberta, Canada, 2004.
  • Tyler S.K., McFarlane K.A., Pamela Groves P., Mooers A.Ø., Shapiro B. Modern and ancient DNA reveal recent partial replacement of caribou in the southwest Yukon. Mol. Ecol., 2010, 19: 1312-1323 ( ) DOI: 10.1111/j.1365-294X.2010.04565.x
  • Wilson G.A., Strobeck C., Wu L., Coffin J.W. Characterization of microsatellite loci in caribou Rangifer tarandus, and their use in other artiodactyls. Mol. Ecol., 1997, 65: 697-699 ( ) DOI: 10.1046/j.1365-294X.1997.00237.x
  • Hartl D.L., Clark A.G. Principles of population genetics. Massachusetts, 1997.
  • Waits L.P., Luikart G., Taberlet P. Estimating the probability of identity among genotypes in natural populations: cautions and guidelines. Mol. Ecol., 2001, 10: 249-256 ( ) DOI: 10.1046/j.1365-294X.2001.01185.x
  • Jamieson A. The effectiveness of using co-dominant polymorphic allelic series for (1) checking pedigrees and (2) distinguishing full-sib pair members. Anim. Genet., 1994, 25(1): 37-44 ( ) DOI: 10.1111/j.1365-2052.1994.tb00401.x
  • Jamieson A., Taylor S.C.S. Comparisons of three probability formulae for parentage exclusion. Anim. Genet., 1997, 28: 397-400 ( ) DOI: 10.1111/j.1365-2052.1997.00186.x
  • Pritchard J.K., Stephens M., Donnelly P. Inference of population structure using multilocus genotype data. Genetics, 2000, 155: 945-959.
  • Slatkin M.A. A measure of population subdivision based on microsatellite allele frequencies. Genetics, 1995, 139: 457-462.
  • Weir B.S., Cockerham C.C. Estimating F-statistics for the analysis of population structure. Evolution, 1984, 38: 1358-1370.
  • Nei M. F-statistics and analysis of gene diversity in subdivided populations. Ann. Hum. Genet., 1977, 41: 225-233.
  • Peakall R., Smouse P.E. GenAlEx 6.5: genetic analysis in Excel. Population genetic software for teaching and research-an update. Bioinformatics, 2012, 28: 2537-2539 ( ) DOI: 10.1093/bioinformatics/bts460
  • Felsenstein J. Phylip (Phylogeny Inference Package) version 3.5c. Seattle, 1993.
  • Côté S.D., Dallas J.F., Marshall F., Irvine R.J., Langvatn R., Albon S.D. Microsatellite DNA evidence for genetic drift and philopatry in Svalbard reindeer. Mol. Ecol., 2002, 11: 1923-1930 ( ) DOI: 10.1046/j.1365-294X.2002.01582.x
  • Courtois R., Bernatchez L., Ouellet J.-P., Breton L. Significance of caribou (Rangifer tarandus) ecotypes from a molecular genetics viewpoint. Conservation Genetics, 2003, 4: 393-404.
Еще
Статья научная