Разрушение биопленок коагулазонегативных стафилококков катионным пептидом варнерином

Автор: Коробов Владимир Павлович, Лемкина Лариса Марковна, Филатова Любовь Борисовна, Полюдова Татьяна Вячеславовна

Журнал: Известия Самарского научного центра Российской академии наук @izvestiya-ssc

Рубрика: Биотехнология

Статья в выпуске: 5-3 т.13, 2011 года.

Бесплатный доступ

Показано, что низкомолекулярный катионный пептид варнерин обладает способностью подавлять формирование биопленок S.epidermidis 33, при этом его действующие концентрации совпадают с таковыми для бактерий планктонной культуры. При более высоких концентрациях пептид способен разрушать и сформировавшиеся в течение 24 ч биопленки.

Низкомолекулярный пептид варнерин, биопленка, стафилококки

Короткий адрес: https://sciup.org/148200432

IDR: 148200432

Список литературы Разрушение биопленок коагулазонегативных стафилококков катионным пептидом варнерином

  • Коробов В.П., Лемкина Л.М., Полюдова Т.В. Продукция антибактериального фактора широкого спектра действия клетками Staphylococcus warneri//Доклады РАН. 2003. Т. 390. № 5. С. 703-705.
  • Коробов В.П., Лемкина Л.М., Полюдова Т.В., Акименко В.К. Выделение и характеристика нового низкомолекулярного антибактериального пептида семейства лантибиотиков//Микробиология. 2010. Т. 79. № 2. С. 228-238.
  • Коробов В.П., Полюдова Т.В., Филатова Л.Б. и др. Активация аутолитической активности бактерий S.epidermidis 33 низкомолекулярным катионным пептидом варнерином//Микробиология. 2010. Т. 79. № 1. С. 133-135.
  • Сидоренко С.В. Роль бактериальных биопленок в патологии человека//Инфекции в хирургии. 2004. Т. 2. № 3. С. 16-20.
  • Anwar H., Strap J.L., Costerton J.W. Eradication of biolm cells of Staphylococcus aureus with tobramycin and cephalexin.//Can. J. Microbiol. 1992. V. 38. P. 618-625.
  • Bradford M.M. A rapid and sensitive method for the quantitation of microgram quantities of protein utilizing the principle of proteindye binding//Anal. Biochem. 1976. V. 72. P. 248-254.
  • Ceri H., Olson M.E., Stremick C. et al. The Calgary biolm device: new technology for rapid determination of antibiotic susceptibilities of bacterial biolms//J. Clin. Microbiol. 1999. V. 37. P. 1771-1776.
  • Cho B.G., Kim C.H., Lee B.K., Cho. S.H. Comparison of antibiotic resistance of blood culture strains and saprophytic isolates in the presence of biofilms, formed by intercellular adhesion (ica) gene cluster in Staphylococcus epidermidis//J. Microbiol. Biotechnol. 2005. V. 15. P. 728-733.
  • Davey M.E., O'toole G.A. Microbial biofilms: from ecology to molecular genetics//Microbiol. Mol. Biol. Rev. 2000. V. 64 (4). P. 847-867.
  • Donlan R.M., Costerton J.W. Biofilms: survival mechanisms of clinically relevant microorganisms//Clin. Microbiol. Rev. 2002. V. 15. P. 167-193.
  • Dunne W.M. Evaluating adherent bacteria and biolm using biochemical and immunochemical methods//Handbook of bacterial adhesion: principles, methods, and applications. N.Y., 2000. P. 273-284.
  • Dunne W.M., Mason E.O., Kaplan S.L. Diffusion of rifampin and vancomycin through a Staphylococcus epidermidis biofilm//Antimicrob. Agents. Chemother. 1993. V. 37. P. 2522-2526.
  • Gilbert P., Brown M.R.W. Mechanisms of the protection of bacterial biolms from antimicrobial agents//Microbial biolms. N.Y., 1993. P. 118-130.
  • Kiem S., Oh W.S., Peck K.R et al. Phase variation of biofilm formation in Staphylococcus aureus by IS256 insertion and its impact on the capacity adhering to polyurethane surface.//J. Kor. Med. Sci. 2004. V. 19. P. 779-782.
  • Konga K.-F., Vuonga C., Ottoa M. Staphylococcus quorum sensing in biofilm formation and infection//J. Med. Microbiol. 2006. V. 296. P. 133-139.
  • Lewis K. Riddle of Biofilm//Resistance Antimicrobial agents and Chemotherapy. 2001. V. 45/N. 4. P. 999-1007
  • Mani N., Tobin P., Jayaswal R.K. Isolation and characterization of autolysis-defective mutants of Staphylococcus aureus created by Tn917-lacZ mutagenesis//J. Bacteriol. 1993. V. 75. № 5. Р. 1493-1499.
  • Stewart P.S., McFeters G.A., Huang C.T. Biofilm control by antimicrobial agents.//Biofilms II: Process Analysis and Applications. N. Y, 2000. P. 373-405.
  • Vuong C., Gerke C., Somerville G.A. et al. Quorum-Sensing Control of Biofilm Factors in Staphylococcus epidermidis//J. Infect. Dis. 2003. V. 188. P. 706-718.
  • Xavier J.B., Picioreanu C., Rani S.A. et al. Biofilm-control strategies based on enzymic disruption of the extracellular polymeric substance matrix -a modelling study//Microbiology. 2005. V. 151. P. 3817-3832.
Еще
Статья научная