Развитие резистентности к фунгицидам у фитопатогенных грибов и их хемосенсибилизация как способ повышения защитной эффективности триазолов и стробилуринов

Автор: Щербакова Л.А.

Журнал: Сельскохозяйственная биология @agrobiology

Рубрика: Обзоры, проблемы

Статья в выпуске: 5 т.54, 2019 года.

Бесплатный доступ

Химический метод до сих пор остается наиболее эффективным способом защиты урожая экономически значимых сельскохозяйственных культур и обеспечения его качества. В мировом сельском хозяйстве сейчас используется не менее 150 фунгицидных соединений с различными механизмами действия, а число разработанных на их основе и зарегистрированных продуктов в несколько раз больше. Триазолы и стробилурины относятся к тем фунгицидам, применение которых в 1980-1990-х годах обеспечило прорыв в борьбе с возбудителями наиболее вредоносных болезней (D. Fernández-Ortuño с соавт., 2008). Однако для надежной защиты растений от поражающих их грибов и оомицетов зачастую необходимы многократные обработки фунгицидами, повторяющиеся в течение каждого нового вегетационного сезона, что ухудшает экологическую ситуацию и повышает риск развития резистентности этих фитопатогенов к фунгицидам. Резистентность - наиболее трудно преодолимое последствие фунгицидных обработок (J.A. Lucas с соавт., 2015), которое делает их во многих случаях малоэффективными и экономически неоправданными (K.J. Brent с соавт., 2007; R.P. Oliver, 2014). Попытки борьбы с резистентными формами фитопатогенных грибов и оомицетов посредством увеличения дозировок фунгицидов и кратности обработок бесперспективны, так как вызывают распространение все более и более устойчивых популяций этих патогенов. Доминирующими в современном сельском хозяйстве тенденциями, направленными на его экологизацию, считают сокращение дозировок фунгицидов без снижения эффективности их защитного действия и преодоление резистентности фитопатогенов. В то же время отказ от современных фунгицидов из группы высокого и среднего риска резистентности, в том числе стробилуринов и триазолов, не представляется удачным с практической точки зрения, поскольку они обеспечивают высокоэффективный контроль широкого спектра заболеваний и имеют ряд других преимуществ (А.В. Филиппов с соавт., 2016). Одной из стратегий, способствующих преодолению многих из вышеуказанных противоречий, могла бы стать хемосенсибилизация фитопатогенов, то есть повышение их чувствительности к фунгицидам. Хемосенсибилизация может быть достигнута при сочетании коммерческого фунгицида с нефунгицидным или обладающим незначительной фунгитоксичностью природным соединением (B.C. Campbell с соавт., 2012; V.G. Dzhavakhiya с соавт., 2012). При этом используются концентрации, которые недостаточны для подавления патогена при раздельной обработке агентами, но при их совместном применении достигается синергетический фунгицидный эффект, в том числе значительно превышающий таковой при дозировках фунгицида, к которым нечувствительны резистентные штаммы. Вещества-хемосенсибилизаторы атакуют биохимические и структурные мишени, отличные от тех, на которых нацелено действие фунгицидов, и поэтому не способствуют отбору резистентных форм. В настоящем обзоре перспективность хемосенсибилизации как антирезистентной стратегии усиления защитного эффекта фунгицидов продемонстрирована на примере нескольких экономически значимых фитопатогенных грибов, чувствительность которых к стробилуринам и триазолам может быть многократно усилена при их совместном применении с метаболитами растений и микроорганизмов или с их аналогами. Кроме того, кратко обсуждается проблема развития резистентности фитопатогенных грибов и приемы, препятствующие ее распространению, приведены сведения о типах и основных механизмах резистентности, в частности о тех, которые ответственны за устойчивость к триазолам и стробилуринам, а также представлена информация о механизмах действия некоторых хемосенсибилизаторов.

Еще

Хемосенсибилизация, резистентность к фунгицидам, фитопатогенные грибы, триазолы, стробилурины, антистрессовые пути метаболизма, преодоление резистентности

Короткий адрес: https://sciup.org/142226258

IDR: 142226258   |   DOI: 10.15389/agrobiology.2019.5.875rus

Список литературы Развитие резистентности к фунгицидам у фитопатогенных грибов и их хемосенсибилизация как способ повышения защитной эффективности триазолов и стробилуринов

  • Moore D., Robson G., Trinci A. Fungi as pathogens of plants. In: 21st Century guidebook to fungi. Cambridge University Press, Cambridge, 2000: 67-391 ( ). DOI: 10.1017/CBO9780511977022.015
  • Филиппов А.В. Фитофтороз картофеля. Защита и карантин растений, 2012, 5: 61-88.
  • Lucas J.A., Hawkins N.J., Fraaije B.A. The evolution of fungicide resistance. Advances in Applied Microbiology, 2015, 90: 29-92 ( ). DOI: 10.1016/bs.aambs.2014.09.001
  • Oliver R.P. A reassessment of the risk of rust fungi developing resistance to fungicides. Pest. Manag. Sci., 2014, 70: 1641-1645 ( ). DOI: 10.1002/ps.3767
  • Steffens J.J., Pell E.J., Tien M. Mechanisms of fungicide resistance in phytopathogenic fungi. Current Opinion in Biotechnology, 1996, 7(3): 348-355 ( DOI: 10.1016/s0958-1669(96)80043-7)
  • Brent K.J., Hollomon D.W. Fungicide resistance in crop pathogens: how can it be managed? Fungicide Resistance Action Committee, Brussels, 2007.
  • Deising H.B., Reimann S., Pascholati S.F. Mechanisms and significance of fungicide resistance. Brazilian Journal of Microbiology, 2008, 39: 286-295 ( ).
  • DOI: 10.1590/S1517-838220080002000017
  • Campbell B.C., Chan K.L., Kim J.H. Chemosensitization as a means to augment commercial antifungal agents. Frontiers in Microbiology, 2012, 3: 79 ( ).
  • DOI: 10.3389/fmicb.2012.00079
  • Mundaca-Shah C., Ogawa V.A., Nicholson A. The global momentum to counter antimicrobial resistance. In: Combating antimicrobial resistance: a one health approach to a global threat: Proceedings of a Workshop. National Academies of Sciences, Engineering, and Medicine, The National Academies Press, Washington, DC, 2017: 5-12 ( ).
  • DOI: 10.17226/24914
  • FRAC Code List ©*2019. Режим доступа: https://www.frac.info/docs/default-source/pub-lications/frac-code-list/frac-code-list-2019.pdf. Без даты.
  • Fernández-Ortuño D., Torés J.A., de Vicente A., Pérez-García A. Mechanisms of resistance to QoI fungicides in phytopathogenic fungi. International Microbiology, 2008, 11: 1-9 ( ).
  • DOI: 10.2436/20.1501.01.38
  • Ma Z., Michailides T.J. Advances in understanding molecular mechanisms of fungicide resistance and molecular detection of resistant genotypes inphytopathogenic fungi. Crop Protection, 2005, 24: 853-863 ( ).
  • DOI: 10.1016/j.cropro.2005.01.011
  • Шкель Т.В., Василевская А.В., Гилеп А.А., Черновецкий М.А., Лукьяненко И.Г., Усанов С.А. Молекулярный анализ стерол-14-a-деметилаз (cyp51) патогенных грибов, вызывающих нозокомиальные инфекции. Труды Белорусского государственного университета, 2013, 8(1): 152-158.
  • Balba H. Review of strobilurin fungicide chemicals. Journal of Environmental Science and Health, Part B, 2007, 42: 441-451 ( ).
  • DOI: 10.1080/03601230701316465
  • Brent K.J. Historical perspectives of fungicide resistance. In: Fungicide resistance in crop protection: risk and management /T.S. Thind (ed.). CABI, Wallingford, UK, 2012: 3-20 ( ).
  • DOI: 10.1079/9781845939052.0003
  • Russell P.E. Fungicide Resistance Action Committee (FRAC). Outlooks on Pest Management, 2006, 17(2): 90-92 ( ).
  • DOI: 10.1564/16apr10
  • Walker A.-S., Auclair C., Gredt M., Leroux P. First occurrence of resistance to strobilurin fungicides in Microdochium nivale and Microdochium majus from French naturally infected wheat grains. Pest Manag. Sci., 2009, 65(8): 906-915 ( ).
  • DOI: 10.1002/ps.1772
  • Bardas G.A., Veloukas T., Koutita O., Karaoglanidis G.S. Multiple resistance of Botrytis cinerea from kiwifruit to SDHIs, QoIs and fungicides of other chemical groups. Pest Manag. Sci., 2010, 66(9): 967-973 ( ).
  • DOI: 10.1002/ps.1968
  • Takagaki M., Kaku K., Watanabe S., Kawai K., Shimizu T., Sawada H., Kumakura K., Nagayama K. Mechanism of resistance to carpropamid in Magnaporthe grisea. Pest Manag. Sci., 2004, 60(9): 921-926 ( ).
  • DOI: 10.1002/ps.896
  • Hauslanden H., Adolf B., Leiminger J. Evidence of strobilurine resistant isolates of A. solani and A. alternata in Germany. PPO-Special Report, 2015, 17: 93-100.
  • Cheval P., Siah A., Bomble M., Popper A.D., Reignault P., Halama P. Evolution of QoI resistance of the wheat pathogen Zymoseptoria tritici in Northern France. Crop Protection, 2017, 92: 131-133 ( ).
  • DOI: 10.1016/j.cropro.2016.10.0170261
  • Edin E., Andersson B. The early blight situation in Sweden - species abundance and strobilurin sensitivity. PPO-Special Report, 2014, 16: 83-84.
  • Davidse L.C., Looijen D., Turkensteen L.J., Wal D. Occurrence of metalaxyl-resistant strains of Phytophthora infestans in Dutch potato fields. Netherlands Journal of Plant Pathology, 1981, 87(2): 65-68 ( ).
  • DOI: 10.1007/bf01976658
  • Taylor R.J., Salas B., Secor G.A., Rivera V., Gudmestad N.C. Sensitivity of North American isolates of Phytophthora erythroseptica and Pythium ultimum to mefenoxam (metalaxyl). Plant Disease, 2002, 86(7): 797-802 ( ).
  • DOI: 10.1094/pdis.2002.86.7.797
  • Gisi U., Sierotzki H., Cook A., McCaffery A. Mechanisms influencing the evolution of resistance to Qo inhibitor fungicides. Pest Manag. Sci., 2002, 58(9): 859-867 ( ).
  • DOI: 10.1002/ps.565
  • Bartlett D.W., Clough J.M., Godwin J.R., Hall A.A., Hamer M., Parr-Dobrzanski B. The strobilurin fungicides. Pest Manag. Sci., 2002, 58(7): 649-662 ( ).
  • DOI: 10.1002/ps.520
  • Mavroeidi V.I., Shaw M.W. Sensitivity distributions and cross-resistance patterns of Mycosphaerella graminicola to fluquinconazole, prochloraz and azoxystrobin over a period of 9 years. Crop Protection, 2005, 24(3): 259-266 ( ).
  • DOI: 10.1016/j.cropro.2004.07.014
  • Hobbelen P.H.F., Paveley N.D., Fraaije B.A., Lucas J.A., van den Bosch F. Derivation and testing of a model to predict selection for fungicide resistance. Plant Pathology, 2011, 60(2): 304-313 ( ).
  • DOI: 10.1111/j.1365-3059.2010.02380.x
  • Филиппов А.В., Кузнецова М.А., Рогожин А.Н. Как сохранить устойчивость картофеля к фунгицидам. Картофель и овощи, 2016, 4: 26-28.
  • Zwiers L.H., Stergiopoulos I., Gielkens M.M., Goodall S.D., de Waard M.A. ABC transporters of the wheat pathogen Mycosphaerella graminicola function as protectants against biotic and xenobiotic toxic compounds. Mol. Gen. Genomics, 2003, 269: 499-507 ( ).
  • DOI: 10.1007/s00438-003-0855-x
  • de Waard M.A., Andrade A.C., Hayashi K., Schoonbeek H., Stergiopoulos I., Zwiers L.-H. Impact of fungal drug transporters on fungicide sensitivity, multidrug resistance and virulence. Pest Manag. Sci., 2006, 62(3): 195-207 ( ).
  • DOI: 10.1002/ps.1150
  • Hayashi K., Schoonbeek H.J., de Waard M.A. Bcmfs1, a novel major facilitator superfamily transporter from Botrytis cinerea, provides tolerance towards the natural toxic compounds camptothecin and cercosporin and towards fungicides. Applied and Environmental Microbiology, 2002, 68: 4996-5004 ( ).
  • DOI: 10.1128/aem.68.10.4996-5004.2002
  • Schnabel G., Jones A.L. The 14a-demethylase (CYP51A1) gene is overexpressed in Venturia inaequalis strains resistant to myclobutanil. Phytopathology, 2001, 91: 102-110 ( ).
  • DOI: 10.1094/PHYTO.2001.91.1.102
  • Steinfeld U., Sierotzki H., Parisi S., Poirey S., Gisi U. Sensitivity of mitochondrial respiration to different inhibitors in Venturia inaequalis. Pest Manag. Sci., 2001, 57(9): 787-796 ( ).
  • DOI: 10.1002/ps.356
  • Miguez M., Reeve C., Wood P.M., Hollomon D.W. Alternative oxidase reduces the sensitivity of Mycospherella graminicola to QOI fungicides. Pest Manag. Sci., 2004, 60(1): 3-7 ( ).
  • DOI: 10.1002/ps.837
  • Limpert E. Frequencies of virulence and fungicide resistance in the European barley mildew population in 1985. Journal of Phytopathology, 2008, 119(4): 298-311 ( ).
  • DOI: 10.1111/j.1439-0434.1987.tb04401.x
  • Leroux P., Walker A.-S. Multiple mechanisms account for resistance to sterol 14a-de-methylation inhibitors in field isolates of Mycosphaerella graminicola. Pest Manag. Sci., 2011, 67(1): 44-59 ( ).
  • DOI: 10.1002/ps.2028
  • Pasche J.S., Wharam C.M., Gudmestad N.C. Shift in sensitivity of Alternaria solani in response to QoI fungicides. Plant Disease, 2004, 88(2): 181-187 ( ).
  • DOI: 10.1094/PDIS.2004.88.2.181
  • Peters R.D., Drake K.A., Gudmestad N.C., Pasche J.S., Shinners-Carnelley T. First report of reduced sensitivity to a QoI fungicide in isolates of Alternaria solani causing early blight of potato in Canada. Plant Disease, 2008, 92(12): 1707-1707 ( ).
  • DOI: 10.1094/PDIS-92-12-1707B
  • Edin E., Liljeroth E., Andersson B. Long term field sampling in Sweden reveals a shift in occurrence of cytochrome b genotype and amino acid substitution F129L in Alternaria solani, together with a high incidence of the G143A substitution in Alternaria alternata. Eur. J. Plant Pathol., 2019, 155: 1-15 ( ).
  • DOI: 10.1007/s10658-019-01798-9
  • Price C.L., Parker J.E., Warrilow A.G.S., Kelly D.E., Kelly S.L. Azole fungicides - understanding resistance mechanisms in agricultural fungal pathogens. Pest Manag. Sci., 2015, 71(8): 1054-1058 ( ).
  • DOI: 10.1002/ps.4029
  • Torriani S.F.F., Frey R., Buitrago C., Wullschleger J., Waldner M., Kuehn R., Scalliet G., Sierotzki H. Succinate-dehydrogenase inhibitor (SDHI) resistance evolution in plant pathogens. In: Modern fungicides and antifungal compounds, Vol. VIII / H.B. Deising, B. Fraaije, A. Mehl, E.C. Oerke, H. Sierotzki, G. Stammler (eds.). Deutsche Phytomedizinische Gesellschaft, Braunschweig, 2017: 89-94.
  • Sierotzki H., Wullschleger J., Gisi U. Point mutation in сytochrome b gene conferring resistance to strobilurin fungicides in Erysiphe graminis f. sp. tritici field isolates. Pesticide Biochemistry and Physiology, 2000, 68: 107-112 ( ).
  • DOI: 10.1006/pest.2000.2506
  • Frey R., Lindenberger N., Brunner P.C., Torriani S.F.F. The evolution of Zymoseptoria tritici sensitivity to triazole fungicides. Abstracts of 19th Int. RHB Symposium on Modern Fungicides and Antifungal Compounds. Friedrichroda, 2019: 88.
  • Chen C., Wang J., Luo Q., Yuan S., Zhou M. Characterization and fitness of carbendazim-resistant strains of Fusarium graminearum (wheat scab). Pest Manag. Sci., 2007, 63(12): 1201-1207 ( ).
  • DOI: 10.1002/ps.1449
  • Pasche J.S., Piche L.M., Gudmestad N.C. Effect of the F129L mutation in Alternaria solani on fungicides affecting mitochondrial respiration. Plant Disease, 2005, 89(3): 269-278 ( ).
  • DOI: 10.1094/PD-89-0269
  • Adolf B., Leiminger J., Hausladen H. The F129L mutation of the cytochrome b gene in German A. solani isolates and its impact on their sensitivity towards QoI fungicides. PPO-Special Report, 2014, 16: 195-196.
  • Leiminger J.H., Adolf B., Hausladen H. Occurrence of the F129L mutation in Alternaria solani populations in Germany in response to QoI application, and its effect on sensitivity. Plant Pathology, 2014, 63(3): 640-650 ( ).
  • DOI: 10.1111/ppa.12120
  • Jung G., Sang H., Hulvey J., Chang T., Popko J. Multidrug resistance conferred by xenobiotic detoxification in the ascomycete fungus Sclerotinia. In: Modern fungicides and antifungal compounds, Vol. VIII /H.B. Deising, B. Fraaije, A. Mehl, E.C. Oerke, H. Sierotzki, G. Stammler (eds.). Deutsche Phytomedizinische Gesellschaft, Braunschweig, 2017: 101-106.
  • Marzani A., Swarbrick P., Rossall S. Correlation of the F129L mutation in Pyrenophora teres, the pathogen of net blotch of barley, with the efficacy of QoI fungicides. IOSR Journal of Agriculture and Veterinary Science, 2013, 3(4): 66-72 ( ).
  • DOI: 10.9790/2380-0346672
  • Eisermann I., Gottschling D., Kemen E., Karlovsky P., Deising H.B., Wirsel S.G.R. A single amino acid exchange in the novel transcription factor Azr1 governs azole tolerance of Fusarium graminearum. Abstracts of 19th Int. RHB Symposium on Modern Fungicides and Antifungal Compounds. Friedrichroda, 2019: 99.
  • Proactive Fungicide Resistance Avoidance. Pesticide Environmental Stewardship. Режим доступа: https://pesticidestewardship.org/resistance/fungicide-resistance/proactive-fungicide-resistance-avoidance/. Дата обращения: 27.09.2019.
  • Dowley L.J., Griffin D., O'Sullivan E. Two decades of monitoring Irish populations of Phytophthora infestans for phenylamide resistance. Potato Research, 2002, 45: 79-84 ( ).
  • DOI: 10.1007/bf02732219
  • Cooke L.R., Little G. Potato late blight control with fluazinam and the current status of phenylamide resistance in Northern Ireland. PPO-Special Report, 2006, 11: 175-184.
  • Beckerman J.L., Sundin G.W., Rosenberger D.A. Do some IPM concepts contribute to the development of fungicide resistance? Lessons learned from the apple scab pathosystem in the United States. Pest Manag. Sci., 2014, 71(3): 331-342 ( ).
  • DOI: 10.1002/ps.3715
  • Battistini G., Ciriani A., Cavina F., Prodi A., Collina M. Strobilurin sensitivity of Zymoseptoria tritici Italian strains. In: Modern fungicides and antifungal compounds, Vol. VIII /H.B. Deising, B. Fraaije, A. Mehl, E.C. Oerke, H. Sierotzki, G. Stammler (eds.). Deutsche Phytomedi-zinische Gesellschaft, Braunschweig, 2017: 263-264.
  • Jørgensen L.N., Matzen N., Semaskiene R., Korbas M., Danielewicz J., Glazek M., Maumene C., Rodemann B., Weigand S., Hess M., Blake J., Clark B., Kildea S., Bataille C., Ban R. Azoles have different strengths and perform diversely across Europe. In: Modern fungicides and antifungal compounds, Vol. VIII /H.B. Deising, B. Fraaije, A. Mehl, E.C. Oerke, H. Sierotzki, G. Stammler (eds.). Deutsche Phytomedizinische Gesellschaft, Braunschweig, 2017: 129-134.
  • Hemaiswarya S., Kruthiventi A.K., Doble M. Synergism between natural products and antibiotics against infectious diseases. Phytomedicine, 2008, 15(8): 639-652 ( ).
  • DOI: 10.1016/j.phymed.2008.06.008
  • Shabbits J.A., Hu Y., Mayer L.D. Tumor chemosensitization strategies based on apoptosis manipulations. Molecular Cancer Therapeutics, 2003, 2(8): 805-813.
  • Wagner H., Ulrich-Merzenich G. Synergy research: Approaching a new generation of phytopharmaceuticals. Phytomedicine, 2009, 16(2-3): 97-110 ( ).
  • DOI: 10.1016/j.phymed.2008.12.018
  • Dzhavakhiya V., Shcherbakova L., Semina Y., Zhemchuzhina N., Campbell B. Chemosensitization of plant pathogenic fungi to agricultural fungicides. Frontiers in Microbiology, 2012, 3: 87 ( ).
  • DOI: 10.3389/fmicb.2012.00087
  • Kim K., Lee Y., Ha A., Kim J.-I., Park A.R., Yu N.H., Son H., Choi G.J., Park H.W., Lee C.W., Lee T., Lee Y.-W., Kim J.-C. Chemosensitization of Fusarium graminearum to chemical fungicides using cyclic lipopeptides produced by Bacillus amyloliquefaciens strain JCK-12. Frontiers in Plant Science, 2017, 8: 2010 ( ).
  • DOI: 10.3389/fpls.2017.02010
  • Wink M. Evolutionary advantage and molecular modes of action of multicomponent mixtures used in phytomedicine. Current Drug Metabolism, 2008, 9(1)0: 996-1009 ( ).
  • DOI: 10.2174/138920008786927794
  • Kim J.H., Mahoney N., Chan K., Molyneux R.J., May G.S., Campbell B.C. Chemosensitization of fungal pathogens to antimicrobial agents using benzo analogs. FEMS Microbiology Letters, 2008, 281(1): 64-72 ( ).
  • DOI: 10.1111/j.1574-6968.2008.01072.x
  • Dzhavakhiya V.G., Voinova T.M., Statsyuk N.V., Shcherbakova L.A. Sensitization of plant pathogenic fungi to the tebuconazole-based commercial fungicide using some analogues of natural amino acids. AIP Conference Proceedings, 2019, 2063(1): 030005 ( ).
  • DOI: 10.1063/1.5087313
  • Kim J., Campbell B., Mahoney N., Chan K., Molyneux R., May G. Chemosensitization prevents tolerance of Aspergillus fumigatus to antimycotic drugs. Biochemical and Biophysical Research Communications, 2008, 372(1): 266-271 ( ).
  • DOI: 10.1016/j.bbrc.2008.05.030
  • Bang K.H., Lee D.W., Park H.M., Rhee Y.H. Inhibition of fungal cell wall synthesizing enzymes by trans-cinnamaldehyde. Bioscience, Biotechnology, and Biochemistry, 2000, 64(5): 1061-1063 ( ).
  • DOI: 10.1271/bbb.64.1061
  • Yen T.B., Chang S.T. Synergistic effects of cinnamaldehyde in combination with eugenol against wood decay fungi. Bioresource Technology, 2008, 99(1): 232-236 ( ).
  • DOI: 10.1016/j.biortech.2006.11.022
  • Kim J.H., Campbell B.C., Mahoney N., Chan K.L., Molyneux R.J., May G.S. Enhanced activity of strobilurin and fludioxonil by using berberine and phenolic compounds to target fungal antioxidative stress response. Letters in Applied Microbiology, 2007, 45(2): 134-141 ( ).
  • DOI: 10.1111/j.1472-765x.2007.02159.x
  • Kim J.H., Campbell B.C., Mahoney N., Chan K.L., Molyneux R.J., May G.S. Enhancement of fludioxonil fungicidal activity by disrupting cellular glutathione homeostasis with 2,5-dihydroxybenzoic acid. FEMS Microbiology Letters, 2007, 270(2): 284-290 ( ).
  • DOI: 10.1111/j.1574-6968.2007.00682.x
  • Eschenauer G., Depestel D.D., Carver P.L. Comparison of echinocandin antifungals. Therapeutics and Clinical Risk Management, 2007, 3(1): 71-97 ( ).
  • DOI: 10.2147/tcrm.2007.3.1.71
  • Hsu F.L., Chang H.T., Chang S.T. Evaluation of antifungal properties of octyl gallate and its synergy with cinnamaldehyde. Bioresource Technology, 2007, 98(4): 734-738 ( ).
  • DOI: 10.1016/j.biortech.2006.04.002
  • Kim J.H., Campbell B.C., Mahoney N., Chan K.L., Molyneux R.J., Xiao C.L. Use of chemosensitization to overcome fludioxonil resistance in Penicillium expansum. Letters in Applied Microbiology, 2010, 51(2): 177-183 ( ).
  • DOI: 10.1111/j.1472-765x.2010.02875.x
  • Kartashov M.I., Shcherbakova L.A., Dzhavakhiya V.G. In vitro enhancement of the sensitivity to tebuconazole in Bipolaris sorokiniana, a causative agent of cereal root rots, by a microbial metabolite 6-demethylmevinolin. Abstracts of 19th Int. RHB Symposium on Modern Fungicides and Antifungal Compounds. Friedrichroda, 2019: 48.
  • Kartashov M.I., Shcherbakova L.A., Statsyuk N.V., Dzhavakhiya V.G. Сo-application of difenoconazole with thymol results in suppression of a Parastagonospora nodorum mutant strain resistant to this triazole. KnE Life Sciences, 2019, 1097-1106.
  • Shcherbakova L.A., Syomina Yu.V., Arslanova L.R., Nazarova T.A., Dzhavakhiya V.G. Metabolites secreted by a nonpathogenic Fusarium sambucinum inhabiting wheat rhizosphere enhance fungicidal effect of some triazoles against Parastagonospora nodorum. AIP Conference Proceedings, 2019, 2063(1): 030018 ( org/).
  • DOI: 10.1063/1.5087326
  • Faria N.C.G., Kim J.H., Goncalves L., Martins M., Chan K.L., Campbell B.C. Enhanced activity of antifungal drugs using natural phenolics against yeast strains of Candida and Cryptococcus. Letters in Applied Microbiology, 2011, 52(5): 506-513 ( ).
  • DOI: 10.1111/j.1472-765x.2011.03032.x
  • Kim J.H., Mahoney N., Chan K.L., Campbell B.C., Haff R.P., Stanker L.H. Use of benzo analogs to enhance antimycotic activity of kresoxim methyl for control of aflatoxigenic fungal pathogens. Frontiers in Microbiology, 2014, 5: 87 ( ).
  • DOI: 10.3389/fmicb.2014.00087
  • Kim J.H., Campbell B.C., Mahoney N., Chan K.L., Molyneux R.J. Chemosensitization of aflatoxigenic fungi to antimycin A and strobilurin using salicylaldehyde, a volatile natural compound targeting cellular antioxidation system. Mycopathologia, 2011, 171: 291-298 ( ).
  • DOI: 10.1007/s11046-010-9356-8
  • Kim J.H., Chang P.K., Chan K.L., Faria N.C.G., Mahoney N., Kim Y.K., Martins M. de L., Campbell B.C. Enhancement of commercial antifungal agents by kojic acid. Int. J. Mol. Sci., 2012, 13(11): 13867-13880 ( ).
  • DOI: 10.3390/ijms131113867
  • Kim J.H., Chan K.L. Augmenting the antifungal activity of an oxidizing agent with kojic acid: control of Penicillium strains infecting crops. Molecules, 2014, 19: 18448-18464 ( ).
  • DOI: 10.3390/molecules191118448
  • Джавахия В.Г., Кэмпбэл Б.К., Щербакова Л.А., Арсланова Л.Р., Жемчужина Н.С., Дроздова Е.И., Сёмина Ю.В. Композитный препарат фунгицидного действия для защиты растений от патогенов, в том числе резистентных к коммерческим фунгицидам. ГНУ ВНИИФ Россельхозакадемии (РФ). Патент № RU 2 548 191 C1. Заявл. 24.12.2013. Опубл. 20.04.2015. Бюл. № 11
Еще
Статья обзорная