Редокс-зависимые процессы в опухолевой ткани рака шейки матки при воздействии фемтосекундного лазерного излучения

Автор: Генинг Татьяна Петровна, Воронова Ольга Сергеевна, Долгова Динара Ришатовна, Абакумова Татьяна Владимировна, Аляпышев Григорий Сергеевич

Журнал: Известия Самарского научного центра Российской академии наук @izvestiya-ssc

Рубрика: Физика и электроника

Статья в выпуске: 4-4 т.14, 2012 года.

Бесплатный доступ

Изучены показатели перекисного окисления липидов и ферментативного звена антиоксидантной системы, а также морфометрические показатели опухолевой ткани после воздействия различных доз фемтосекундного лазерного излучения на различных стадиях экспериментального рака шейки матки. Установлено, что данное излучение дозозависимо увеличивает в опухолевой ткани объем участков некроза и на 30-ые сутки после трансплантации стимулирует в неоплазме возникновение оксидативного стресса.

Перекисное окисление липидов, антиоксиданты, рак шейки матки, фемтосекундное лазерное излучение

Короткий адрес: https://sciup.org/148201340

IDR: 148201340

Текст научной статьи Редокс-зависимые процессы в опухолевой ткани рака шейки матки при воздействии фемтосекундного лазерного излучения

Аляпышев Григорий Сергеевич, студент.

ствие данных об изменении биологического портрета опухолей различной тканевой организации при воздействии ЛИ с различными параметрами. Основными преимуществами фемтосекундных (ФС) лазеров является малая длительность импульса, высокая пиковая (кВт) и малая средняя (мВт) мощности, что позволяет предполагать отсутствие выраженных термических эффектов. В медицине сегодня эти лазеры используются в качестве голографического пинцета и оптического скальпеля. Использование фемтосекундного лазерного излучения (ФСЛИ) в терапии поверхностно локализованных опухолей позволило бы существенно снизить лучевую нагрузку на пациента.

В соответствии свышеизложенным, целью исследования было изучение влияния ФСЛИ на показатели оксидативного стресса в опухолевой ткани при экспериментальном раке шейки матки (РШМ).

Материалы и методы исследования. Модель РШМ была воспроизведена на белых инбредных мышах массой не менее 20 г путем перевивки опухолевого штамма РШМ-5 (НИИ Экспериментальной диагностики и терапии опухолей РОНЦ им. Н.Н. Блохина РАМН, г. Москва).

Использовали фемтосекундный волоконный эрбиевый лазер, который является совместной разработкой Научного центра волоконной оптики Российской Академии наук и Ульяновского государственного университета, со следующими характеристиками: длительность импульса 100*10-15с, пиковая мощность 6 кВт, средняя мощность 1,26 мВт ±2%, X =1,55 мкм. При облучении ФС лазером средняя плотность энергии на ткань (энергетическая доза) за одну процедуру составляла 0,24 Дж/см2 за 10 минут и 0,36 Дж/см2 за 15 минут, но при этом облучение проходило в импульсном ре- жиме при огромной пиковой интенсивности, равной 1910,8 Вт/см2. При 10-ти процедурах 10-ти минутного лазерного облучения суммарная энергетическая доза ЛИ за курс составила 2,4 Дж/см2. При 10-кратном облучении в режиме 15-ти минут на расстоянии 10 см суммарная плотность энергии на ткань составила 3,6 Дж/см2.

Биохимические методы исследования. Интенсивность перекисного окисления липидов (ПОЛ) оценивали по уровню вторичного продукта – малонового диальдегида (МДА) в тесте с тиобарбитуровой кислотой [3]. Активность су-пероксид-дисмутазы (СОД) определяли по методу Nishikimi M. в модификации Дубининой Е.Е. [4, 5], каталазы и глутатион-редуктазы (ГР) по Карпищенко А.И. [6], глутатион-S-трансфе-разы (ГТ) по Habig W.H.[7]. Активность антиоксидантных ферментов и уровень МДА пересчитывались на 1 мг белка, который определяли по методу Брэдфорда [8].

Морфологические методы исследования. Опухолевый материал фиксировали в 10% нейтральном формалине, обезвоживали в спиртах, заключали в парафин. Из парафиновых блоков изготавливали срезы толщиной 5-7 мкм, которые окрашивали гематоксилин-эозиноном. Для морфометрического исследования применялась компьютерная видео-тест-система с программой денситофотометрии «Mecos C1». При анализе гистологических срезов производился расчет удельного объема опухолевой паренхимы, удельного объема опухолевой стромы, удельного объема участков некроза, митотического и апоптоти-ческого индексов. Апоптотические клетки определяли по уровню маргинации хроматина, неровным контурам ядра, наличию кариопикно-за и кариорексиса, а также по некоторым изменениям в цитоплазме (изменение окрашивания цитоплазмы, вакуолизация цитоплазмы, изменение контуров и фрагментация клеток) [9].

Статистическая значимость полученных результатов оценивалась с помощью непараметрического критерия Манна-Уитни и корреляционного критерия значимости (Т) по Стьюденту. Различия между группами считали достоверными при р<0,05.

Результаты исследования. Опухолевая трансформация сопровождается изменением внутриклеточного метаболизма, в частности, изменением образования и утилизации различных форм активного кислорода.

Наши исследования показали достоверное увеличение показателей уровня МДА с ростом опухоли (27,94±1,60; 36,3±1,22; 58,55±6,51 мкмоль/мг белка на 20-ые, 30-ые, 40-ые сутки после трансплантации, соответственно) (рис. 1), что не противоречит данным литературы об усилении ПОЛ при прогрессировании неоплазмы, хотя существует мнение, согласно которому активность процессов ПОЛ в опухолевых клетках может быть снижена [10].

Активность антиоксидантных ферментов (АОФ) в неоплазме в процессе развития РШМ-5 (табл. 1) зависела от стадии развития опухоли.

Как следует из представленных данных, при прогрессировании РШМ-5 в неоплазме достоверно возрастает активность СОД и ГТ (табл. 1). Уровень каталазы, напротив, снижается с увеличением сроков роста опухоли, количество ГР значимо не изменяется . Таким образом, в динамике прогрессирования РШМ-5 имеет место возрастание уровня МДА в неоплазме при разнонаправленном изменении активности ферментов антиоксидантной защиты (АОЗ), что позволяет предполагать возникновение в опухолевой ткани оксидативного стресса.

Установлено, что молекулы кислорода, находящегося в межлипидном пространстве мембран клеток, являются основным акцептором ЛИ. Возникающие при этом гидроперекиси липидов в при-

Сутки после перевивки

Рис. 1. Уровень МДА в неоплазме мышей на разных сроках после трансплантации РШМ-5

Примечание: * - данные, статистически значимо отличающиеся от данных контроля, р < 0,05

Таблица 1. Показатели ферментов АОЗ в неоплазме мышей в динамике прогрессирования РШМ-5

Антиоксидант, ед. изм. Сроки после

перевивки опухоли

СОД, у.е./мг белка (n=18)

Каталаза, ммоль/с/мг белка

(n=18)

ГР, ммоль/мин/м г белка (n=18)

ГТ, ммоль/мин/м г белка (n=18)

20 сутки

9,23±0,93

0,747±0,345

0,235±0,008

0,465±0,076

30 сутки

26,57±6,00*

0,537±0,100*

0,212±0,016

1,502±0,292*

40 сутки

27,10±4,70*

0,592±0,160*

0,218±0,018

1,603±0,152*

Примечание: * – данные, достоверно отличающиеся от данных на 20-ые сутки после трансплантации опухоли, р 0,05

сутствии восстановленных форм железа инициируют цепную реакцию окисления полиненасы-щенных жирных кислот клеточных мембран и плазмы крови. Синглетный кислород, образующийся в результате фотохимических реакций, в частности, может повреждать цитоплазматические мембраны, что сопровождается соответствующими физиологическими реакциями на уровне целостного организма . Корси Л.В. с соавт. (2009) показали, что облучение клеток опухоли на длине волны 1268 нм приводит к образованию синглетного кислорода и индуцируемых им реакций окисления, так как ближний инфракрасный диапазон является спектром поглощения кислорода [11].

Изменение уровня МДА в неоплазме под влиянием ФСЛИ представлено в табл. 2

Воздействие ФСЛИ в дозах 2,4 Дж/см2и 3,6 Дж/см2 статистически значимо увеличивает количество МДА в неоплазме на 20-ые и снижает на 30-ые сутки после трансплантации опухоли.

Результаты изучения активности ферментов АОЗ в неоплазме после ФСЛИ представлены в табл. 3.

ФСЛИ на 20-ые сутки после трансплантации РШМ-5 не влияет на активность ГР и каталазы, одновременно увеличивая активность СОД. Уровень ГТ изменяется волнообразно в зависимости от дозы облучения (табл. 3). На 30ые сутки после перевивки опухоли активность ГР и СОД снижается при возрастании активности каталазы (табл. 3).

Морфологическая характеристика опухолевой ткани при прогрессировании РШМ-5

При оценке морфометрических показателей опухолевой ткани в динамике прогрессирования РШМ-5 установлено, что имеет место достоверное снижение удельного объема опухолевой паренхимы с 76,81±2,01% на 20-ые сутки, до 65,34±2,78% на 30-ые и 43,09±7,58% на 40-ые сутки после трансплантации опухоли. Одновременно снижается и удельный объем опухолевой стромы с 1,207±0,158% на 20-ые сутки после перевивки до 0,200±0,036% на 30-ые и 0,070±0,025% на 40-ые сутки. Уменьшение площади паренхимы, вероятно, обусловлено увеличением зон некроза (21,99±2,05%; 34,64±2,76%; 53,35±11,06% на 20-ые, 30-ые и 40-ые сутки, соответственно). С ростом опухоли возрастает число и размеры участков некроза, выявляемых как в центральных, так и в периферических отделах опухолевой ткани. Апоптотический и митотический индексы достоверно не изменяются в динамике прогрессирования опухоли. При этом апоптотический индекс составляет на 30-ые сутки 67,00±4,25‰, на 40-ые сутки 82,25±9,74‰ относительно 20-х суток (87,00±3,76‰). Митотический индекс значимо не изменяется на всех сутках после трансплантации опухоли (87,00±3,76; 67,00±4,25; 82,25±9,74% на 20-ые, 30-ые, 40-ые сутки после трансплантации опухоли, соответственно).

Таблица 2. Уровень МДА (мкмоль/мг белка) в неоплазме РШМ-5 при воздействии разных доз ФСЛИ

Доза

ФСЛИ

Эксперимент. группа

Без облучения n=18

Э сред .=2,4 Дж/см2 n=18

Э сред .=3,6 Дж/см2 n=18

20 сутки РШМ -5

27,94±1,600

32,17±1,150*

33,92±2,780*

30 сутки РШМ -5

36,30±1,220

32,44±0,960*

33,81±1,490

Примечание: * - данные статистически значимо отличающиеся от данных без облучения, p<0,05

Таблица 3. Активность ферментов АОЗ в опухолевой ткани РШМ-5 в разные сроки после трансплантации опухоли при воздействии ФСЛИ

Группы

Показатели

20-е сутки роста РШМ

30-е сутки роста РШМ

Без облучения n= 20

Э =2 4 сред. , Дж/см2 n= 12

Э сред .=3,6 Дж/см2 n= 12

Без облучения n= 20

Э =2 4 ср ед. , Дж/см2 n= 12

Э сред .=3,6 Дж/см2 n= 12

ГР,ммоль/ми н/мг

0,24±0,008

0,240±0,009

0,250±0,006

0,210±0,016

0,170±0,004*

0,140±0,005*

ГТ,ммоль/ми н/мг

0,470±0,076

0,750±0,070*

0,560±0,077

1,50±0,292

1,74±0,120

0,64±0,065*

СОД, у.е./мг

9,23±0,93

12,92±1,92*

17,10±1,40*

26,57±2,00

8,15±0,20*

14,86±3,41*

Каталаза, ммоль/с/мг

0,750±0,345

0,530±0,110

1,050±0,169

0,540±0,100

0,450±0,073

0,810±0,019*

Примечание: * - данные статистически значимо отличающиеся от данных без облучения, p<0,05

Воздействие ФСЛИ в обеих использованных дозах на разные сутки после трансплантации опухоли вызывает достоверные изменения в морфометрических показателях опухолевой ткани (табл. 4).

На 20-е сутки после трансплантации опухоли ФСЛИ приводит к уменьшению удельного объема опухолевой паренхимы (рис.2), стромы, митотического и апоптотического индексов (‰). Однако, при облучении мышей ФС лазером вдвое возрастает удельный объем участков некроза, что позволяет предполагать о том, что ФСЛИ является активатором некротических процессов в опухолевой ткани экспериментального РШМ (рис.34). На 30-е сутки после трансплантации опухоли воздействие ФС лазером вызывает те же изменения, что и на 20-е сутки после перевивки, за исключением изменений в удельном объеме опухолевой стромы: на 30-е сутки облучение ФС-лазе-ром дозозависимо увеличивает объем опухолевой стромы (рис.2).

Результаты данного исследования позволяют предполагать, что ФСЛИ в исследуемых дозах стимулирует некроз опухолей.

ВЫВОДЫ

  • 1.    ФСЛИ в неоплазме на 20-е сутки после трансплантации РШМ-5 повышает уровень функциональной активности системы «перекисное окисление липидов - антиоксиданты». На 30-е сутки после трансплантации РШМ-5 опухоли ФСЛИ стимулирует в неоплазме оксидативный стресс.

  • 2.    Под влиянием ФСЛИ в опухолевой ткани РШМ-5 возрастает объем участков некроза при одновременном снижении удельного объема паренхимы, митотического и апоптотического индексов.

Работа выполнена при поддержке грантов гос-задания Минобрнауки РФ и гранта Президента РФ.

Таблица 4. Морфологические показатели опухолевой ткани при РШМ-5 мышей

Группа

Показатели

20-е сутки роста РШМ

30-е сутки роста РШМ

Без облучения

Э сред .=2,4

Дж/см2

Э сред .=3,6

Дж/см2

Без облучения

Э =2 4

сред. , Дж/см2

Э сред .=3,6

Дж/см2

Удельный объем опухолевой паренхимы (%)

76,81±2,01

57,39±0,41*

53,59±3,73*

65,34±2,78

41,22±3,22*

56,02±5,34*

Удельный объем опухолевой стромы (%)

1,21±0,16

0,49±0,04*

0,25±0,01*

0,2±0,036

0,38±0,01*

0,50±0,21*

Удельный объем участков некроза (%)

21,99±2,05

42,12±0,37*

46,17±3,73*

34,64±2,76

58,41±3,22*

43,50±5,14*

Митотический индекс, (‰)

18,00±1,40

15,63±5,63

9,38±3,13*

18,00±3,18

6,25±2,50*

5,00±0,01*

Апоптотический индекс, (‰)

87,00±3,76

33,75±6,25*

23,13±1,88*

67,00±4,25

26,25±10,00*

23,13±1,88*

Примечание: * - данные, значимо отличающиеся от показателей без облучения

Рис. 2. Опухоль РШМ-5 до и после воздействия ФСЛИ на разные сутки после трансплантации опухоли. Окраска гематоксилин-эозином. Микрофото х100

Список литературы Редокс-зависимые процессы в опухолевой ткани рака шейки матки при воздействии фемтосекундного лазерного излучения

  • Kamata T. Roles of Nox1 and other Nox-isoforms in cancer development//Cancer Sci. 2009. Vol.100(8). P.1382-1388.
  • Закономерности паранеопластических расстройств при отечно-инфильтративной форме рака молочной железы/В.Ю.Барсуков, В.Н.Плохов, Н.П.Чеснокова//Современные проблемы науки и образования. 2008. №1. С. 13-19.
  • Модификация метода определения перекисей липидов в тесте с тиобарбитуровой кислотой/Л.И.Андреева, А.А.Кишкун, Л.А.Кожемякин//Лаб.дело. 1988. №11. С.41-43.
  • Дубинина Е.Е. Биологическая роль супероксидного анион-радикала и супероксиддисмутазы в тканях организма//Успехи соврем.биол. 1989. Т.108. №1(4). С.3-18.
  • The occurrence of superoxide anion inthereaction of reduced phenacinemethosulfateand molecular oxygen/M.Nishikimi, N.Appa, K.Yagi//Biochem. Biophys. Res. Commun. 1972. Vol.46. P.849-854.
  • Карпищенко А.И. Медицинские лабораторные технологии и диагностика: Справочник: в 2 т. СПб.: Интермедика 1999. 656 с.
  • Glutathione S-transferase novel kinetic mechanism in which the major reaction pathway depends on substrate concentration/W.H.Habig, M.J.Pabst, W.B.Jakoby//J.Biol.Chem. 1974. Vol.249 (22). Р.7140-7147.
  • Bradford M.M. A rapid and sensitive method for the quantitation of microgram quantities of protein utilizing the principle of protein-dye binding//Anal. Biochem. 1976. Vol.72. P.248-54.
  • Манских В.Н. Морфологические методы верификации и количественной оценки апоптоза//Бюллетень сибирской медицины. 2004. №1. C.63-70.
  • Oxy-radical sources, scavender systems and membrane damage in cancer cells/T.Galeotti, S.Borello, L.Masotti//In: Oxygen Radicals: Systemic Events and Disease Processes. Basel: Karger, 2004. Р.129-148.
  • Корси Л.В., Соколов В.Г. Лазерный способ фотохимической деструкции опухолей без экзогенных сенсибилизаторов//Сборник «Лазерно-оптические системы и технологии». М.: ФГУП «НПО Астрофизика», 2009. С.101-106.
Еще
Статья научная