Регулирование активности аконата гидратазы в листьях кукурузы с красным и синим светом
Автор: Федорин Д.Н., Эпринцев А.Т.
Журнал: Журнал стресс-физиологии и биохимии @jspb
Статья в выпуске: 3 т.13, 2017 года.
Бесплатный доступ
Изучена динамика активности аконатгидратазы (AH, EC 4.2.1.3) в листьях кукурузы при различных режимах света, и было установлено, что красный и синий свет оказывает тормозящее влияние на функционирование исследуемого фермента. Повышенная активность АГ в темных условиях связана с активизацией дыхательного обмена как основного источника энергетических эквивалентов в отсутствие света. Показана зависимость скорости экспрессии генов aco1 и aco2 в листьях кукурузы при облучении светом разных длин волн. Изменение скорости экспрессии гена aco1 в зависимости от состояния фитохрома и криптохромных систем коррелирует с активностью кодируемого фермента, что указывает на механизм опосредованного генами фитохром- и криптохром. Для гена aco2 показана обратная зависимость в регуляции фитохромной системы.
Короткий адрес: https://sciup.org/14324015
IDR: 14324015
Список литературы Регулирование активности аконата гидратазы в листьях кукурузы с красным и синим светом
- Епринцев А.Т., Селиванова Н.В., Федорин Д.Н. (2015) Регуляция активности сукцинатдегидрогеназного комплекса Arabidopsis thaliana L. синим светом. Биологические мембраны, 32(4), 287-292
- Епринцев А.Т., Федорин Д.Н., Карабутова Л.А., Покусина Т.А. (2016) Световая регуляция экспрессии гена sdh2-3 субъединицы в сукцинатдегидрогеназы в листьях кукурузы. Физиология растений, 63(4), 1-7
- Лакин Г.Ф. (1990) Биометрия. М.: Высш. шк., 351
- Carrari F., Nunes-Nesi A., Gibon Y., Lytovchenko A., Loureiro M.E., Fernie A.R. (2003) Reduced expression of aconitase results in an enhanced rate of photosynthesis and marked shifts in carbon partitioning in illuminated leaves of wild species tomato. Plant Physiol, 133, 1322-1335
- Casal J.J., Yanovsky M.J. (2005) Regulation of gene expression by light. Int. J. Dev. Biol., 49, 501-511
- Chomczynski P., Sacchi N. (1987) Singlestep-method of RNA isolation by acid guanidinium thiocyanate-phenol-chloroform extraction. Anal. Biochem, 162, 156-159
- Eprintsev A.T., Fedorin D.N., Igamberdiev A.U. (2013) Ca2+ is involved in phytochrome A-dependent regulation of the succinate dehydrogenase gene sdh1-2 in Arabidopsis. J Plant Physiol, 170(15), 1349-1352
- Escobar M.A., Franklin K.A., Svensson A.S., Salter M.G., Whitelam G.C., Rasmusson A.G. (2004) Light Regulation of the Arabidopsis Respiratory Chain. Multiple Discrete Photoreceptor Responses Contribute to Induction of Type II NAD(P)H Dehydrogenase Genes. Plant Physiol, 136, 2710-2721
- Popov V.N., Eprintsev A.T., Fedorin D.N., Igamberdiev A.U. (2010) Succinate dehydrogenase in Arabidopsis thaliana is regulated by light via phytochrome A. FEBS Letters, 584(1), 199-202
- Rasmusson A.G., Escobar M. (2007) Light and diurnal regulation of plant respiratory gene expression. Physiologia Plantarum, 129, 57-67
- Regev-Rudzki N., Yogev O., Pines O. (2008) The mitochondrial targeting sequence tilts the balance between mitochondrial and cytosolic dual localization. Journal of Cell Science, 121, 2423-2431
- Tepperman J.M., Hwang Y.S., Quail P.H. (2006) PhyA dominates in transduction of red-light signals to rapidly responding genes at the initiation of Arabidopsis seedling de-etiolation. Plant Journal, 48, 728-742
- Thum K.E., Shin M.J., Palenchar P.M., Kouranov A., Coruzzi G.M. (2004) Genome-wide investigation of light and carbon signaling interactions in Arabidopsis. Genome Biology, 5, 10
- Yang H.Q., Tang R.H., Cashmore A.R. (2001) The signaling mechanism of Arabidopsis CRY1 involves direct interaction with COP1. Plant Cell, 13, 2573-2587
- Zuo Z., Liu H., Liu B., Liu X., Lin C. (2011) Arabidopsis cryptochrome 2 undergoes blue light-dependent interaction with the SPA1-COP1 complex to regulate floral initiation in plants. Curr Biol., 21(10), 841-847
