Результаты микробиологического мониторинга поверхности кожи клинически здоровых рептилий, находящихся в условиях неволи
Автор: Мартышин А.В., Ковальчук Н.М.
Журнал: Вестник Красноярского государственного аграрного университета @vestnik-kgau
Рубрика: Ветеринария
Статья в выпуске: 5, 2012 года.
Бесплатный доступ
В статье представлены результаты лабораторных исследований по микробиологическому мониторингу поверхностных покровов (кожи) рептилий. Описаны морфологические, культуральные и биохимические свойства выделенных микроорганизмов, а также приведены сведения по определению факторов патогенности и чувствительности бактерий к антибиотикам.
Рептилии, неволя, кожа, микробиология, бактерионосительство
Короткий адрес: https://sciup.org/14082390
IDR: 14082390
Текст научной статьи Результаты микробиологического мониторинга поверхности кожи клинически здоровых рептилий, находящихся в условиях неволи
В современных условиях содержания рептилий в неволе неправильный уход за ними приводит к снижению естественной резистентности их организма, что является одной из причин их заболеваемости или бактерионосительства. В ряде случаев именно обычная микрофлора приобретает большое значение в возникновении или развитии болезни. Иногда обычная микрофлора становится источником тех патогенных или условно-патогенных заразных агентов, которые обуславливают эндогенное инфицирование, проявление секундарных инфекций. Однако существуют ситуации, когда многие бактериальные и грибковые агенты вызывают заболевания даже в оптимальных условиях содержания животных [3, 8, 10–12].
Сложившиеся в процессе эволюции микробные биоценозы в разных системах организма животных поддерживают их нормальные физиологические функции и играют определенную роль в иммунитете. Изменения в микробных биоценозах во многих случаях приводят к возникновению патологических процессов в соответствующих органах.
При рассмотрении способов борьбы со многими инфекционными болезнями бактериальной и вирусной этиологии чаще сосредотачивают основное внимание на патогенных микроорганизмах – возбудителях этих заболеваний, реже обращают внимание на сопутствующую микрофлору тела животных [4].
Вопросы здорового бактерионосительства до настоящего времени очень плохо освещены в специальной научной литературе, это касается как сельскохозяйственных, домашних, так и экзотических животных, в том числе рептилий. В современных условиях мегаполисов бактерионосительство у животных, как форма проявления инфекции, недостаточно изучено с позиций потенциальной опасности этого достаточно распространенного явления, как для людей, так и для других животных.
Согласно последним исследованиям установлено, что кожа рептилий чаще всего может быть контаминирована стафилококками, стрептококками, микрококкам, а также палочковидными микроорганизмами, при этом чаще всего встречаются:
-
• грамположительные : Staphylococcus epidermidis, Staphilococcus aureus, Streptococcus, Micrococcuslu-teus, Коринеморфные бактерии, Corinebacterium tuberculostearicum;
-
• грамотрицательные бактерии: Klebsiella, Enterobacter, Proteus spp., Escherichia coli [2].
Степень патогенности и вирулентности этих микроорганизмов на организм, как самих рептилий, так и теплокровных животных и человека, требует уточнения. По той причине животные, которые продаются в зоомагазинах, не подвергаются ветеринарному клиническому и лабораторному исследованию на предмет, как планового обследования, так и скрытого бактерионосительства. В связи с этим, риск инфицирования будущих владельцев такой «экзотики» от своих питомцев может быть потенциально очень высок. В первую группу риска входят дети, имеющие слабый иммунитет и больший по времени контакт с животным. По статистике, которую приводит Elliot Jacobson в свой книге «Infectious diseases and pathology of reptiles», с 1970
по 1971 год в США было зарегистрировано 280000 случаев заражения сальмонеллами у людей, причиной которых являлся контакт людей с черепахами, содержащимися в домашних коллекциях [9].
Целью нашей работы явилось проведение микробиологического мониторинга кожных покровов рептилий, содержащихся в неволе, в частности, в помещении лаборатории кафедры паразитологии и эпизоотологии КрасГАУ и в домашних коллекциях жителей города Красноярска.
Задачами исследования являлось:
-
1. Проведение бактериологического исследования поверхности кожи клинически здоровых рептилий, находящихся в условиях неволи.
-
2. Изучение морфологических, культуральных, биохимических и биологических свойств микроорганизмов, контаминирующих организм пресмыкающихся, а также проведение идентификации выделенных микроорганизмов.
-
3. Определение антибиотикочувствительности выделенных микроорганизмов.
Материалы и методы. Настоящая работа выполнена на базе кафедры эпизоотологии и паразитологии Института прикладной биотехнологии и ветеринарной медицины ФГОУ ВПО КрасГАУ в 2011 году. Работа проводилась в соответствии с планом научно-исследовательской работы и является частью комплексных исследований по эпизоотологическому мониторингу животных по заразным болезням животных в условиях Красноярского края.
Объектом исследований служили рептилии, находящиеся в условиях неволи на кафедре эпизоотологии и паразитологии КрасГАУ, а также в частных коллекциях жителей г. Красноярска:
-
1. Отряд Чешуйчатые ( Squamata ), подотряд Ящерицы ( Lacertilia ).
-
• Семейство вараны (Varanidae), род Варанус (Varanus), Капский варан ( Varanus exanthematicus ).
-
• Семейство Настоящие ящерицы (lacertidae), Подсемейство ( Lacertinae), род Лесные ящерицы ( Zootoca ), вид Живородящая ящерица ( Zootoca vivipara ).
-
2. Отряд Черепахи (Testudines), подотряд Скрытошейные черепахи (Cryptodira).
-
• Семейство сухопутные черепахи (Testudinidae), род среднеазиатские черепахи (Agrionemys), вид среднеазиатская черепаха (Agrionemys horsfieldii).
-
• Семейство Американские пресноводные черепахи (Emydidae), род Trachemys, вид Красноухая черепаха (Trachemys scripta).
Предметом для бактериологического метода исследования служили образцы смывов, взятые с кожи рептилий. Исследованию были подвергнуты животные в следующем количестве: красноухая черепаха – 2 головы, варан капский – 1 голова, среднеазиатская черепаха – 8 голов, живородящая ящерица – 1 голова. Средний возраст рептилий 5 лет.
Смывы брались специальным стерильным тупфером с транспортной средой Amies. Бактериологические исследования проводили общепринятыми методами с использованием коммерческих дифференциально-диагностических сред и тест-систем [1].
Идентификацию выделенных культур осуществляли при помощи микроскопических методов исследования и биохимического тестирования бактерий, а также с использованием официальных бактериологических определителей [7]. Выделенные культуры были изучены на чувствительность к антибиотикам разных фармакологических групп. Работа проводилась в соответствии с методикой [5] и практикой определения ан-тибиотикочувствительности микроорганизмов, разработанной компанией HIMEDIA [6] .
Результаты исследования. В процессе бактериологического исследования были выделены разнообразные микробные культуры, которые отличались по культуральным, биохимическим свойствам, а также по биологической активности. Так, культуральные свойства микроорганизмов оценивали по стандартным критериям, характерным для различных видов микроорганизмов, выросших на обычных, специальных и дифференциально-диагностических питательных средах согласно определителю Д. Берджи.
Культуры, выросшие на мясопептонном бульоне (МПБ), оценивались по интенсивности помутнения бульона, характеру поверхностной пленки, наличию осадка и пристеночного кольца. Особенности роста на мясопептонном агаре (МПА) оценивались по характерным свойствам колоний: размеру колонии, форме, цвету, характеру поверхности, рельефу и констистенции колонии. В результате было исследовано в общей сложности 12 проб. Учитывая характер роста, морфологические особенности и тинкториальные свойства, была проведена первичная дифференциация бактерий. Видовой состав микроорганизмов, выделенных с кожи пресмыкающихся животных, представлен в таблице 1.
Таблица 1
Материалы проб |
ко о о. с о о |
о. 1— q О 5 m |
В том числе |
|||||||||||
Staphilo-cocus aureus |
Staphilo-cocus epedermidis |
Streptococcus pyogenes |
Escherichia coli |
Pseudomonas aer-oginosa |
Proteus vulgaris |
|||||||||
Кол-во |
% |
Кол-во |
% |
Кол-во |
% |
Кол-во |
% |
Кол-во |
% |
Кол-во |
% |
|||
Поверхность кожи |
12 |
30 |
4 |
13 |
10 |
33 |
4 |
13 |
7 |
2 3 |
2 |
7 |
3 |
11 |
Видовой состав микрофлоры поверхности кожи пресмыкающихся
Изучались биохимические свойства выделенных микроорганизмов. Проведя анализ культуральных признаков, а также биохимических свойств, были определены основные виды бактерий с помощью определителя Берджи (табл. 2).
Таблица 2
Биохимические свойства выделенных микроорганизмов
Вид |
Ферментизация |
Утилизация цитрата |
Образование индола |
Гидролиз мочевины |
Образование Н 2 S |
РМК |
ФП |
ФА |
NO 3 |
|||
глюкт. |
лакт. |
маннит |
сахароза |
|||||||||
Esherichia Coli |
+ |
+ |
+ |
- |
- |
+ |
- |
- |
+ |
+ |
||
Proteus vulgaris |
+ |
+ |
+ |
+ |
+ |
+ |
+ |
+ |
+ |
|||
Pseudomonas aeruginosa |
+ |
|||||||||||
Staphiloc-cocos aureus |
+ |
+ |
+ |
+ |
+ |
|||||||
Staphylococcus epidermid-is |
+ |
- |
+ |
+ |
+ |
|||||||
Streptococcus piogenes |
+ |
- |
- |
По результатам исследования установлено, что выделенные микробные культуры с проверхности кожи идентифицированы следующим образом: Staphilococus aureus (13%). Staphilococcus epidermidis (33%), Streptococcus piogenes (13%), Escherichia coli встречается в 23% случаев, Pseudomonas aeruginosa (7%) Proteus в 11% (см. табл. 1).
Для изучения биологической активности, кишечной и синегнойной палочки, протея, выделенных в процессе бактериологического исследования, и подтверждения его результатов была проведена биопроба на белых мышах массой 15–20 г путем их инфицирования кратными дозами по стандарту мутности 18-часовой бульонной культурой в дозе 1 мл3 внутрюбрюшино. Каждой культурой было заражено 3 мыши. В общей сложности было заражено 36 мышей. На второй день был отмечен падеж 6 мышей, зараженных синегнойной палочкой (100%). На четвертый день 3 культуры (42%) кишечной палочки проявили патогенность – пало 9 зараженных мышей. На 6-й день пало еще 2 мыши, зараженные 4-й культурой кишечной палочки (14%). На 10-й день была отмечена гибель одной мыши, зараженной культурой Proteus vulgaris. Гибель больше двух белых мышей свидетельствовала о патогенности культур: 4 культуры Escherichia coli и 2 культуры Pseudomonas aeruginosa являются патогенными штаммами. Патогенность Proteus vulgaris не потвердилась.
В отношении стафилококковых культур были проведены тесты на плазмокоагулирующую и гемолитическую активность. В результате две культуры Staphilococus aureus (50%) и четыре Staphilococus epedermidis (40%) обладали плазмакоагулирующей активностью, образовывали сгусток при смешивании с 0,5 мл плазмы крови кролика и вызывали ß-гемолиз на 5% мясопептонном кровяном агаре, при исследовании на гемолитическую активность. В отношении культур стрептококка был проведен тест на фибринолизин. Для этого культуру микроорганизма высевали на агар с 12% цитрированной плазмы. Посевы инкубировали при температуре 37°С 24 ч. По истечении суток при осмотре только лишь в одной чашке (25%) была отмечена зона просветления вокруг колонии микроорганизма, что подтверждало действие фермента фибринолизина.
Учитывая потенциальную опасность выделенных бактерий для организма рептилий, а также для теплокровных животных, было принято решение о проведении исследования по изучению их чувствительности к антибиотикам. Результаты антибиотикочувствительности выделенных микроорганизмов представлены в таблице 3.
Таблица 3
Результаты исследования на антибиотикочувствительность.
Препарат |
Количество проб |
||
устойчивых |
малочувствительных |
чувствительных |
|
Цефазолин |
4 |
0 |
8 |
Ципрофлаксацин |
0 |
0 |
12 |
Гентамицин |
0 |
0 |
12 |
Амоксициллин |
4 |
3 |
5 |
Сумамед |
8 |
0 |
4 |
По результатам анализа было установлено, что наиболее активным препаратом, к которому оказалось чувствительным наибольшее количество бактерий, оказался антибиотик ципрофлоксацин (ДЗЗР>21 мм в 100 %) и гентамицин (ДЗЗР>15 мм в 100%). Картина эффективности остальных препаратов выглядит следующим образом: цефазолин (ДЗЗР>18 мм в 67%), амоксициллин (ДЗЗР>20 мм в 41%). Эффективность су-мамеда оказалась наиболее низкой (ДЗЗР>18 мм в 33%).
Выводы
-
1. При отсутствии клинических симптомов у рептилий обнаружение синегнойной палочки и золотистого стафилококка свидетельствует о здоровом бактерионосительстве – одной из форм инфекционного процесса, при которой наступает равновесие между микро- и макроорганизмом.
-
2. Среди потенциально опасных микроорганизмов, контаминирующих поверхность кожи рептилий, наиболее часто выделяются следующие виды бактерий: Staphilococcus epidermidis (33%), Staphilococcus aureus (13%), Streptococcus pyogenes (13%), Escherichia coli (23%), Pseudomonas aeruginosa (7%), Proteus (11%).
-
3. Высокий процент патогенных культур Staphilococcus aureus (50%), Staphilococcus epidermidis (40%), Streptococcus pyogenes (25%), доказанный путем проведения тестов, и Pseudomonas aeruginosa (100%), Escherichia coli (56%), выявленный методом биологической пробы на лабораторных животных, свидетельствует о том, что теплокровные животные могут быть чувствительны к инфицированию.
-
4. Наиболее эффективными препаратами выбора для лечения у рептилий заболеваний кожи являются гентамицин (группа аминогликозидов) и ципрофлоксацин (группа фторхинолов). Наименее эффективным препаратом выбора является сумамед (макролиды).