Риски возникновения микотоксикозов рыб в условиях аквакультуры (обзор)

Риски возникновения микотоксикозов рыб в условиях аквакультуры (обзор)

Автор: Кононенко Г.П., Онищенко Д.А., Устюжанина М.И.

Журнал: Сельскохозяйственная биология @agrobiology

Рубрика: Обзоры, проблемы

Статья в выпуске: 2 т.56, 2021 года.

Бесплатный доступ

Современная аквакультура рыб относится к масштабным и стремительно развивающимся отраслям мирового производства (FAO, 2018). С целью повышения качества выращиваемой продукции активно ведется поиск эффективных способов контроля безопасности искусственных кормов (J. Bostock с соавт., 2010). По результатам мониторинговых проектов, выполненных в Аргентине, Бразилии, США, Китае, Корее и странах Центральной Европы (C. Pietsch с соавт., 2013; B.T.C. Barbosa с соавт., 2013; M. Greco с соавт., 2015; L. Pinotti с соавт., 2016), ситуация по загрязненности комбикормов для рыб микотоксинами признана чрезвычайно серьезной как по распространенности и содержанию, так и по сочетанной встречаемости (I. Matejova с соавт., 2017; C. Pietsch, 2019). В российском рыбоводстве, которое в последние годы стало многопрофильным направлением сельского хозяйства, специалистами академической и вузовской науки, а также отраслевых НИИ разработаны рецептуры комбикормов, учитывающие возрастные и видовые особенности рыб (Ю.А. Желтов, 2006; В.Я. Скляров, 2008; И.Н. Остроумова, 2012; Гамыгин Е.А. с соавт., 2013), и подробно рассмотрена проблема их микробной контаминации (И.В. Бурлаченко, 2008). В Российской Федерации для комбикормовой продукции введены обязательные требования на соответствие показателям качества и безопасности (ГОСТ 10385-2014) и создана современная методическая база для проведения микотоксикологического контроля (ГОСТ 31653-2012, ГОСТ 31691-2012, ГОСТ 32587-2013, ГОСТ 34108-2017, ГОСТ Р 51116-2017). Цель настоящего обзора - актуализация сведений о контаминации микотоксинами сырья для производства аквакормов, обобщение мировых данных по характеру острого действия наиболее вероятных контаминантов, а также анализ клинических признаков, патолого-анатомических и биохимических изменений, сопровождающих острые и хронические микотоксикозы рыб. За последние годы получены убедительные подтверждения того, что в группу наиболее распространенных контаминантов отечественных сырьевых ингредиентов (пшеничной, ячменной и кукурузной муки, отрубей, подсолнечного жмыха и шрота) входят Т-2 токсин, дезоксиниваленол, фумонизины группы В и зеараленон, относящиеся к фузариотоксинам, а также альтернариол, охратоксин А, цитринин, циклопиазоновая кислота, микофеноловая кислота и эмодин (Г.П. Кононенко с соавт., 2018, 2019). Анализ массива мировых данных по экспериментальным микотоксикозам карпа обыкновенного ( Cyprinus carpio ), канального сома ( Ictalurus punctatus ), амура белого ( Ctenopharyngodon idella ), нильской тиляпии ( Oreochromis niloticus ), радужной форели ( Oncorhynchus mykiss ), атлантического лосося ( Salmo salar ) разных возрастных групп показывает, что фузариотоксины следует причислить к ключевым факторам риска и направить усилия на определение их безопасных пороговых значений. Интоксикации, вызванные охратоксином А, остаются недостаточно изученными, а ситуация в отношении остальных возможных контаминантов комбикормового сырья - неясной. Обоснованные предложения по регламентации количества микотоксинов в кормах для рыб приведены лишь по Т-2 токсину для карпа обыкновенного (В.Т. Галаш, 1988), дезоксиниваленолу для белого амура (C. Huang с соавт., 2018, 2019, 2020) и атлантического лосося (A. Bernhoft с соавт., 2018), фумонизину B1 для канального сома (M.N. Li с соавт., 1994, S. Lumlertdacha с соавт., 1995). Данные по степени сохранения этих микотоксинов в тканях рыб ограничены (C. Pietsch с соавт., 2014, 2015; A. Ananter с соавт., 2016), поэтому регламенты по их остаточным количествам в продукции до сих пор не приняты. Однако поиск новых подходов к корректной оценке последствий негативного действия микотоксинов и трансмиссии в рыбную продукцию продолжается.

Еще

Аквакультура, микотоксикозы рыб, кормовое сырье, комбикорма, микотоксины

Короткий адрес: https://sciup.org/142229488

IDR: 142229488   |   DOI: 10.15389/agrobiology.2021.2.261rus

Список литературы Риски возникновения микотоксикозов рыб в условиях аквакультуры (обзор)

  • The state of world fisheries and aquaculture. Food and Agriculture Organization of the United Nations, Rome, 2018.
  • Bostock J., McAndrew B., Richards R., Jauncey K., Telfer T., Lorenzen K., Little D.C., Ross L., Handisyde N., Gatward I., Corner R. Aquaculture: global status and trends. Proceedings of the Royal Society B: Biological Sciences, 2010, 365(1554): 2897-2912 (doi: 10.1098/rstb.2010.0170).
  • Wolf H., Jackson E.W. Hepatomas in rainbow trout: descriptive and experimental epidemiology. Science, 1963, 142(3593): 676-678 (doi: 10.1126/science.142.3593.676-a).
  • Hintikka E.L. Trichothecene poisoning on fish. In: Fusarium: mycotoxins, taxonomy and pathogenicity /J. Chelkowski (ed.). Elsevier Science Publishers B.V., Amsterdam, 1989: 131-138.
  • Vanyi A., Buza L., Szeka A. Fusariotoxicosis. IV. The effect of F-2 toxin (zearalenone) on the spermiogenesis of the carp. Hungarian Veterinary Journal, 1974, 29: 457-461.
  • Abdelhamid A.M. Effect of Sterigmatocystin contaminated diets on fish performance. Archives of Animal Nutrition, 1988, 38(9): 833-846 (doi: 10.1080/17450398809430911).
  • Barbosa B.T.S., Pereyra C.M., Soleiro C.A., Dias E.O., Oliveira A.A., Keller K.A., Silva P.P.O., Cavaglieri L.R., Rosa C.A.R. Mycobiota and mycotoxins present in finished fish feeds from farms in the Rio de Janeiro State, Brazil. International Aquatic Research, 2013, 5(1): 3 (doi: 10.1186/2008-6970-5-3).
  • Greco M., Pardo A., Pose G. Mycotoxigenic fungi and natural co-occurrence of mycotoxins in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) feeds. Toxins, 2015, 7(11): 4595-4609 (doi: 10.3390/tox-ins7114595).
  • Pinotti L., Ottoboni M., Giromini C., Dell'Orto V., Cheli F. Mycotoxin contamination in the EU feed supply chain: a focus on cereal byproducts. Toxins, 2016, 8(2): 45 (doi: 10.3390/tox-ins8020045).
  • Pietsch C., Kersten S., Burkhardt-Holm P., Valenta H., Danicke S. Occurrence of deoxynivalenol and zearalenone in commercial fish feed: an initial study. Toxins, 2013, 5(1): 184-192 (doi: 10.3390/toxins5010184).
  • Matejova I., Svobodova Z., Vakula J., Mares J., Modra H. Impact of mycotoxins on aquaculture fish species: a review. Journal of the World Aquaculture Society, 2017, 48(2): 186-200 (doi: 10.1111/jwas.12371).
  • Pietsch C. Risk assessment for mycotoxin contamination in fish feeds in Europe. Mycotoxin Research, 2020, 36(1): 41-62 (doi: 10.1007/s12550-019-00368-6).
  • Стратегия развития аквакультуры в Российской Федерации на период до 2020 года (утв. Минсельхозом РФ 10.09.2007. Режим доступа: https://normativ.kontur.ru/document7mo-duleId=1&documentId=151849. Без даты.
  • Желтов Ю.А. Рецепты комбикормов для выращивания рыб разных видов и возрастов в промышленном рыбоводстве. Киев, 2006.
  • Скляров В.Я. Корма и кормление рыб в аквакультуре. М., 2008.
  • Остроумова И.Н. Биологические основы кормления рыб. СПб, 2012.
  • Гамыгин Е.А., Багров А.М., Бородин А.Л., Ридигер А.В. Расширение сырьевой базы кормопроизводства для рыб. Рыбное хозяйство, 2013, 4: 87-88.
  • Бурлаченко И.В. Актуальные вопросы безопасности комбикормов в аквакультуре рыб. М., 2008.
  • Смирнова И.Р., Михалев А.В., Сатюкова Л.П., Борисова В.С. Ветеринарно-санитарная характеристика основных видов кормов для прудовых рыб. Ветеринария, 2009, 5: 30-36.
  • Наумова А.М., Розумная Л.А., Наумова А.Ю., Логинов Л.С. Повышение качества рыбных комбикормов: эколого-технологические и ветеринарно-санитарные аспекты. Российский журнал «Проблемы ветеринарной санитарии, гигиены и экологии», 2019, 4(32): 474-481.
  • Кононенко Г.П., Буркин А.А. Фузариотоксины в зерновых кормах. Ветеринарная патология, 2002, 2: 128-132.
  • Кононенко Г.П., Буркин А.А. Контаминация фузариотоксинами зерна кукурузы и риса на основных регионах возделывания культур в Российской Федерации. Сельскохозяйственная биология, 2008, 5: 88-91.
  • Кононенко Г.П., Буркин А.А. О контаминации фузариотоксинами зерна злаков, используемых на кормовые цели. Сельскохозяйственная биология, 2009, 4: 81-88.
  • Kononenko G.P., Burkin A.A., Zotova E.V., Ustyuzhanina M.I., Smirnov A.M. Features of wheat and barley grain contamination with fusariotoxins. Russian Agricultural Sciences, 2018, 44(2): 137141 (doi: 10.3103/S106836741802009X).
  • Кононенко Г.П., Буркин А.А., Зотова Е.В., Смирнов А.М. Микотоксикологическое исследование кормового зерна кукурузы (1998-2018 гг.). Российская сельскохозяйственная наука, 2019, (3): 28-31 (doi: 10.31857/S2500-26272019328-31).
  • Кононенко Г.П., Буркин А.А., Зотова Е.В., Соболева Н.А. Охратоксин А: исследование контаминации зерна. Прикладная биохимия и микробиология, 2000, 36(2): 209-213.
  • Kononenko G.P., Burkin A.A. A survey on the occurrence of citrinin in feeds and their ingredients in Russia. Mycotoxin Research, 2008, 24(1): 3-6 (doi: 10.1007/BF02985263).
  • Kononenko G.P., Burkin A.A. Peculiarities of feed contamination with citrinin and ochratoxin A. Agricultural Sciences, 2013, 4(1): 34-38 (doi: 10.4236/as.2013.41006).
  • Кононенко Г.П., Устюжанина М.И., Буркин А.А. Проблема безопасного использования подсолнечника (Helianthus annuus L.) для пищевых и кормовых целей. Сельскохозяйственная биология, 2018, 53(3); 485-498 (doi: 10.15389/agrobiology.2018.3.485rus).
  • Santacroce M.P., Conversano M.C., Casalino E., Lai O., Zizzadoro C., Centoducati G., Crescenzo G. Aflatoxins in aquatic species: metabolism, toxicity and perspectives. Reviews in Fish Biology and Fisheries, 2008, 18(1): 99-130 (doi: 10.1007/s11160-007-9064-8).
  • Галаш В.Т. Токсико-биологическое действие трихотеценовых микотоксинов на карпа и предельно допустимая концентрация Т-2-токсина в карповых комбикормах. Автореф. канд. дис. М., 1988.
  • Sahoo P.K., Mukherjee S.C., Mohanty S., Dey S., Nayak S.K. A preliminary study on acute citrinin toxicity in rohu (Labeo rohita) fingerlings. Indian Journal of Comparative Microbiology, Immunology and Infection Diseases, 1999, 20(1): 62-64.
  • Jantrarotai, W., Lovell R.T. Acute and subchronic toxicity of cyclopiazonic acid to channel catfish. Journal of Aquatic Animal Health, 1990, 2(4): 255-260 (doi: 10.1577/1548-8667(1990)002-0255:AAST0C-2.3.C0;2).
  • Doster R.C., Sinnhuber R.O., Wales J.H. Acute intraperitoneal toxicity of ochratoxins A and B in rainbow trout (Salmo gairdneri). Food and Cosmetic Toxicology, 1972, 10(1): 85-92 (doi: 10.1016/S0015-6264(72)80049-X).
  • Pelyhe C., Kövesti B., Zandoki E., Kovacs B., Szabo-Fodor J., Mezes M., Balogh K. Effect of 4-week feeding of deoxynivalenol- or T-2-toxin-contaminated diet on lipid peroxidation and glutathione redox system in the hepatopancreas of common carp (Cyprinus carpio L.). Mycotoxin Research, 2016, 32: 77-83 (doi: 10.1007/s12550-016-0242-1).
  • Matejova I., Faldyna M., Modra H., Blahova J., Palikova M., Markova Z., Franc A., Vicenova M., Vojtek L., Bartonkova J., Sehonova P., Hostovsky M., Svobodova Z. Effect of T-2 toxin-contaminated diet on common carp (Cyprinus carpio L.). Fish and Shellfish Immunology, 2017, 60: 458-465 (doi: 10.1016/j.fsi.2016.11.032).
  • Скляров В.Я., Студенцова Н.А., Селиванова В.А., Жердева Е.П. Влияние микотоксинов в кормах на рост и физиологическое состояние карпа. Известия ВУЗов. Пищевая технология, 1998, (5-6): 16-18.
  • Pepeljnjak S., Petrinec Z., Kovaci S., Segvic M. Screening toxicity study in young carp (Cyprinus carpio L.) on feed amended with fumonisin B1. Mycopathologia, 2002, 156(2): 139-145 (doi: 10.1023/a: 1022944927493).
  • Petrinec Z., Pepeljnjak S., Kovaci S., Krznaric A. Fumonisin B1 causes multiple lesions in common carp (Cyprinus carpio). Deutsche Tierärztliche Wochenschrift, 2004, 111(9): 358-363.
  • Manning B.B., Li M.H., Robinson E.H., Gaunt P.S., Camus A.C., Rottinghaus G.E. Response of catfish to diets containing T-2 toxin. Journal of Aquatic Animal Health, 2003, 15(3): 230-239 (doi: 10.1577/H03-019).
  • Manning B. Микотоксикозы в рыбоводстве. В кн.: Микотоксины и микотоксикозы /Под ред. Д. Диаза. М., 2006: 275-292.
  • Lumlertdacha S., Lovell R.T., Shelby R.A., Lenz S.D., Kemppainen B.W. Growth, hematology, and histopathology of channel catfish, Ictalurus punctatus, fed toxins from Fusarium moniliforme. Aquaculture, 1995, 130(2-3): 201-218 (doi: 10.1016/0044-8486(94)00219-E).
  • Li M.H., Raverty S.A., Robinson E.H. Effects of dietary mycotoxins produced by the mould Fusarium moniliforme on channel catfish Ictalurus punctatus. Journal of the World Aquaculure. Society, 1994, 25(4): 512-516 (doi: 10.1111/j.1749-7345.1994.tb00820.x).
  • Lumlertdacha S., Lovell R.T. Fumonisin-contaminated dietary corn reduced survival and antibody production by channel catfish challenged with Edwardsiella ictaluri. Journal of Aquatic Animal Health, 1995, 7(1): 1-8 (doi: 10.1577/1548-8667(1995)007-0001:FCDCRS-2.3.C0;2).
  • Manning B.B., Ulloa R.M., Li M.H., Robinson E.H., Rottinghaus G.E. Ochratoxin A fed to channel catfish (Ictalurus pinctatus) causes reduced growth and lesions of hepatopancreatic tissue. Aquaculture, 2003, 219(1-4): 739-750 (doi: 10.1016/S0044-8486(03)00033-4).
  • Tuan N.A., Manning B.B., Lovell R.T., Rottinghaus G.E. Responses of Nile tilapia (Oreochromis niloticus) fed diets containing different concentrations of moniliformin and fumonisin B1. Aquaculture, 2003, 217(1-4): 515-528 (doi: 10.1016/S0044-8486(02)00268-5).
  • Diab A.M., Salem R.M., El-Keredy M.S., Abeer E.-K.M.S., Ali G.I.E., El-Habashi N. Experimental ochratoxicosis A in Nile tilapia and its amelioration by some feed additives. International Journal of Veterinary Science and Medicine, 2018, 6(2): 149-158 (doi: 10.1016/j.ijvsm.2018.09.004).
  • Poston H.A., Coffin J.L., Combs G.F. Jr. Biological effects of dietary T-2 toxin on rainbow trout, Salmo gairdneri. Aquatic Toxicology, 1982, 2(2): 79-88 (doi: 10.1016/0166-445X(82)90007-8).
  • Woodward B., Young L.G., Lun A.K. Vomitoxin in diets of rainbow trout (Salmo gairdneri). Aquaculture, 1983, 35: 93-101 (doi: 10.1016/0044-8486(83)90077-7).
  • Hooft J.M., Elmor A.E.H.I., Encarna;ro P., Bureau D.P. Rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) is extremely sensitive to the feed-borne Fusarium mycotoxin deoxynivalenol (DON). Aquaculture, 2011, 311(1-4): 224-232 (doi: 10.1016/j.aquaculture.2010.11.049).
  • Hooft J.M., Ferreira C., Lumsden J.S., Sulyok M., Krska R., Bureau D.P. The effects of naturally occurring or purified deoxynivalenol (DON) on growth performance, nutrient utilization and histopathology of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Aquaculture, 2019, 505: 319-332 (doi: 10.1016/j.aquaculture.2019.02.032).
  • Gonjalves R.A., Navarro-Guillén C., Gilannejad N., Dias J., Schatzmayr D., Bichl G., Cza-bany T., Moyano F.J., Rema P., Yúfera M., Mackenzie S., Martínez-Rodríguez G. Impact of deoxynivalenol on rainbow trout: Growth performance, digestibility, key gene expression regulation and metabolism. Aquaculture, 2018, 490: 362-372 (doi: 10.1016/j.aquaculture.2018.03.001).
  • Gonjalves R.A., Menanteau-Ledouble S., Scholler M., Eder A., Schmidt-Posthaus H., Mackenzie S., El-Matbouli M. Effects of deoxynivalenol exposure time and contamination levels on rainbow trout. Journal of the World Aquaculture Society, 2019, 50(1): 137-154 (doi: 10.1111/jwas.12542).
  • Ananter A., Manyes L., Meca G., Ferrer E., Luciano F.B., Pimpao C.T., Font G. Mycotoxins and their consequences in aquaculture: A review. Aquaculture, 2016, 451: 1-10 (doi: 10.1016/j.aq-uaculture.2015.08.022).
  • Moldal T., Bernhoft A., Rosenlund G., Kaldhusdal M., Koppang E. Dietary deoxynivalenol (DON) may impair the epithelial barrier and modulate the cytokine signaling in the intestine of atlantic salmon (Salmo salar). Toxins, 2018, 10(9): 376 (doi: 10.3390/toxins10090376).
  • Bernhoft A., Hegásen H.R., Rosenlund G., Moldal T., Grove S., Berntssen M.H.G., Thore-sen S.I., Alexander J. Effects of dietary deoxynivalenol or ochratoxin A on performance and selected health indices in Atlantic salmon (Salmo salar). Food and Chemical Toxicology, 2018, 121: 374-386 (doi: 10.1016/j.fct.2018.08.079).
  • Kravchenko L.V., Galash V.T., Avren'eva L.T., Kranauskas A.E. On the sensitivity of carp, Cy-prinus carpio, to mycotoxin T-2. Journal of Ichthyology, 1989, 29: 156-160.
  • Balogh K., Heincinger M., Fodor J., Mézes M. Effects of long term feeding of T-2 and HT-2 toxin contaminated diet on the glutathione redox status and lipid peroxidation processes in common carp (Cyprinus carpio L.). Acta Biologica Szegediensis, 2009, 53(Suppl. 1): 23-27.
  • Kovacic S., Pepeljnjak S., Petrinec Z., Klaric M.S. Fumonosin B1 neurotoxicity in young carp (Cyprinus carpio L.). Archives of Industrial Hygiene and Toxicology, 2009, 60(4): 419-426 (doi: 10.2478/10004-1254-60-2009-1974).
  • Manning B.B., Terhune J.S., Li M.H., Robinson E.H., Wise D.J., Rottinghaus G.E. Exposure to feedborne mycotoxins T-2 toxin and ochratoxin A causes increased mortality of channel catfish challenged with Edwardsiella ictaluri. Journal of Aquatic Animal Health, 2005, 17(2): 147-152 (doi: 10.1577/H03-063.1).
  • Manning B.B., Abbas H.A., Wise D.J., Greenway T. The effect of feeding diets containing deox-ynivalenol contaminated corn on channel catfish (Ictalurus punctatus) challenged with Edwardsi-ella ictaluri. Aquaculture Research, 2014, 45(11): 1782-1786 (doi: 10.1111/are.12123).
  • Brown D.W., McCoy C.P., Rottinghaus G.E. Experimental feeding of Fusarium moniliforme culture material containing fumonosin B1 to channel catfish, Ictalurus punctatus. Journal of Veterinary Diagnostic Investigation, 1994, 6(1): 123-124 (doi: 10.1177/104063879400600128).
  • Goel S., Lenz S.D., Lumlertdacha S., Lovell R.T., Shelby R.A., Li M., Riley R.T., Kemp-painen B.W. Sphingolipid levels in catfish consuming Fusarium moniliforme corn culture material containing fumonisins. Aquatic Toxicology, 1994, 30(4): 285-294 (doi: 10.1016/0166-445X(94)00050-6).
  • Matejova I., Modra H., Blahova J., Franc A., Fictum P., Sevcikova M., Svobodova Z. The effect of mycotoxin deoxynivalenol on haematological and biochemical indicators and histopathological changes in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). BioMed Research International, 2014: 310680 (doi: 10.1155/2014/310680).
  • Sisperová E., Modrá H., Ziková A., Kloas W., Blahová J., Matejová I., Zivná D., Svobodová Z. The effect of mycotoxin deoxynivalenol (DON) on the oxidative stress markers in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss, Walbaum 1792). Journal of Applied Ichthyology, 2015, 31(5): 855-861 (doi: 10.1111/jai. 12809).
  • Pietsch C., Kersten S., Valenta H., Danicke S., Schulz C., Kloas W., Burkhardt-Holm P. In vivo effects of deoxynivalenol (DON) on innate immune responses of carp (Cyprinus carpio L.). Food and Chemical Toxicology, 2014, 68: 44-52 (doi: 10.1016/j.fct.2014.03.012).
  • Pietsch C., Schulz C., Rovira P., Kloas W., Burkhardt-Holm P. Organ damage and hepatic lipids accumulation in carp (Cyprinus carpio L.) after feed-borne exposure to the mycotoxin, deoxynivalenol (DON). Toxins, 2014, 6: 756-778 (doi: 10.3390/toxins6020756).
  • Pietsch C., Burkhardt-Holm P. Feed-borne exposure to deoxynivalenol leads to acute and chronic effects on liver enzymes and histology in carp. World Mycotoxin Journal, 2015, 8(5): 619-627 (doi: 10.3920/WMJ2015.1879).
  • Pietsch C., Katzenback B.A., Garcia-Garcia E., Schulz C., Belosevic M., Burkhardt-Holm P. Acute and subchronic effects on immune responses of carp (Cyprinus carpio L.) after exposure to deoxynivalenol (DON) in feed. Mycotoxin Research, 2015, 31: 151-164 (doi: 10.1007/s12550-015-0226-6).
  • Pietsch C., Kersten S., Valenta H., Dänicke S., Schulz C., Burkhardt-Holm P., Junge R. Effects of dietary exposure to zearalenone (ZEN) on carp (Cyprinus carpio L.). Toxicon, 2015, 7(9): 34653480 (doi: 10.3390/toxins7093465).
  • Pietsch C., Junge R. Physiological responses of carp (Cyprinus carpio L.) to dietary exposure to zearalenone (ZEN). Comparative Biochemistry and Physiology Part C: Toxicology & Pharmacology, 2016, 188: 52-59 (doi: 10.1016/j.cbpc.2016.06.004).
  • Pietsch C., Junge R., Burkhardt-Holm P. Immunomodulation by zearalenone in carp (Cyprinus carpio L.). Biomed Research International, 2015, 2015: 420702 (doi: 10.1155/2015/420702).
  • Pietsch C. Zearalenone (ZEN) and its influence on regulation of gene expression in carp (Cyprinus carpio L.) liver tissue. Toxins, 2017, 9(9): 283 (doi: 10.3390/toxins9090283).
  • Huang C., Wu P., Jiang W.-D., Liu Y., Zeng Y.-Y., Jiang J., Kuang S.Y., Tang L., Zhang Y.A., Zhou X.-Q., Feng L. Deoxynivalenol decreased the growth performance and impaired intestinal physical barrier in juvenile grass carp (Ctenopharyngodon idella). Fish and Shellfish Immunology, 2018, 80: 376-391 (doi: 10.1016/j.fsi.2018.06.013). '
  • Huang C., Feng L., Jiang W.-D., Wu P., Liu Y., Zeng Y.-Y., Jiang J., Kuang S.Y., Tang L., Zhou X.-Q. Deoxynivalenol decreased intestinal immune function related to NF-kB and TOR signalling in juvenile grass carp (Ctenopharyngodon idella). Fish and Shellfish Immunology, 2019, 84: 470-484 (doi: 10.1016/j.fsi.2018.10.039).
  • Huang C., Feng L., Liu X.-A., Jiang W.-D., Wu P., Liu Y., Jiang J., Kuang S.-Y., Tang L., Zhou X.-Q. The toxic effects and potential mechanisms of deoxynivalenol on the structural integrity of fish gill: Oxidative damage, apoptosis and tight junctions disruption. Toxicon, 2020, 174: 32-42 (doi: 10.1016/j.toxicon.2019.12.151).
  • Wang Y.-L., Zhou X.-Q., Jiang W.-D., Wu P., Liu Y., Jiang J., Wang S.-W., Kuang S.-Y., Tang L., Feng L. Effects of dietary zearalenone on oxidative stress, cell apoptosis, and tight junction in the intestine of juvenile grass carp (Ctenopharyngodon idella). Toxins, 2019, 11(6): 333 (doi: 10.3390/toxins11060333).
  • Sanden M., Jergensen S., Hemre G.-I., 0rnsrud R., Sissener N.H. Zebrafish (Danio rerio) as a model for investigating dietary toxic effects of deoxynivalenol contamination in aquaculture feeds. Food and Chemical Toxicology, 2012, 50(12): 4441-4448 (doi: 10.1016/j.fct.2012.08.042).
  • Bakos K., Kovacs R., Staszny A., Sipos D.K., Urbanyi B., Müller F., Csenki Z., Kovacs B. Developmental toxicity and estrogenic potency of zearalenone in zebrafish (Danio rerio). Aquatic Toxicology, 2013, 136-137: 13-21 (doi: 10.1016/j.aquatox.2013.03.004).
  • Scwartz P., Bucheli T.D., Wettstein F.E., Burkhardt-Holm P. Life-cycle exposure to the estro-genic mycotoxin zearalenone affects zebrafish (Danio rerio) development and reproduction. Environmental Toxicology, 2013, 28(5): 276-289 (doi: 10.1002/tox.20718).
  • Modra H., Sisperova E., Blahova J., Enevova V., Fictum P., Franc A., Mares J., Svobodova Z. Elevated concentrations of T-2 toxin cause oxidative stress in the rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Aquaculture Nutrition, 2017, 24(2): 842-849 (doi: 10.1111/anu.12613).
  • Matejova I., Vicenova M., Vojtek L., Kudlackova H., Nedbalcova K., Faldyna M., Sisperova E., Modra H., Svobodova Z. Effect of the mycotoxin deoxynivalenol on the immune responses of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Veterinarni Medicina, 2015, 60(9): 515-521 (doi: 10.17221/8443-VETMED).
  • Wozny M., Brzuzan P., Wolinska L., Gora M., Luczynski M.K. Differential gene expression in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) liver and ovary after exposure to zearalenone. Comparative Biochemistry and Physiology Part C: Toxicology & Pharmacology, 2012, 156(3-4): 221-228 (doi: 10.1016/j.cbpc.2012.05.005).
  • Wozny M., Brzuzan P., Gusiatin M., Jakimiuk E., Dobosz S., Kuzminski H. Influence of zearalenone on selected biochemical parameters in juvenile rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Polish Journal of Veterinary Sciences, 2012, 15(2): 221-225 (doi: 10.2478/v10181-011-0137-1).
  • El-Sayed Y.S., Khalil R.H., Saad T.T. Acute toxicity of ochratoxin A in marine water-reared sea bass (Dicentrarchus labrax L.). Chemosphere, 2009, 75(7): 878-882 (doi: 10.1016/j.chemo-sphere.2009.01.049).
  • Gbore F.A., Adewole A.M., Oginni O., Oguntolu M.F., Bada A.M., Akele O. Growth performance, haematology and serum biochemistry of African catfish (Clarias gariepinus) fingerlings fed graded levels of dietary fumonisin B1. Mycotoxin Research, 2010, 26(4): 221-227 (doi: 10.1007/s12550-010-0059-2).
  • Adeyemo B.T., Oloyede T.L., Ogeh A.V., Orkuma C.J. Growth performance and serum lipids profile of Clarias gariepinus catfish following experimental dietary exposure to fumonosin B1. Open Journal of Veterinary Medicine, 2016, 6(8): 127-138 (doi: 10.4236/ojvm.2016.68017).
  • Tola S., Bureau D.P., Hooft J.M., Beamish F.W.H., Sulyok M., Krska R., Encarna?ao P., Pet-kam R. Effects of wheat naturally contaminated with Fusarium mycotoxins on growth performance and selected health indices of red tilapia (Oreochromis niloticus x O. mossambicus). Toxins, 2015, 7(6): 1929-1944 (doi: 10.3390/toxins7061929).
  • Yildirim M., Manning B.B., Lovell R.T., Grizzle J.M., Rottinghaus G.E. Toxicity on monilifor-min and fumonisin B1 fed singly and in combination in diets for young channel catfish Ictalurus punctatus. Journal of the World Aquaculture Society, 2000, 31(4): 599-608 (doi: 10.1111/j.1749-7345.2000.tb00909.x).
  • Nguyen A.T., Manning B.B., Lovel R.T., Rottinghaus G.E. Responces of Nile tilapia (Oreo-chromis niloticus) fed diets containing different concentrations of moniliformin or fumonisin Bi. Aquaculture, 2003, 217(1-4): 515-528 (doi: 10.1016/S0044-8486(02)00268-5).
  • Асраркулова А.С., Булушова Н.В. Пшеничный глютен и его гидролизаты. Возможные направления практического использования (обзор). Биотехнология, 2018, 34(4): 6-17.
  • Zachariasova M., Dzuman Z., Veprikova Z., Hajkova K., Jiru M., Vaclavikova M., Pospich-alova M., Florian M., Hajslova J. Occurrence of multiple mycotoxins in European feedingstuffs, assessment of dietary intake by farm animals. Animal Feed Science and Technology, 2014, 193: 124-140 (doi: 10.1016/j.anifeedsci.2014.02.007).
  • Косарева Т.В., Васильев А.А., Гоголкин А.А. Использование зернового сорго в индустриальном рыбоводстве. Вестник Саратовского Госуниверситета им. Н.И. Вавилова, 2014, 2: 15-18.
  • Правдин В., Ушакова Н., Пономарев С., Кузнецов Ф. Льняной жмых для карповых и осетровых рыб. Комбикорма, 2009, 8: 58-59.
  • Сорокина Н.В., Лозовский А.Р. Влияние комбикорма с тыквенным жмыхом на рост и физиологическое состояние стерляди. Естественные науки, 2010, 4(33): 74-79.
  • Кононенко Г.П., Буркин А.А. Вторичные метаболиты микромицетов в растениях семейства Fabaceae рода Trifolium. Известия РАН. Серия биологическая, 2018, 2: 150-157 (doi: 10.7868/S0002332918020030).
  • Буркин А.А., Кононенко Г.П., Георгиев А.А., Георгиева М.Л. Токсичные метаболиты микромицетов в бурых водорослях семейств Fucaceae и Laminariaceae из Белого моря. Биология моря, 2021, 47(1): 40-44 (doi: 10.31857/S0134347521010022).
  • Пономорев С.В., Гамыгин Е.А., Канидьев А.Н. Физиологические основы создания полноценных комбинированных кормов с учетом этапности развития организма лососевых и осетровых рыб. Вестник АГТУ. Серия: Рыбное хозяйство, 2010, 1: 132-139.
  • Пирязева Е.А. Распространенность грибов рода Penicillium Link в сырье для производства комбикормов. Российский журнал «Проблемы ветеринарной санитарии, гигиены и экологии», 2018, 4(28): 23-26.
  • Стратегия развития аквакультуры в Российской Федерации на период до 2030 года. Проект. Режим доступа: http://fish.gov.ru/files/documents/files/proekt-strategiya-2030.pdf. Без даты.
  • Fuchs R., Appelgren L.E., Hult K. Distribution of 14C-ochratoxin A in the rainbow trout (Salmo gairdneri). Acta Pharmacologica et Toxicologica (Copenh.), 1986, 59(3): 220-227 (doi: 10.1111/j.1600-0773.1986.tb00158.x).
  • Guan S., He J., Young J.C., Zhu H., Li X.-Z., Ji C., Zhou T. Transformation of trichothecene mycotoxins by microorganisms from fish digesta. Aquaculture, 2009, 290: 290-295 (doi: 10.1016/j.aquaculture.2009.02.037).
  • Bernhoft A., Hegâsen H.R., Rosenlund G., Ivanova L., Berntssen M.H.G., Alexander J., Sundstel Eriksen G., Kruse Fœste C. Tissue distribution and elimination of deoxynivalenol and ochratoxin A in dietary exposed Atlantic salmon (Salmo salar). Food Additives and Contaminants. Part A, 2017, 34(7): 1211-1224 (doi: 10.1080/19440049.2017.1321149).
  • ТР ЕАЭС 040/2016. Технический регламент Евразийского экономического союза (ЕАЭС) «О безопасности рыбы и рыбной продукции»: принят решением Совета Евразийской экономической комиссии от 18.10.2016. № 162. Режим доступа: http://docs.cntd.ru/doc-ument/420394425. Без даты.
Еще
Статья обзорная
QR-код для установки приложения SciUp Наведите камеру и скачайте бесплатное приложение SciUp