Роль грибов в этиологии массовых кожных поражений у соболя Martes zibellina L. 1758 в Томской области

Роль грибов в этиологии массовых кожных поражений у соболя Martes zibellina L. 1758 в Томской области

Автор: Овчинников Р.С., Жигалин А.В., Гайнуллина А.Г., Южаков А.Г., Тютеньков О.Ю., Савинов В.А., Москвитина Н.С., Капустин А.В., Лаишевцев А.И., Гулюкин А.М.

Журнал: Сельскохозяйственная биология @agrobiology

Рубрика: Соболь - природная популяция и разведение

Статья в выпуске: 4 т.58, 2023 года.

Бесплатный доступ

Массовые кожные заболевания у промысловых соболей (Martes zibellina L. 1758) на территории Сибири известны с XVIII века, однако их этиология до сих пор недостаточно изучена. Заболевание поражает до 62 % промысловых соболей, вызывая повреждения кожного покрова, и наносит серьезный экономический ущерб. В настоящей работе впервые установлено, что в этиологии кожного заболевания соболей участвуют кератинофильные грибы-дерматофиты различных видов, часть из которых впервые обнаружена на территории Российской Федерации. Целью работы было выявление и идентификация клинически значимых микроскопических грибов у соболей с проявлениями кожных заболеваний. Патологический материал (волосы, корочки), отбирали с пораженных участков шкур диких соболей ( Martes zibellina ), добытых при пушном промысле сезона 2018-2019 годов в разных районах Томской области. Всего было изучено 28 образцов патологического материала. Микологическое исследование включало тест с лампой Вуда, прямую микроскопию патологического материала, посев на микологические среды с последующей идентификацией выделенных культур грибов. Посев проводили на дифференциально-диагностическую среду для дерматофитов ДТМ-Эксперт (ФНЦ ВИЭВ РАН, Россия) и на среду Сабуро с хлорамфениколом («HiMedia Laboratories Pvt. Ltd.», Индия). Посевы инкубировали в аэробных условиях при 26-28 °С, срок инкубирования - до 21 сут. Для изучения культурально-морфологических признаков делали пересев культур уколом на агар Сабуро в чашках Петри, инкубировали 10-14 сут. Для молекулярно-генетической идентификации отбирали изолированные колонии грибов, выращенных на среде Сабуро в течение 10 сут при 26-28 °С. ДНК выделяли с помощью набора GeneJET Plant Genomic DNA Purification Kit («Thermo Fisher Scientific», США) в соответствии с инструкцией изготовителя. Полученную ДНК использовали для проведения полимеразной цепной реакции (ПЦР). Секвенировали участки внутреннего транскрибируемого спейсера гена рибосомальной РНК (ITS). Филогенетический анализ полученных нуклеотидных последовательностей проводили с помощью приложения SeqMan (DNASTAR Lasergene v.7.1.0, https://www.dnastar.com/software/lasergene/). Выравнивание последовательностей с имеющимися в базе данных GenBank выполняли с использованием пакета программ Standard Nucleotide BLAST (http://www.ncbi.nlm.nih.gov/BLAST/). Нуклеотидные последовательности, представляющие особый интерес, депонированы в базе данных GenBank NCBI. При осмотре шкур соболей были обнаружены кожные поражения, которые локализовались в основном в области спины, поясницы, боков и характеризовались выпадением остевых волос, алопециями, образованием корочек и струпьев. Часто в области поражений со стороны мездры имелись темные пятна. Поражения наблюдали как у самцов, так и у самок, преимущественно у молодняка. Образцы патологического материала представляли собой слипшиеся пучки волос (пуховые, реже остевые) с засохшими корочками и чешуйками у основания. Результат люминесцентного теста с лампой Вуда во всех образцах был отрицательным. При микроскопии наблюдали пучки слипшихся пуховых волос и большое количество гнойного дебриса, затрудняющего обнаружение грибных элементов. В результате культурального микологического анализа была выделена 51 культура, идентифицировано 18 таксонов (видов и родов) грибов. При этом из 12 % образцов были изолированы кератинофильные грибы-дерматофиты ( Arthroderma cuniculi , Chryso-sporium carmichaelii , Chrysosporium spp.), вероятно, выступающие в качестве этиологических агентов дерматоза. Рост дерматофитов наблюдался только на селективной дифференциально-диагностической среде ДТМ-Эксперт, на обычных средах росли быстрорастущие недерматофитные грибы. Также были изолированы недерматофитные грибы с кератинолитическим свойствами - Scopulariopsis brevicaulis (16 %), Acremonium spp. (14 %), Aspergillus spp. (36 %), которые могут выступать в качестве вторичных оппортунистических патогенов.

Еще

Патогенные грибы, микозы животных, дерматомикозы, дерматофиты, arthroderma, chrysosporium, соболь, martes zibellina

Короткий адрес: https://sciup.org/142239849

IDR: 142239849   |   DOI: 10.15389/agrobiology.2023.4.745rus

Список литературы Роль грибов в этиологии массовых кожных поражений у соболя Martes zibellina L. 1758 в Томской области

  • Seyedmousavi S., Bosco S.D.M., De Hoog S., Ebel F., Elad D., Gomes R.R., Jacobsen I.D., Jensen H.E., Martel A., Mignon B., Pasmans F., Piecková E., Rodrigues A.M., Singh K., Vi-cente V.A., Wibbelt G., Wiederhold N.P., Guillot J. Fungal infections in animals: a patchwork of different situations. Medical Mycology, 2018, 56(suppl_1): S165-S187 (doi: 10.1093/mmy/myx104).
  • James T.Y., Toledo L.F., Rödder D., da Silva Leite D., Belasen A.M., Betancourt-Román C.M., Jenkinson T.S., Soto-Azat C., Lambertini C., Longo A.V., Ruggeri J., Collins J.P., Burrowes P.A., Lips K.R., Zamudio K.R., Longcore J.E. Disentangling host, pathogen, and environmental deter-minants of a recently emerged wildlife disease: lessons from the first 15 years of amphibian chytridi-omycosis research. Ecology and Evolution, 2015, 5(18): 4079-4097 (doi: 10.1002/ece3.1672).
  • Hoyt J.R., Kilpatrick A.M., Langwig K.E. Ecology and impacts of white-nose syndrome on bats. Nature Reviews Microbiology, 2021, 19(3): 196-210 (doi: 10.1038/s41579-020-00493-5).
  • Davy C.M., Shirose L., Campbell D., Dillon R, McKenzie C., Nemeth N., Braithwaite T., Cai H., Degazio T., Dobbie T., Egan S., Fotherby H., Litzgus J. D., Manorome P., Marks S., Paterson J. E., Sigler L., Slavic D., Slavik E., Urquhart J., Jardine C. Revisiting ophidiomycosis (snake fungal disease) after a decade of targeted research. Frontiers in Veterinary Science, 2021, 8: 665805 (doi: 10.3389/fvets.2021.665805).
  • Ross A.A., Rodrigues Hoffmann A., Neufeld J.D. The skin microbiome of vertebrates. Microbi-ome, 2019, 7: 79 (doi: 10.1186/s40168-019-0694-6).
  • Williams C.L., Caraballo-Rodríguez A.M., Allaband C., Zarrinpar A., Knight R., Gauglitz J.M. Wildlife-microbiome interactions and disease: exploring opportunities for disease mitigation across ecological scales. Drug Discovery Today: Disease Models, 2018, 28: 105-115 (doi: 10.1016/j.ddmod.2019.08.012).
  • Anstead G.M., Sutton D.A., Graybill J.R. Adiaspiromycosis causing respiratory failure and a review of human infections due to Emmonsia and Chrysosporium spp. Journal of Clinical Microbiology, 2012, 50(4): 1346-1354 (doi: 10.1128/JCM.00226-11).
  • Schwartz I.S., Kenyon C., Feng P., Govender N.P., Dukik K., Sigler L., Jiang Y., Stielow J.B., Muñoz J.F., Cuomo C.A., Botha A., Stchigel A.M., de Hoog G.S. 50 years of emmonsia disease in humans: the dramatic emergence of a cluster of novel fungal pathogens. PLoS Pathogens, 2015, 11(11): e1005198 (doi: 10.1371/journal.ppat.1005198).
  • Losnak D.O., Rocha F.R., Almeida B.S., Batista K.Z.S., Althoff S.L., Haupt J., Ruiz L.S., Anversa L., Lucheis S.B., Paiz L.M., Donalisio M.R., Richini Pereira V.B. Molecular detection of fungi of public health importance in wild animals from Southern Brazil. Mycoses, 2018, 61(7): 455-463 (doi: 10.1111/myc.12767).
  • Степаненко Н.Д. Кожное заболевание соболей в природных условиях. Киров, 2007.
  • Тютеньков О.Ю., Соколова Н.М., Трифонова М.Г. Дерматомикоз соболя (Martes zibellina) Томского Приобья. Териофауна России и сопредельных территорий: международное совещание: Х съезд Териологического общества при РАН. М., 2016: 433.
  • de Hoog G.S., Guarro J., Gené J., Figueras M.J. Atlas of clinical fungi. CBS, Utrecht, 2000.
  • Anbu P., Gopinath S.C.B., Hilda A., Mathivanan N., Annadurai G. Secretion of keratinolytic enzymes and keratinolysis by Scopulariopsis brevicaulis and Trichophyton mentagrophytes: regression analysis. Canadian Journal of Microbiology, 2006, 52(11): 1060-1069 (doi: 10.1139/W06-067).
  • Tosti A., Piraccini B., Stinchi C., Lorenzi S. Onychomycosis due to Scopulariopsis brevicaulis: clinical features and response to systemic antifungals. The British Journal of Dermatology, 1996, 135(5): 799-802 (doi: 10.1111/J.1365-2133.1996.TB03895.X).
  • Маноян М.Г., Овчинников Р.С. Микобиота кожных поражений животных. Тез. докл. «Современная микология в России: Первый съезд микологов России». М., 2002: 414-415.
  • Rodrigues Marcondes N., Ledesma Taira C., Cirena Vandresen D., Estivalet Svidzinski T.I., Kadowaki M.K., Peralta R.M. New feather-degrading filamentous fungi. Microbial Ecology, 2008, 56(1): 13-17 (doi: 10.1007/s00248-007-9319-x).
  • Perdomo H., Sutton D.A. García D., Fothergill A.W., Cano J., Gené J., Summerbell R.C., Rinaldi M.G., Guarro J. Spectrum of clinically relevant Acremonium species in the United States. Journal of Clinical Microbiology, 2011, 49(1): 243-256 (doi: 10.1128/JCM.00793-10).
  • Hainsworth S., Kučerová I., Sharma R., Cañete-Gibas C.F., Hubka V. Three-gene phylogeny of the genus Arthroderma: basis for future taxonomic studies. Medical Mycology, 2021, 59(4): 355-365. (doi: 10.1093/mmy/myaa057).
  • Dawson C.O. Two new species of Arthroderma isolated from soil from rabbit burrows. Sabouraudia, 1963, 2(3): 185-191 (doi: 10.1080/00362176385190301).
  • Baumbach C.M., Müller S., Reuschel M., Uhrlaß S., Nenoff P., Baums C.G., Schrödl W. Iden-tification of zoophilic dermatophytes using MALDI-TOF mass spectrometry. Frontiers in Cellular and Infection Microbiology, 2021, 11: 631681 (doi: 10.3389/fcimb.2021.631681).
  • Zaki S.M., Mikami Y., El-Din A.A.K., Youssef Y.A. Keratinophilic fungi recovered from muddy soil in Cairo Vicinities, Egypt. Mycopathologia, 2005, 160(3): 245-251 (doi: 10.1007/S11046-005-0143-X).
  • Ovchinnikov R.S., Vasyliev D.B. Pathogenic chrysosporium-related fungi in reptiles and other animals. In: Recent trends in human and animal mycology /K. Singh, N. Srivastava (eds.). Springer, Singapore, 2019: 47-80 (doi: 10.1007/978-981-13-9435-5_3).
  • Savinov V.A., Ovchinnikov R.S., Kapustin A.V., Laishevtcev A.I., Gulykin A.M. Development of a differential diagnostic nutrient medium for the express diagnosis of animal dermatophytosis In: IOP Conference Series: Earth and Environmental Science. V. 315. IOP Publishing, 2019, 315(2): 022071 (doi: 10.1088/1755-1315/315/2/022071).
  • Dekker J.P. Metagenomics for clinical infectious disease diagnostics steps closer to reality. Journal of Clinical Microbiology, 2018, 56(9): e00850-18 (doi: 10.1128/JCM.00850-18).
  • Křivanec K., Otčenášek M. Importance of free living mustelid carnivores in circulation of adiaspiromycosis. Mycopathologia, 1977, 60(3): 139-144.
  • Borman A.M., Simpson V.R., Palmer M.D., Linton C.J., Johnson E.M. Adiaspiromycosis due to Emmonsia crescens is widespread in native British mammals. Mycopathologia, 2019, 168(4): 153-163 (doi: 10.1007/s11046-009-9216-6).
Еще
Статья научная
SciUp 2024 © 2024 ©