Роль микроокружения в индуцированной in vitro гемопоэтической дифференцировке мышиных эмбриональных стволовых клеток

Роль микроокружения в индуцированной in vitro гемопоэтической дифференцировке мышиных эмбриональных стволовых клеток

Автор: Савченкова И.П.

Журнал: Сельскохозяйственная биология @agrobiology

Рубрика: Обзоры, проблемы

Статья в выпуске: 4 т.55, 2020 года.

Бесплатный доступ

Моноциты и макрофаги служат мишенями для многих лентивирусов животных, в том числе вируса инфекционной анемии лошадей (И.П. Савченкова с соавт., 2017). Сложность патогенеза и недостаточная изученность ретровирусных инфекций обусловливают необходимость поиска адекватной клеточной модели для их изучения in vitro. В связи с этим получение макрофагов в процессе направленной дифференцировки эмбриональных стволовых клеток (ЭСК), в том числе генетически трансформированных генами лошади, представляет интерес для ветеринарии (И.П. Савченкова с соавт., 2016). Мышиные ЭСК, выделенные из предымплантационных эмбрионов (M.J. Evans с соавт., 1981; G.R. Martin, 1981), имеют уникальные свойства по сравнению с другими типами клеток (T.C. Doetschman с соавт., 1985; И.П. Савченкова с соавт., 1996; A.M. Wobus с соавт., 2003), что выражается в их неограниченной способности пролиферировать и формировать при индукции in vitro все типы клеток эмбриона и взрослого организма. Они могут быть ценным источником для получения in vitro всех видов тканей и органов млекопитающих для экспериментального анализа, в том числе для изучения и моделирования раннего гемопоэза в культуре. В обзоре обсуждаются вопросы, связанные с дифференцировкой ЭСК в направлении гемопоэза in vitro (A.L. Olsen с соавт., 2006; I. Orlovskaya с соавт., 2008; J.A. Briggs с соавт., 2017). Для этого используют различные методические подходы, которые имеют свои преимущества и недостатки. Рассматривается влияние цитокинов, факторов роста гемопоэза и фидерных слоев, представленных монослоем стромальных клеток, на дифференцировку ЭСК in vitro. Уделяется внимание непрямому методу дифференцировки посредством создания эмбриональных телец (ЭТ) in vitro и имитации микросреды. Показано влияние микроокружения в процессе цитодифференцировки ЭСК мыши в направлении гемопоэза. Продемонстрировано, что максимальное приближение условий культивирования и дифференцировки in vitro к условиям развития гемопоэза in vivo повышает эффективность гемопоэтической дифференцировки ЭСК. Необходимо продолжать поиск панели факторов, которые избирательно направляют развитие ЭСК в мезодерму и препятствуют их дифференцировке в эктодерму и энтодерму. В настоящее время развиваются методы, позволяющие получать макрофаги в культуре из ЭСК (A. Subramanian с соавт., 2009; L. Zhuang с соавт., 2012; M. Pittet с соавт., 2014). Приведены данные, в том числе полученные автором настоящего обзора, о роли микроокружения в дифференцировке ЭСК в макрофаги in vitro. Непрямой метод дифференцировки ЭСК посредством создания ЭТ in vitro и имитации микросреды (добавление рекомбинантных цитокинов - интерлейкина 3 и гранулоцитарного макрофагового колониестимулирующего фактора) может рассматриваться как более перспективный подход для получения макрофагов в культуре in vitro. Понимание регуляторных механизмов, управляющих врожденной иммунной системой, сделает изучение лентивирусов, которые обладают тропностью к этим клеткам, более эффективным. Получение из ЭСК в культуре гомогенной клеточной популяции моноцитов и макрофагов открывает новые возможности для изучения зависимости репликации лентивирусов от степени клеточной дифференцировки.

Еще

Мышиные эмбриональные стволовые клетки, эмбриональные тельца, дифференцировка, гемопоэтическая ниша, гемопоэтические стволовые клетки, ростовые факторы, цитокины, мононуклеарная система фагоцитов, лентивирусы, макрофаги, получение

Короткий адрес: https://sciup.org/142226325

IDR: 142226325   |   DOI: 10.15389/agrobiology.2020.4.659rus

Список литературы Роль микроокружения в индуцированной in vitro гемопоэтической дифференцировке мышиных эмбриональных стволовых клеток

  • Савченкова И.П., Юров К.П. Клеточный рецептор вируса инфекционной анемии лошадей (ИНАН). Ветеринария и кормление, 2017, 6: 6-10.
  • Hines R., Maury W. DH82 cells: a macrophage cell line for the replication and study of equine infectious anemia virus. Journal of Virological Methods, 2001, 95(1-2): 47-56 ( DOI: 10.1016/s0166-0934(01)00288-9)
  • Fidalgo-Carvalho I., Craigo J.K., Barnes S., Costa-Ramos C., Montelaro R.C. Characterization of an equine macrophage cell line: application to studies of EIAV infection. Veterinary Microbiology, 2009, 136(1-2): 8-19 ( ). DOI: 10.1016/j.vetmic.2008.10.010
  • Werners A.H., Bull S., Fink-Gremmels J., Bryant C.E. Generation and characterisation of an equine macrophage cell line (e-CAS cells) derived from equine bone marrow cells. Veterinary Immunology and Immunopathology, 2004, 97(1-2): 65-76 ( ). DOI: 10.1016/j.vetimm.2003.08.012
  • Evans E., Paillot R., López-Álvarez M.R. A comprehensive analysis of e-CAS cell line reveals they are mouse macrophages. Sci. Rep., 2018, 8(1): 8237 ( ). DOI: 10.1038/s41598-018-26512-3
  • Савченкова И.П., Алексеенкова С.В., Юров К.П. Эмбриональные стволовые клетки мыши - перспективный материал для изучения вируса инфекционной анемии лошадей in vitro и in vivo. Вопросы вирусологии, 2016, 61(3): 107-111 ( ).
  • DOI: 10.18821/0507-4088-2016-61-3-107-111
  • Evans M.J., Kaufman M.H. Establishment in culture of pluripotential cells from mouse embryos. Nature, 1981, 292: 154-156 ( ).
  • DOI: 10.1038/292154a0
  • Martin G.R. Isolation of a pluripotent cell line from early mouse embryos cultured in medium conditioned by teratocarcinoma stem cells. Proceedings of the National Academy of Sciences, 1981, 78(12): 7634-7638 ( ).
  • DOI: 10.1073/pnas.78.12.7634
  • Bradley A., Evans M., Kaufman M.H., Robertson E. Formation of germ-line chimaeras from embryo-derived teratocarcinoma cell lines. Nature, 1984, 309: 255-256 ( ).
  • DOI: 10.1038/309255a0
  • Doetschman T.C., Eistetter H., Katz M., Schmidt W., Kemler R. The in vitro development of blastocyst-derived embryonic stem cell lines: formation of visceral yolk sac, blood islands and myocardium. J. Embryol. Exp. Morphol., 1985, 87: 27-45.
  • Савченкова И.П., Зиновьева Н.А., Булла Й., Брем Г. Эмбриональные стволовые клетки, их генетическое изменение путем гомологичной рекомбинации и использование в получении трансгенных животных. Успехи современной биологии, 1996, 116(1): 78-91.
  • Савченкова И.П. Эмбриональные стволовые клетки в биологии: настоящее и будущее. Дубровицы, 1999.
  • Савченкова И.П. Эмбриональные стволовые клетки как потенциальный источник гамет in vitro. Проблемы репродукции, 2009, 15(3): 54-59.
  • Wobus A.M., Boheler K.R. Embryonic stem cells: prospects for developmental biology and cell therapy. Physiological Reviews, 2005, 85(2): 635-678 ( ).
  • DOI: 10.1152/physrev.00054.2003
  • Nakano T. Hematopoietic stem cells: generation and manipulation. Trends Immunol., 2003, 24(11): 589-594 ( ).
  • DOI: 10.1016/j.it.2003.09.003
  • Kennedy M., Keller G.M. Hematopoietic commitment of ES cells in culture. Methods in Enzymology, 2003, 365: 39-59 (
  • DOI: 10.1016/s0076-6879(03)65003-2)
  • Olsen A.L., Stachura D.L., Weiss M.J. Designer blood: creating hematopoietic lineages from embryonic stem cells. blood, 2006, 107(4): 1265-1275 ( ).
  • DOI: 10.1182/blood-2005-09-3621
  • McKinney-Freeman S.L., Daley G.Q. Towards hematopoietic reconstitution from embryonic stem cells: a sanguine future. Current Opinion in Hematology, 2007, 14(4): 343-347 ( ).
  • DOI: 10.1097/MOH.0b013e3281900edd
  • Tian X., Kaufman D.S. Differentiation of embryonic stem cells towards hematopoietic cells: progress and pitfalls. Current Opinion in Hematology, 2008, 15(4): 312-318 ( ).
  • DOI: 10.1097/MOH.0b013e328302f429
  • Wiles M.V., Keller G. Multiple hematopoietic lineages develop from embryonic stem (ES) cells in culture. Development, 1991, 111(2): 259-267.
  • Burkert U., von Rüden R.T., Wagner E.F. Early fetal hematopoietic development from in vitro differentiated embryonic stem cells. The New Biologist, 1991, 3: 698-708.
  • Schmitt R.M., Bruyns E., Snodgrass H.R. Hematopoietic development of embryonic stem cells in vitro: cytokine and receptor gene expression. Genes & Dev., 1991, 5: 728-740 ( ).
  • DOI: 10.1101/gad.5.5.728
  • Nakano T., Kodama H., Honjo T. Generation of lymphohematopoietic cells from embryonic stem cells in culture. Science, 1994, 265(5175): 1098-1101 ( ).
  • DOI: 10.1126/science.8066449
  • Nakano T. In vitro development of hematopoietic system from mouse embryonic stem cells: a new approach for embryonic hematopoiesis. Int. J. Hematol., 1996, 65(1): 1-8 (
  • DOI: 10.1016/s0925-5710(96)00531-2)
  • Ling V., Neben S. In vitro differentiation of embryonic stem cells: immunophenotypic analysis of cultured embryoid bodies. J. Cell Physiol., 1997, 171(1): 104-115 ( :13.0.CO;2-G).
  • DOI: 10.1002/(SICI)1097-4652(199704)171
  • Schofield R. The stem cell system. Biomedicine & Pharmacotherapy, 1983, 37(8): 375-380.
  • Spangrude G.J. Future challenges for hematopoietic stem cell research. Biotechniques, 2003, 35(6): 1273-1279 ( ).
  • DOI: 10.2144/03356ss07
  • Beerman I., Luis T.C., Singbrant S., Lo Celso C., Méndez-Ferrer S. The evolving view of the hematopoietic stem cell niche. Exp. Hematol., 2017, 50: 22-26 ( ).
  • DOI: 10.1016/j.exphem.2017.01.008
  • Szade K., Gulati G.S., Chan C.K.F., Kao K.S., Miyanishi M., Marjon K.D., Sinha R., George B.M., Chen J.Y., Weissman I.L. Where hematopoietic stem cells live: the bone marrow niche. Antioxidants & Redox Signaling, 2018, 29(2): 191-204 ( ).
  • DOI: 10.1089/ars.2017.7419
  • Kearney J.B., Bautch V.L. In vitro differentiation of mouse ES cells: hematopoietic and vascular development. Methods in Enzymology, 2003, 365: 83-98 (
  • DOI: 10.1016/s0076-6879(03)65006-8)
  • Fraser S.T., Yamashita J., Jakt L.M., Okada M., Ogawa M., Nishikawa S., Nishikawa S.-I. In vitro differentiation of mouse embryonic stem cells: hematopoietic and vascular cell types. Methods in Enzymology, 2003, 365: 59-72 (
  • DOI: 10.1016/s0076-6879(03)65004-4)
  • Orlovskaya I., Schraufstatter I., Loring J., Khaldoyanidi S. Hematopoietic differentiation of embryonic stem cells. Methods, 2008, 45(2): 159-167 ( ).
  • DOI: 10.1016/j.ymeth.2008.03.002
  • Weisel K.C., Gao Y., Shieh J.H., Moore M.A. Stromal cell lines from the aorta-gonado-mesonephros region are potent supporters of murine and human hematopoiesis. Exp. Hematol., 2006, 34(11): 1505-1516 ( ).
  • DOI: 10.1016/j.exphem.2006.06.013
  • Calvi L.M., Adams G.B., Weibrecht K.W., Weber J.M., Olson D.P., Knight M.C., Martin R.P., Schipani E., Divieti P., Bringhurst F.R., Milner L.A., Kronenberg H.M., Scadden D.T. Osteoblastic cells regulate the haematopoietic stem cell niche. Nature, 2003, 425(6960): 841-846 ( ).
  • DOI: 10.1038/nature02040
  • Kiel M.J., Yilmaz O.H., Iwashita T., Yilmaz O.H., Terhorst C., Morrison S.J. SLAM family receptors distinguish hematopoietic stem and progenitor cells and reveal endothelial niches for stem cells. cell, 2005, 121(7): 1109-1121 ( ).
  • DOI: 10.1016/j.cell.2005.05.026
  • Taichman R.S., Reilly M.J., Emerson S.G. The hematopoietic microenvironment: osteoblasts and the hematopoietic microenvironment. Hematology, 2000, 4(5): 421-426.
  • Filippi M.D., Porteu F., Le Pesteur F., Rameau P., Nogueira M.M., Debili N., Vainchenker W., de Sauvage F.J., Kupperschmitt A.D., Sainteny F. Embryonic stem cell differentiation to hematopoietic cells: a model to study the function of various regions of the intracytoplasmic domain of cytokine receptors in vitro. Exp. Hematol., 2000, 28(12): 1363-1372 (
  • DOI: 10.1016/s0301-472x(00)00549-x)
  • Nakano T., Era T., Takahashi T., Kodama H., Honjo T. Development of erythroid cells from mouse embryonic stem cells in culture: potential use for erythroid transcription factor study. Leukemia, 1997, 11(Suppl. 3): 496-500.
  • Kitajima K., Tanaka M., Zheng J., Sakai-Ogawa E., Nakano T. In vitro differentiation of mouse embryonic stem cells to hematopoietic cells on an OP9 stromal cell monolayer. Methods Enzymol., 2003, 365: 72-83 (
  • DOI: 10.1016/s0076-6879(03)65005-6)
  • Uzan G., Prandini M.H., Rosa J.P., Berthier R. Hematopoietic differentiation of embryonic stem cells: an in vitro model to study gene regulation during megakaryocytopoiesis. stem cells, 1996, 14(Suppl. 1): 194-199 ( ).
  • DOI: 10.1002/stem.5530140725
  • Berthier R., Prandini M.H., Schweitzer A., Thevenon D., Martin-Sisteron H., Uzan G. The MS-5 murine stromal cell line and hematopoietic growth factors synergize to support the megakaryocytic differentiation of embryonic stem cells. Exp. Hematol., 1997, 25(6): 481-49.
  • Eto K., Murphy R., Kerrigan S.W., Bertoni A., Stuhlmann H., Nakano T., Leavitt A.D., Shattil S.J. Megakaryocytes derived from embryonic stem cells implicate CalDAG-GEFI in integrin signaling. Proceedings of the National Academy of Sciences, 2002, 99(20): 12819-12824 ( ).
  • DOI: 10.1073/pnas.202380099
  • Nisitani S., Tsubata T., Honjo T. Lineage marker-negative lymphocyte precursors derived from embryonic stem cells in vitro differentiate into mature lymphocytes in vivo. International Immunology, 1994, 6(6): 909-916 ( ).
  • DOI: 10.1093/intimm/6.6.909
  • Shimizu N., Noda S., Katayama K., Ichikawa H., Kodama H., Miyoshi H. Identification of genes potentially involved in supporting hematopoietic stem cell activity of stromal cell line MC3T3-G2/PA6. Int. J. Hematol., 2008, 87(3): 239-245 ( ).
  • DOI: 10.1007/s12185-008-0048-9
  • Zhang W.J., Park C., Arentson E., Choi K. Modulation of hematopoietic and endothelial cell differentiation from mouse embryonic stem cells by different culture conditions. Blood, 2005, 105: 111-114 ( ).
  • DOI: 10.1182/blood-2004-04-1306
  • Lengerke C., Daley G.Q. Patterning definitive hematopoietic stem cells from embryonic stem cells. Experimental Hematology, 2005, 33(9): 971-979 ( ).
  • DOI: 10.1016/j.exphem.2005.06.004
  • Gordon-Keylock S.A., Jackson M., Huang C., Samuel K., Axton R.A., Oostendorp R.A., Taylor H., Wilson J., Forrester L.M. Induction of hematopoietic differentiation of mouse embryonic stem cells by an AGM-derived stromal cell line is not further enhanced by overexpression of HOXB4. Stem Cells and Development, 2010, 19(11): 1687-1698 ( ).
  • DOI: 10.1089/scd.2009.0467
  • Chen D., Lewis R.L., Kaufman D.S. Mouse and human embryonic stem cell models of hematopoiesis: past, present, and future. Biotechniques, 2003, 35(6): 1253-1261 ( ).
  • DOI: 10.2144/03356ss05
  • Савченкова И.П., Фляйшманн М., Булла Й., Брэм Г. Использование эмбриональных стволовых клеток (ЭСК) мыши для получения химерных животных. Цитология, 1996, 38(10): 1118-1123.
  • Савченкова И.П. Эмбриональные стволовые клетки млекопитающих. В кн.: Животная клетка в культуре (методы и применение в биотехнологии) (2-е изд., дополненное) /Под ред. Л.П. Дьяконова. М., 2009: 347-379.
  • Konno T., Akita K., Kurita K., Ito Y. Formation of embryoid bodies by mouse embryonic stem cells on plastic surfaces. Journal of Bioscience and Bioengineering, 2005, 100(1): 88-93 ( ).
  • DOI: 10.1263/jbb.100.88
  • Kurosawa H. Methods for inducing embryoid body formation: in vitro differentiation system of embryonic stem cells. Journal of Bioscience and Bioengineering, 2007, 103(5): 389-398 ( ).
  • DOI: 10.1263/jbb.103.389
  • Behringer R., Gertsenstein M., Nagy K.V., Nagy A. Differentiating mouse embryonic stem cells into embryoid bodies by hanging-drop cultures. Cold Spring Harb. Protoc., 2016, 1(12) ( ).
  • DOI: 10.1101/pdb.prot092429
  • Wang X., Yang P. In vitro differentiation of mouse embryonic stem (mES) cells using the hanging drop method. J. Vis. Exp., 2008, 23(17): e825 (doi: 10.3791/825).
  • Carpenedo R.L., Sargent C.Y., McDevitt T.C. Rotary suspension culture enhances the efficiency, yield, and homogeneity of embryoid body differentiation. Stem Cells, 2007, 25(9): 2224-2234 ( ).
  • DOI: 10.1634/stemcells.2006-0523
  • Wu H.-W., Hsiao Y.-H., Chen C.-C., Yet S.-F., Hsu C.-H. A PDMS-based microfluidic hanging drop chip for embryoid body formation. Molecules, 2016, 21(7): 882 ( ).
  • DOI: 10.3390/molecules21070882
  • Liu J.F, Chen Y.M., Yang J.J., Kurokawa T., Kakugo A., Yamamoto K., Gong J.P. Dynamic behavior and spontaneous differentiation of mouse embryoid bodies on hydrogel substrates of different surface charge and chemical structures. Tissue Engineering Part A, 2011, 17(17-18): 2343-2357 ( ).
  • DOI: 10.1089/ten.TEA.2011.0034
  • Савченкова И.П. Эмбриональные стволовые клетки в биологии и биотехнологии. В кн.: Животная клетка в культуре (методы и применение в биотехнологии) /Под ред. Л.П. Дьяконова, В.И. Ситькова. М., 2000: 244-273.
  • Koike M., Sakaki S., Amano Y., Kurosawa H. Characterization of embryoid bodies of mouse embryonic stem cells formed under various culture conditions and estimation of differentiation status of such bodies. Journal of Bioscience and Bioengineering, 2007, 104(4): 294-299 ( ).
  • DOI: 10.1263/jbb.104.294
  • Brickman J.M., Serup P. Properties of embryoid bodies. WIREs Dev. Biol., 2017, 6(2): e259 ( ).
  • DOI: 10.1002/wdev.259
  • Briggs J.A., Li V.C., Lee S., Woolf C.J., Klein A., Kirschner M.W. Mouse embryonic stem cells can differentiate via multiple paths to the same state. eLife, 2017, 6: e26945 ( ).
  • DOI: 10.7554/eLife.26945
  • Park C., Lugus J.J., Choi K. Stepwise commitment from embryonic stem to hematopoietic and endothelial cells. Current Topics in Developmental Biology, 2005, 66: 1-36 (
  • DOI: 10.1016/S0070-2153(05)66001-2)
  • Dang S.M., Kyba M., Perlingeiro R., Daley G.Q., Zandstra P.W. Efficiency of embryoid body formation and hematopoietic development from embryonic stem cells in different culture systems. Biotechnol Bioeng., 2002, 78(4): 442-53 ( ).
  • DOI: 10.1002/bit.10220
  • Choi K., Chung Y.S., Zhang W.J. Hematopoietic and endothelial development of mouse embryonic stem cells in culture. In: Developmental hematopoiesis. Methods in molecular medicine, vol. 105 /M.H. Baron (ed.). Humana Press, Totowa, NJ, 2005: 359-368 ( ).
  • DOI: 10.1385/1-59259-826-9:359
  • Shen J., Qu C.K. In vitro hematopoietic differentiation of murine embryonic stem cells. In: Hematopoietic stem cell protocols. Methods in molecular biology™, vol. 430 /K.D. Bunting (ed.). Humana Press, 2008: 103-118 ( ).
  • DOI: 10.1007/978-1-59745-182-6_7
  • Liu H., Roy K. Biomimetic three-dimensional cultures significantly increase hematopoietic differentiation efficacy of embryonic stem cells. Tissue Engineering, 2005, 11(1-2): 319-330 ( ).
  • DOI: 10.1089/ten.2005.11.319
  • Taqvi S., Roy K. Influence of scaffold physical properties and stromal cell coculture on hematopoietic differentiation of mouse embryonic stem cells. Biomaterials, 2006, 27(36): 6024-6031 ( ).
  • DOI: 10.1016/j.biomaterials.2006.05.052
  • Kinney M.A., Saeed R., McDevitt T.C. Systematic analysis of embryonic stem cell differentiation in hydrodynamic environments with controlled embryoid body size. Integrative Biology, 2012, 4(6): 641-650 ( ).
  • DOI: 10.1039/c2ib00165a
  • Dias A.D., Unser A.M., Xie Y., Chrisey D.B., Corr D.T. Generating size-controlled embryoid bodies using laser direct-write. Biofabrication, 2014, 6(2): 025007 ( ).
  • DOI: 10.1088/1758-5082/6/2/025007
  • Nakano Y., Iwanaga S., Mizumoto H., Kajiwara T. Evaluation of hollow fiber culture for large-scale production of mouse embryonic stem cell-derived hematopoietic stem cells. Cytotechnology, 2018, 70(3): 975-982 ( ).
  • DOI: 10.1007/s10616-018-0210-z
  • Biesecker L.G., Emerson S.G. Interleukin-6 is a component of human umbilical cord serum and stimulates hematopoiesis in embryonic stem cells in vitro. Exp. Hematol., 1993, 21(6): 774-778.
  • Lieschke G.J., Dunn A.R. Development of functional macrophages from embryonal stem cells in vitro. Exp. Hematol., 1995, 23(4): 328-334.
  • Matsumoto K., Isagawa T., Nishimura T., Ogaeri T., Eto K., Miyazaki S., Miyazaki J., Aburatani H., Nakauchi H., Ema H. Stepwise development of hematopoietic stem cells from embryonic stem cells. PLoS ONE, 2009, 4(3): e4820 ( ).
  • DOI: 10.1371/journal.pone.0004820
  • Burt R.K., Verda L., Kim D.A., Oyama Y., Luo K., Link C. Embryonic stem cells as an alternate marrow donor source: engraftment without graft-versus-host disease. J. Exp. Med., 2004, 199(7): 895-904 ( ).
  • DOI: 10.1084/jem.20031916
  • Dang S.M., Gerecht-Nir S., Chen J., Itskovitz-Eldor J., Zandstra P.W. Controlled, scalable embryonic stem cell differentiation culture. Stem Cells, 2004, 22(3): 275-282 ( ).
  • DOI: 10.1634/stemcells.22-3-275
  • de Souza G.T., Maranduba C.P., de Souza C.M., do Amaral D.L., da Guia F.C., Zanette Rde S., Rettore J.V., Rabelo N.C., Nascimento L.M., Pinto Í.F., Farani J.B., Neto A.E., Silva Fde S., Maranduba C.M., Atalla A. Advances in cellular technology in the hematology field: What have we learned so far? World J. Stem Cells, 2015, 7(1): 106-115 ( ).
  • DOI: 10.4252/wjsc.v7.i1.106
  • Hume D. The mononuclear phagocyte system. Current Opinion in Immunology, 2006, 18(1): 49-53 ( ).
  • DOI: 10.1016/j.coi.2005.11.008
  • Geissmann F., Manz M.G., Jung S., Sieweke M.H., Merad M., Ley K. Development of monocytes, macrophages and dendritic cells. Science, 2010, 327(5966): 656-661 ( ).
  • DOI: 10.1126/science.1178331
  • Ginhoux F., Guilliams M. Tissue-resident macrophage ontogeny and homeostasis. Immunity, 2016, 44(3): 439-449 ( ).
  • DOI: 10.1016/j.immuni.2016.02.024
  • McGrath K.E., Frame J.M., Palis J. Early hematopoiesis and macrophage development. Seminars in Immunology, 2015, 27(6): 379-387 ( ).
  • DOI: 10.1016/j.smim.2016.03.013
  • Pittet M.J., Nahrendorf M., Swirski F.K. The journey from stem cell to macrophage. Ann. N. Y. Acad. Sci., 2014, 1319(1): 1-18 ( ).
  • DOI: 10.1111/nyas.12393
  • Young D.A., Lowe L.D., Clark S.C. Comparison of the effects of IL-3, granulocyte-macrophage colony-stimulating factor, and macrophage colony-stimulating factor in supporting monocyte differentiation in culture. Analysis of macrophage antibody-dependent cellular cytotoxicity. Journal of Immunology, 1990, 145(2): 607-615.
  • Moore K.J., Fabunmi R.P., Andersson L.P., Freeman M.W. In vitro-differentiated embryonic stem cell macrophages: a model system for studying atherosclerosis-associated macrophage functions. Arteriosclerosis, Thrombosis, and Vascular Biology, 1998, 18(10): 1647-1654 ( ).
  • DOI: 10.1161/01.atv.18.10.1647
  • Zhuang L., Pound J.D., Willems J.J., Taylor A.H., Forrester L.M., Gregory C.D. Pure populations of murine macrophages from cultured embryonic stem cells. Application to studies of chemotaxis and apoptotic cell clearance. Journal of Immunological Methods, 2012, 385(1-2): 1-14 ( ).
  • DOI: 10.1016/j.jim.2012.06.008
  • Subramanian A., Guo B, Marsden M.D., Galic Z., Kitchen S., Kacena A., Brown H.J., Cheng G., Zack J.A. Macrophage differentiation from embryoid bodies derived from human embryonic stem cells. J. Stem Cells, 2009, 4: 29-45.
  • Савченкова И.П., Савченкова Е.А., Осипова Ю.А. Получение из эмбриональных стволовых клеток мыши клеток с фенотипом подобным моноцитам и макрофагам. Гены и клетки, 2019, 14(S1): 202-203.
  • Савченкова И.П., Савченкова Е.А. Дифференцировка мышиных эмбриональных стволовых клеток в гематопоэтическом направлении. Вестник трансплантологии и искусственных органов, 2019, XXI(S): 160.
Еще
Статья обзорная
SciUp 2024 © 2024 ©